研究文章|gydF4y2Ba开放获取gydF4y2Ba
Radhika N. Shah, Ivan Rodriguez-Nunez, Donna D. Eason, Robert N. Haire, Julien Y. Bertrand, Valērie Wittamer, David Traver, sheila K. Nordone, Gary W. Litman, Jeffrey A. YodergydF4y2Ba,gydF4y2Ba "gydF4y2Ba抗硝基9抗体的研制与鉴定gydF4y2Ba",gydF4y2Ba血液学的进步gydF4y2Ba,gydF4y2Ba 卷。gydF4y2Ba2012gydF4y2Ba,gydF4y2Ba 文章的IDgydF4y2Ba596925gydF4y2Ba,gydF4y2Ba 9gydF4y2Ba 页面gydF4y2Ba,gydF4y2Ba 2012gydF4y2Ba.gydF4y2Ba https://doi.org/10.1155/2012/596925gydF4y2Ba
抗硝基9抗体的研制与鉴定gydF4y2Ba
摘要gydF4y2Ba
新型免疫型受体(NITRs)在许多多骨鱼类中都有描述,它由抑制受体和激活受体的多基因家族编码,并被预测与哺乳动物自然杀伤细胞受体(NKRs)具有功能同源性。在斑马鱼的NITR家族中,gydF4y2Banitr9gydF4y2Ba是唯一能编码激活受体的基因。然而,可选择的RNA剪接产生三个不同的gydF4y2Banitr9gydF4y2Ba每个转录本都编码不同的亚型。虽然gydF4y2Banitr9gydF4y2Ba斑马鱼淋巴细胞中已经检测到转录本,表达Nitr9的特异性造血谱系仍有待确定。为了更好地理解nitr在斑马鱼免疫中的作用,我们产生了抗Nitr9单克隆抗体,并评估了其识别三种Nitr9亚型的能力。这些抗体在流式细胞术中的应用将证明对识别表达Nitr9的特定淋巴细胞谱系是有用的,并可能允许分离出表达Nitr9的细胞,从而可以直接评估细胞毒性(如NK)功能。gydF4y2Ba
1.介绍gydF4y2Ba
哺乳动物自然杀伤(NK)细胞是天然免疫系统中的大颗粒淋巴细胞,表达多种细胞表面受体,通过复杂的信号通路网络调节细胞毒性功能。NK细胞受体包括激活型和抑制性两种类型,它们能熟练地将肿瘤或病毒感染的细胞与正常宿主细胞区分开来[gydF4y2Ba1gydF4y2Ba,gydF4y2Ba2gydF4y2Ba].NK细胞细胞毒性的调节依赖于激活和抑制受体信号的整合[gydF4y2Ba3.gydF4y2Ba].虽然假设NK细胞受体在脊椎动物系统发育的早期就出现了,但功能数据主要基于哺乳动物NK细胞受体的研究[gydF4y2Ba4gydF4y2Ba].gydF4y2Ba
为了了解NK细胞受体的起源和进化及其功能,确定在非哺乳动物物种中的等效受体形式至关重要。硬骨鱼是最早的脊椎动物谱系之一,具有与人类和其他哺乳动物相似的先天性和适应性免疫反应功能[gydF4y2Ba5gydF4y2Ba].最近,在多个鱼类中发现了一个大型的多基因家族,该家族具有与哺乳动物NK细胞受体相同的结构和功能特征,具有快速进化的抑制性和激活性的新型免疫型受体(NITRs) [gydF4y2Ba6gydF4y2Ba,gydF4y2Ba7gydF4y2Ba].在序列水平上对NITR基因簇的完整分析只在斑马鱼和青鳉基因组上进行过[gydF4y2Ba8gydF4y2Ba- - - - - -gydF4y2Ba11gydF4y2Ba].虽然已经在NK-like、T、B和巨噬细胞中检测到各种鲶鱼nitr的转录本[gydF4y2Ba12gydF4y2Ba],所有斑马鱼nitr的转录本在淋巴系中均可检测到,但在髓系中检测不到[gydF4y2Ba13gydF4y2Ba].在斑马鱼基因组中发现的39个NITR基因中,gydF4y2Banitr9gydF4y2Ba是唯一一种预计能编码激活受体的NITR基因[gydF4y2Ba10gydF4y2Ba,gydF4y2Ba11gydF4y2Ba,gydF4y2Ba14gydF4y2Ba].三个交替剪接的转录本gydF4y2Banitr9gydF4y2Banitr9 -长(Nitr9L)、nitr9 -短(Nitr9S)和nitr9 -超短(Nitr9SS),它们的胞外结构域不同[gydF4y2Ba13gydF4y2Ba,gydF4y2Ba14gydF4y2Ba].Nitr9L与其他nitr最相似,它具有两个胞外Ig域:一个是可变(V)型,一个是中间(I)型[gydF4y2Ba6gydF4y2Ba].Nitr9S是通过编码V域的外显子内的隐剪接供体和受体位点产生的。Nitr9SS缺乏整个V域外显子。所有Nitr9亚型的跨膜结构域都有一个带正电的残基:这一特征允许Nitr9L与适配器蛋白Dap12结合并发出信号[gydF4y2Ba14gydF4y2Ba].基于蛋白质结构,Nitr9S和Nitr9SS也有望通过Dap12发出信号;然而,这还没有得到实验的证实。gydF4y2Ba
虽然gydF4y2Banitr9gydF4y2Ba斑马鱼淋巴细胞中已经检测到转录本,但无法识别和恢复表达nitr9的细胞。本文中,我们描述了两种抗Nitr9单克隆抗体的来源,通过间接免疫荧光、流式细胞术和Western blot分析证明了它们在识别重组Nitr9方面的实用价值,并随后通过Western blot分析鉴定了斑马鱼组织中所有三种Nitr9亚型。这些抗体应该被证明是有用的:(1) Western blot检测组织内Nitr9蛋白水平,(2)间接免疫荧光检测组织内Nitr9表达细胞分布,(3)流式细胞术检测特异性表达Nitr9的造血系。(4)通过荧光激活细胞分选(FACS)纯化表达Nitr9的细胞进行功能表征。gydF4y2Ba
2.材料和方法gydF4y2Ba
2.1.斑马鱼gydF4y2Ba
所有实验均涉及活斑马鱼(gydF4y2Ba鲐鱼类gydF4y2Ba)按照相关机构和国家指南和法规进行,并经北卡罗莱纳州立大学机构动物护理和使用委员会批准。成年斑马鱼(EkkWill Waterlife Resources, Ruskin, FL)被维持和牺牲,如所述[gydF4y2Ba15gydF4y2Ba].gydF4y2Ba
2.2.反向Transcriptase-PCRgydF4y2Ba
斑马鱼解剖组织总RNA (2gydF4y2BaμgydF4y2Bag)进行逆转录(SuperScript III reverse Transcriptase, Life Technologies, Carlsbad, CA),利用基因特异性引物对cdna进行热循环(表gydF4y2Ba1gydF4y2Ba)和钛gydF4y2BaTaqgydF4y2BaDNA聚合酶(Clontech,山景城,CA)。检测硝基9和硝基9的PCR循环次数gydF4y2BaβgydF4y2Ba-actin(均在65°C退火)分别为40和25。gydF4y2Ba
|
|||||||||||||||||||||||||||||||||||
|
一个人工起始密码子下划线。gydF4y2Ba 人工终止密码子是大胆的。gydF4y2Ba 这些引物是为钝性PCR克隆到gydF4y2Ba生态gydF4y2BapLF的RV位点。gydF4y2Ba 悬垂(5 ')序列是小写文本,包括agydF4y2Ba不gydF4y2BaI位点克隆成pLF。gydF4y2Ba 悬垂(5 ')序列是小写文本,包括agydF4y2BaBamgydF4y2BaHI位点克隆成pcDNA3。gydF4y2Ba 悬垂(3 ')序列是小写文本,并包括gydF4y2Ba生态gydF4y2BaRI位点克隆成pcDNA3。gydF4y2Ba |
|||||||||||||||||||||||||||||||||||
从多种斑马鱼的肾脏中纯化淋巴细胞和骨髓细胞群,并按所述汇集[gydF4y2Ba16gydF4y2Ba].细胞总RNA (1gydF4y2BaμgydF4y2Bag)逆转录(SuperScript III reverse Transcriptase)。采用TaqMan引物和探针对组织和分离细胞的cdna进行定量PCR (Q-PCR) (Life Technologies, Carlsbad, CA)gydF4y2Ba1gydF4y2Ba).Q-PCR在单色MyiQ real-time PCR检测系统(Bio-Rad, Hercules, CA)上进行,方法为:50°C 2 min, 95°C 10 min,然后在95°C 15 s和60°C 1 min下进行55个循环。阈值周期(CgydF4y2BaTgydF4y2Ba)值由iQ5光学系统软件(Bio-Rad)计算。硝酸9的相对转录水平归一化为gydF4y2BaβgydF4y2Ba-actin进行计算gydF4y2Ba方法(gydF4y2Ba17gydF4y2Ba].所有反应都作为技术上的三次重复进行。gydF4y2Ba
2.3.抗体开发与纯化gydF4y2Ba
采用PCR扩增GenBank NM_001005576.1的Nitr9 I域(298-623核苷酸)编码序列(见表)gydF4y2Ba1gydF4y2Ba)和克隆pETBlue-1 (EMD Millipore, Billerica, MA)gydF4y2Ba大肠杆菌gydF4y2Ba采用标准程序转化调谐器细胞(EMD Millipore)。诱导细胞,并从包涵体中恢复Nitr9 I域。gydF4y2Ba
用表达于大肠杆菌中的Nitr9 I结构域免疫小鼠gydF4y2Ba大肠杆菌gydF4y2Ba脾细胞与P3X63Ag8.653细胞(CRL-1580, ATCC, Manassas, VA)融合。通过针对Nitr9 I结构域的酶联免疫吸附试验(ELISA),筛选了大约3000个杂交瘤上清(Immunology Core Facility, University of North Carolina, Chapel Hill)。通过平行免疫印迹分析和间接免疫荧光筛选反应最强烈的100份上清。两个单克隆,19.1.1(这里称为anti-Nitr9)gydF4y2Ba19gydF4y2Ba)和90.10.5(这里称为anti-Nitr9gydF4y2Ba90gydF4y2Ba),根据它们对重组Nitr9的识别能力选择进行额外的表征。检测抗体同型(isostrip: Roche;印第安纳波利斯)是IgG2b,gydF4y2Ba轻链(90.10.5)和IgG2a,gydF4y2Ba轻链(19.1.1)。抗体通过蛋白A琼脂糖柱纯化(Upstate Cell Signaling Solutions;普莱西德湖,纽约)。gydF4y2Ba
2.4.质粒与细胞培养gydF4y2Ba
构建Nitr9表达盒(无表位标签)gydF4y2BapcDNA3gydF4y2Ba(技术)。构建表位(FLAG)标记的Nitr9 (FLAG-Nitr9)表达盒gydF4y2BapLFgydF4y2Ba含有氨基末端前导序列和FLAG表位的质粒[gydF4y2Ba14gydF4y2Ba].斑马鱼的编码序列gydF4y2Banitr9L nitr9S,gydF4y2Ba和gydF4y2Banitr9SSgydF4y2Ba通过PCR扩增并克隆到gydF4y2BapcDNA3gydF4y2Ba或gydF4y2BapLF。gydF4y2Ba然后将Nitr9和FLAG-Nitr9磁带放入gydF4y2BapIRES2-EGFPgydF4y2Ba(Clontech)生成:gydF4y2BapNitr9L / EGFPgydF4y2Ba,gydF4y2BapNitr9S / EGFP pNitr9SS / EGFP pFLAG-Nitr9L / EGFPgydF4y2Ba,gydF4y2BapFLAG-Nitr9S / EGFP,gydF4y2Ba和gydF4y2BapFLAG-Nitr9SS / EGFPgydF4y2Ba质粒(图gydF4y2Ba1gydF4y2Ba).表中列出了克隆步骤中用到的引物序列gydF4y2Ba1gydF4y2Ba.根据生产商说明书,使用Fugene 6 (Roche)将质粒转染到人HEK293T细胞中,转染48小时后收获。gydF4y2Ba
(一)gydF4y2Ba
(b)gydF4y2Ba
(c)gydF4y2Ba
(d)gydF4y2Ba
(e)gydF4y2Ba
2.5.间接免疫荧光法gydF4y2Ba
HEK293T细胞转染于四个孔腔载玻片(Thermo Fisher Scientific, Rochester, NY)。转染后的细胞用磷酸盐缓冲盐水(PBS)洗涤,3%多聚甲醛固定20分钟,50 mM nhh处理gydF4y2Ba4gydF4y2BaCl, PBS静置5分钟。然后用1.0% Triton-X-100在PBS中渗透细胞5分钟,用1% BSA在PBS中阻断细胞5分钟。渗透后的细胞与抗硝基9孵育gydF4y2Ba19gydF4y2Ba, anti-Nitr9gydF4y2Ba90gydF4y2Ba,或抗flag抗体1小时,用PBS冲洗,与藻红蛋白(PE)抗小鼠IgG抗体和DAPI(1:10 00)孵育1小时,用PBS冲洗。从载玻片上移除腔体,使用免疫座(Thermo Shandon, Pittsburgh, PA)安装盖片。用徕卡DM5000显微镜在40倍放大下拍摄细胞。gydF4y2Ba
2.6.流式细胞术gydF4y2Ba
转染的HEK293T细胞与抗nitr9孵育gydF4y2Ba19gydF4y2Ba, anti-Nitr9gydF4y2Ba90gydF4y2Ba,或抗flag单克隆抗体1小时,PBS洗涤,与allophycocyanin- (APC-)偶联抗小鼠IgG二抗孵育30分钟。标记的细胞被洗涤,然后用3%多聚甲醛固定,并进行流式细胞分析(BD FACSCalibur, BD Biosciences, San Jose, CA)。gydF4y2Ba
2.7。西方的分析gydF4y2Ba
转染后的HEK293T细胞用PBS洗涤,用哺乳动物蛋白提取试剂(M-PER, Pierce, Rockford, IL)裂解。取成体斑马鱼的肾、脾、肠和鳃,直接收集到添加了蛋白酶抑制剂(Pierce)的组织蛋白提取试剂(T-PER, Pierce)中并均质。将裂解液离心去除细胞核,测定细胞碎片和蛋白浓度(BCA protein Assay, Pierce)。蛋白质在12% sds -聚丙烯酰胺凝胶上分离,转移到聚偏二氟乙烯(PVDF)膜上进行西方分析。膜在0.1% Tween 20 (TBST)的tris缓冲盐水中洗涤,并在阻断缓冲液(100mm硼酸、25mm硼酸钠、75mm NaCl、5%山羊血清和5%奶粉)中孵育1小时。膜与一抗在4°C阻断缓冲液中孵育过夜。一抗包括抗硝化甘油gydF4y2Ba90gydF4y2Ba、抗flag (M2)小鼠单克隆抗体(Sigma-Aldrich, St. Louis, MO)、抗gfp小鼠单克隆抗体(Roche)、抗gapdh兔多克隆抗体(AnaSpec, Fremont, CA)。用TBST洗涤膜,然后用阻断缓冲液和辣根过氧化物酶偶联的抗小鼠IgG二抗(Roche)或辣根过氧化物酶偶联的抗兔IgG二抗(Santa Cruz Biotechnology, Santa Cruz, CA)孵育。用TBST洗涤后,Lumi-gydF4y2Ba采用western blotting底物和检测系统(Roche)观察反应性。gydF4y2Ba
2.8。Endoglycosidase治疗gydF4y2Ba
清除溶解产物(20gydF4y2BaμgydF4y2Bag)转染细胞用n -糖苷酶F (PNGase F, New England Biolabs, Ipswich, MA)在37°C下孵育1小时。清除溶解产物(25gydF4y2BaμgydF4y2Bag)取自斑马鱼组织,用OrgoSOL缓冲液(g - biosciences, Maryland Heights, MO)沉淀,再悬浮在PNGase缓冲液中,用PNGase F处理。gydF4y2Ba
3.结果与讨论gydF4y2Ba
3.1.Nitr9亚型gydF4y2Ba
Nitr9L、Nitr9S和Nitr9SS的基因组结构和预测蛋白结构如图所示gydF4y2Ba1(一)gydF4y2Ba和gydF4y2Ba1 (b)gydF4y2Ba.所有三种异构体预测编码I型跨膜细胞表面受体,在跨膜结构域内具有带正电荷的残基。的gydF4y2Banitr9SgydF4y2Ba异构体在斑马鱼脾脏、肾脏和肠道中的表达水平高于gydF4y2Banitr9LgydF4y2Ba和gydF4y2Banitr9SSgydF4y2Ba亚型,而gydF4y2Banitr9LgydF4y2Ba转录本是在鳃中表达最多的亚型。成绩单的gydF4y2Banitr9SSgydF4y2Ba相对于其他亚型,在所有四种组织中均检测到较低水平(图gydF4y2Ba1 (c)gydF4y2Ba).Q-PCR(表gydF4y2Ba1gydF4y2Ba)的组合相对水平测定gydF4y2Banitr9LgydF4y2Ba和gydF4y2Banitr9SgydF4y2Ba这些组织以及纯化的淋巴细胞和骨髓细胞中的转录本(本文中使用的TaqMan引物/探针不检测gydF4y2Banitr9SSgydF4y2Ba成绩单)。的组合相对表达水平gydF4y2Banitr9LgydF4y2Ba和gydF4y2Banitr9SgydF4y2Ba肠道中的转录本始终高于肾脏和鳃(图)gydF4y2Ba1 (d)gydF4y2Ba).而相对表达水平gydF4y2Banitr9LgydF4y2Ba和gydF4y2Banitr9SgydF4y2Ba在脾脏中不同的生物复制,从与肠中相同的水平到在肾脏和鳃中观察到的较低水平。先前报道,gydF4y2Banitr9gydF4y2Ba与髓系细胞相比,斑马鱼淋巴细胞中的转录本含量高得多[gydF4y2Ba13gydF4y2Ba].为了产生能够检测所有三种Nitr9亚型的单克隆抗体,用细菌表达的Nitr9 I结构域免疫小鼠(见图)gydF4y2Ba1 (b)gydF4y2Ba),通过ELISA、Western blot和间接免疫荧光技术筛选杂交瘤产生识别重组Nitr9的抗体。两个克隆,19.1.1(这里称为anti-Nitr9gydF4y2Ba19gydF4y2Ba)和90.10.5(这里称为anti-Nitr9gydF4y2Ba90gydF4y2Ba),以作进一步评估。gydF4y2Ba
3.2.间接免疫荧光法检测转染细胞中的Nitr9亚型gydF4y2Ba
以确定抗硝基9gydF4y2Ba19gydF4y2Ba和anti-Nitr9gydF4y2Ba90gydF4y2BaHEK293T细胞转染共表达EGFP的质粒和flag标记的或内源性的Nitr9亚型;这样,任何表达Nitr9的细胞也会表达EGFP(图gydF4y2Ba1 (e)gydF4y2Ba).为了确保重组Nitr9蛋白能被免疫荧光检测到,我们使用了一种抗flag抗体来检测转染细胞中所有三种flag标记的Nitr9亚型(图)gydF4y2Ba2(一个)gydF4y2Ba).结果显示,两种抗硝基9gydF4y2Ba19gydF4y2Ba和anti-Nitr9gydF4y2Ba90gydF4y2Ba通过免疫荧光识别FLAG-Nitr9L和FLAG-Nitr9S,但两者都不能结合(anti-Nitr9gydF4y2Ba90gydF4y2Ba)或结合效果较差(抗硝基9gydF4y2Ba19gydF4y2Ba)到FLAG-Nitr9SS(图gydF4y2Ba2 (b)gydF4y2Ba和gydF4y2Ba2 (c)gydF4y2Ba).相反,两者都是反硝化的gydF4y2Ba19gydF4y2Ba和anti-Nitr9gydF4y2Ba90gydF4y2Ba有效识别内源性Nitr9在转染细胞中表达的所有三种亚型,尽管抗Nitr9细胞的背景标记明显更高gydF4y2Ba19gydF4y2Ba(图gydF4y2Ba3.gydF4y2Ba).可能是FLAG-tag干扰了Nitr9SS的折叠,或者空间干扰了抗体对FLAG-Nitr9SS I结构域的识别;西方的分析也观察到了这一点(下文将讨论)。gydF4y2Ba
(一)gydF4y2Ba
(b)gydF4y2Ba
(c)gydF4y2Ba
(一)gydF4y2Ba
(b)gydF4y2Ba
3.3.用流式细胞术检测转染细胞中的Nitr9亚型gydF4y2Ba
以确定抗硝基9gydF4y2Ba19gydF4y2Ba和anti-Nitr9gydF4y2Ba90gydF4y2BaHEK293T细胞转染质粒编码内源性或flag标记的Nitr9和EGFP亚型(图gydF4y2Ba1 (e)gydF4y2Ba).流式细胞术检测抗flag、抗nitr9gydF4y2Ba19gydF4y2Ba, anti-Nitr9gydF4y2Ba90gydF4y2Ba抗体检测表达Nitr9的细胞。双阳性FLAG-Nitr9L表达细胞(即EGFP)的百分比gydF4y2Ba+gydF4y2Ba和Nitr9gydF4y2Ba+gydF4y2Ba)相似(55-63%的EGFPgydF4y2Ba+gydF4y2Ba当使用anti-FLAG或anti-Nitr9抗体时(图gydF4y2Ba4gydF4y2Ba(a))。两种抗nitr9抗体对表达内源性Nitr9L亚型的转染细胞的识别效率相似(EGFP的61-73%)gydF4y2Ba+gydF4y2Ba细胞)(图gydF4y2Ba4gydF4y2Ba(b))。gydF4y2Ba
anti-FLAG单克隆抗体不能结合FLAG-Nitr9S和anti-Nitr9gydF4y2Ba19gydF4y2Ba抗体未能检测到表达Nitr9S或flag -Nitr9S的细胞(2-9%的EGFP)gydF4y2Ba+gydF4y2Ba细胞)(图gydF4y2Ba4gydF4y2Ba(c)和gydF4y2Ba4gydF4y2Ba(d))。虽然anti-Nitr9gydF4y2Ba90gydF4y2Ba抗体可检测FLAG-Nitr9S(占EGFP的31%)gydF4y2Ba+gydF4y2Ba它不识别内源性的Nitr9S(约占EGFP的5%)gydF4y2Ba+gydF4y2Ba细胞)。虽然Nitr9S和FLAG-Nitr9S蛋白是通过转染细胞产生的(见图)gydF4y2Ba2gydF4y2Ba和gydF4y2Ba3.gydF4y2Ba和Western blot结果如下),它们可能不能在细胞表面有效表达。为了确定细胞表面的Nitr9S表达是否需要信号转接蛋白Dap12的共表达,我们将编码Nitr9S和斑马鱼Dap12的质粒共转染细胞。抗nitr9抗体的细胞表面标记未见增加(数据未显示)。gydF4y2Ba
反flag和反nitr9gydF4y2Ba19gydF4y2Ba抗体能有效结合FLAG-Nitr9SS(57%和31%的EGFP)gydF4y2Ba+gydF4y2Ba细胞,职责)。的anti-Nitr9gydF4y2Ba90gydF4y2Ba抗体不能结合FLAG- nitr9ss,可能是由于FLAG标签的空间位阻(图)gydF4y2Ba4gydF4y2Ba(e))因为两种抗nitr9抗体都能有效识别Nitr9SS(65%-75%的EGFP)gydF4y2Ba+gydF4y2Ba细胞;数字gydF4y2Ba4gydF4y2Ba(f))。gydF4y2Ba
3.4.Anti-Nitr9gydF4y2Ba90gydF4y2Ba在西方分析中结合Nitr9的所有三种亚型gydF4y2Ba
以评估抗硝基9的能力gydF4y2Ba90gydF4y2BaHEK293T细胞转染内源性和flag标记的Nitr9亚型的质粒(图)gydF4y2Ba1 (e)gydF4y2Ba).细胞裂解液使用抗nitr9进行Western blot分析gydF4y2Ba90gydF4y2Ba抗体内源性Nitr9的三种亚型以及flag标记的Nitr9L和Nitr9S蛋白均被检测到。与anti-FLAG单克隆抗体阳性对照的结合模式相当(图)gydF4y2Ba5(一个)gydF4y2Ba).然而,anti-Nitr9gydF4y2Ba90gydF4y2Ba日志含义绑定FLAG-tagged Nitr9SS失败。如上所述,这可能是由于FLAG-tag阻断了该抗体识别的特定表位的访问。gydF4y2Ba
(一)gydF4y2Ba
(b)gydF4y2Ba
(c)gydF4y2Ba
抗硝基9检测到两条蛋白条带gydF4y2Ba90gydF4y2Ba在内源性和flag标记的Nitr9L和Nitr9S转染中,也被抗flag抗体结合。两种观察到的Nitr9L蛋白的分子量均高于预测的Nitr9L大小(34 kD),其中一种观察到的Nitr9S蛋白的分子量大于预测的Nitr9S大小(30 kD)。这些差异与糖基化差异是一致的(见下文)。基于化学发光暴露时间需要检测不同亚型的Nitr9,抗Nitr9gydF4y2Ba90gydF4y2Ba与Nitr9S和Nitr9SS相比,对Nitr9L表现出更高的亲和力。在平行实验中,反硝化9gydF4y2Ba19gydF4y2Ba抗体没有结合内源性的Nitr9S和Nitr9SS蛋白(数据未显示),在Western blot分析中没有进一步的特征。gydF4y2Ba
3.5.硝酸根糖基化在转染细胞中的作用gydF4y2Ba
Nitr9L、Nitr9S和Nitr9SS分别拥有3个(NMSC、NDSR和NGSK)、2个(NMSC和NGSK)和1个(NGSK)候选n -连接糖基化位点。用内糖苷酶(PNGase F)处理Nitr9转染细胞的裂解液,结果只检测到预期大小的Nitr9L和Nitr9S蛋白(图)gydF4y2Ba5 (b)gydF4y2Ba).两组结果都是一致的gydF4y2Ba在活的有机体内gydF4y2Ba糖基化。在转染细胞中观察到的Nitr9SS的大小似乎没有被内糖苷酶处理改变,检测的局限性表明,它可能不是糖基化的。gydF4y2Ba
3.6。Nitr9蛋白在斑马鱼不同组织中的表达差异gydF4y2Ba
以确定反硝化剂是否gydF4y2Ba90gydF4y2Ba抗体可以识别内源性的Nitr9,用内糖苷酶处理成年斑马鱼组织的裂解物并进行Western blot分析(图)gydF4y2Ba5 (c)gydF4y2Ba).在脾脏、肾脏、鳃和肠道中检测到不同水平的Nitr9L和Nitr9S。Nitr9SS仅在脾脏检测到,尽管在肠中也观察到微弱的条带(数据未显示)。当抗硝基9在斑马鱼组织和HEK293T细胞中检测到约28kd的非特异性条带gydF4y2Ba90gydF4y2Ba抗体用于总蛋白载量大的情况下(例如,25gydF4y2BaμgydF4y2Bag溶解产物;数字gydF4y2Ba5 (c)gydF4y2Ba).gydF4y2Ba
4.结论gydF4y2Ba
三种不同的转录变体gydF4y2Banitr9,gydF4y2Ba斑马鱼中单个推测的激活NITR基因及其相应的蛋白异构体已经被鉴定和表征。抗硝基9的效用gydF4y2Ba19gydF4y2Ba和anti-Nitr9gydF4y2Ba90gydF4y2Ba通过间接免疫荧光、流式细胞术和Western blot检测重组Nitr9的单克隆抗体。这些抗体在识别三种不同的Nitr9亚型方面表现出巨大的差异。当用于间接免疫荧光时,两种抗Nitr9抗体都能有效且特异性地与细胞结合,从而表达所有三种Nitr9亚型。两种抗nitr9抗体均可通过流式细胞术检测细胞表面Nitr9L和Nitr9SS的表达。的anti-Nitr9gydF4y2Ba90gydF4y2Ba该抗体通过Western blot分析识别了所有三种Nitr9亚型,但也注意到对Nitr9L有更高的亲和力。当使用anti-Nitr9gydF4y2Ba90gydF4y2Ba在高水平蛋白的Western blot分析中,发现了一条非特异性条带。虽然这种蛋白的身份尚不清楚,但它可能代表了Ig超级家族中一个保守的成员。gydF4y2Ba
Nitr9转录本和蛋白质异构体的相对水平明显不同。虽然PCR分析(图gydF4y2Ba1 (c)gydF4y2Ba)表明,gydF4y2Banitr9SgydF4y2Ba可能是脾、肾和肠中主要的mRNA亚型,Western分析表明Nitr9L是肾中主要的蛋白亚型。这种差异可能反映了不同组织中转录本和蛋白质稳定性的不同,或者是抗体与Nitr9L的首选反应性(图)gydF4y2Ba5(一个)gydF4y2Ba).gydF4y2Ba
本文描述的单克隆抗体将有助于通过Western blot分析进一步评估斑马鱼组织中Nitr9蛋白水平,并通过间接免疫荧光鉴定组织切片中Nitr9表达细胞。目前正在努力使用流式细胞术纯化表达nitr9的斑马鱼细胞,以描述它们的形态和细胞毒性特性。这些抗体也可能被证明在激活(交联)或阻断Nitr9功能的细胞培养和gydF4y2Ba体外gydF4y2Ba功能分析以及解剖nitr的异构体特异性功能。gydF4y2Ba
致谢gydF4y2Ba
作者感谢Bradley Bone和Karen Marcus协助产生杂交瘤并进行elisa, Janet Dow协助流式细胞术,Barb Pryor协助编辑。本文得到了美国国家科学基金会(MCB-0505585给J. A. Yoder)和美国国家卫生研究院(R01 AI057559给G. W. Litman和J. A. Yoder)的资助。gydF4y2Ba
参考文献gydF4y2Ba
- R. Biassoni,《人类自然杀伤受体、共受体及其配体》,gydF4y2Ba当前的免疫学协议gydF4y2Ba, 2009年第14章,第14.10单元。gydF4y2Ba视图:gydF4y2Ba谷歌学者gydF4y2Ba
- L. L. Lanier,《走钢丝:自然杀伤细胞的激活和抑制》gydF4y2Ba自然免疫学gydF4y2Ba,第9卷,第5期。5,页495-502,2008。gydF4y2Ba视图:gydF4y2Ba出版商的网站gydF4y2Ba|gydF4y2Ba谷歌学者gydF4y2Ba
- L. L. Lanier,《NK细胞识别》,gydF4y2Ba免疫学年度回顾gydF4y2Ba,第23卷,第225-274页,2005。gydF4y2Ba视图:gydF4y2Ba谷歌学者gydF4y2Ba
- J. A. Yoder和G. W. Litman,《自然杀手受体和识别的系统发育起源:关系、可能性和现实》,gydF4y2Ba免疫遗传学gydF4y2Ba,第63卷,第2期3,页123-141,2011。gydF4y2Ba视图:gydF4y2Ba出版商的网站gydF4y2Ba|gydF4y2Ba谷歌学者gydF4y2Ba
- G. W. Litman, J. P. Cannon, L. J. Dishaw,“重建免疫系统发育:新视角”,gydF4y2Ba自然评论免疫学gydF4y2Ba,第5卷,第5期。11,页866-879,2005。gydF4y2Ba视图:gydF4y2Ba出版商的网站gydF4y2Ba|gydF4y2Ba谷歌学者gydF4y2Ba
- J. A. Yoder,“多骨鱼中nitr的形态、功能和系统发育”,gydF4y2Ba发育与比较免疫学gydF4y2Ba第33卷第3期2, pp. 135 - 144,2009。gydF4y2Ba视图:gydF4y2Ba出版商的网站gydF4y2Ba|gydF4y2Ba谷歌学者gydF4y2Ba
- S. ferrareso, H. Kuhl, M. Milan等人,“在欧洲黑鲈Dicentrarchus labrax中,一种新的免疫型受体(NITR)基因簇的鉴定和特征,揭示了通过积极选择的反复基因扩展和多样化。”gydF4y2Ba免疫遗传学gydF4y2Ba第61卷第1期11-12,第773-788页,2009。gydF4y2Ba视图:gydF4y2Ba出版商的网站gydF4y2Ba|gydF4y2Ba谷歌学者gydF4y2Ba
- S. Desai, A. K. Heffelfinger, T. M. Orcutt, G. W. Litman, J. A. Yoder,“medaka新型免疫型受体(NITR)基因簇显示了在可变域的非凡程度的差异,”gydF4y2BaBMC进化生物学gydF4y2Ba,第8卷,第2期第1条第177条,2008年。gydF4y2Ba视图:gydF4y2Ba出版商的网站gydF4y2Ba|gydF4y2Ba谷歌学者gydF4y2Ba
- J. A. Yoder, M. G. Mueller, S. Wei等人,“斑马鱼的免疫型受体基因与哺乳动物白细胞受体簇编码的基因共享遗传和功能特性。”gydF4y2Ba美国国家科学院学报gydF4y2Ba第98卷第1期12,页6771-6776,2001。gydF4y2Ba视图:gydF4y2Ba出版商的网站gydF4y2Ba|gydF4y2Ba谷歌学者gydF4y2Ba
- J. A. Yoder, R. T. Litman, M. G. Mueller等人,“斑马鱼中新型免疫型受体基因簇的解析”,gydF4y2Ba美国国家科学院学报gydF4y2Ba,第101卷,第1期。44, pp. 15706-15711, 2004。gydF4y2Ba视图:gydF4y2Ba出版商的网站gydF4y2Ba|gydF4y2Ba谷歌学者gydF4y2Ba
- J. a . Yoder, J. P. Cannon, R. T. Litman, C. Murphy, J. L. Freeman,和G. W. Litman,“斑马鱼中第二个NITR基因簇的转座事件的证据”,gydF4y2Ba免疫遗传学gydF4y2Ba,第60卷,第2期5,页257-265,2008。gydF4y2Ba视图:gydF4y2Ba出版商的网站gydF4y2Ba|gydF4y2Ba谷歌学者gydF4y2Ba
- J. Evenhuis, E. Bengtén, C. Snell, S. M. Quiniou, N. W. Miller,和M. Wilson,“斑点叉尾鮰额外新型免疫型受体的特性”,gydF4y2Ba免疫遗传学gydF4y2Ba,第59卷,第59期8,页661-671,2007。gydF4y2Ba视图:gydF4y2Ba出版商的网站gydF4y2Ba|gydF4y2Ba谷歌学者gydF4y2Ba
- J. A. Yoder, P. M. Turner, P. D. Wright等,“nitr的发育和组织特异性表达”,gydF4y2Ba免疫遗传学gydF4y2Ba第62期2,页117-122,2010。gydF4y2Ba视图:gydF4y2Ba出版商的网站gydF4y2Ba|gydF4y2Ba谷歌学者gydF4y2Ba
- 美国,人类。Zhou X. Chen等,“斑马鱼通过Dap12激活免疫受体Nitr9信号,”gydF4y2Ba免疫遗传学gydF4y2Ba,第59卷,第59期10,页813-821,2007。gydF4y2Ba视图:gydF4y2Ba出版商的网站gydF4y2Ba|gydF4y2Ba谷歌学者gydF4y2Ba
- D. D. Jima, R. N. Shah, T. M. Orcutt等,“在缺乏适应性免疫的情况下补体和凝血基因的转录增强”,gydF4y2Ba分子免疫学gydF4y2Ba第46卷,第46期7, pp. 1505-1516, 2009。gydF4y2Ba视图:gydF4y2Ba出版商的网站gydF4y2Ba|gydF4y2Ba谷歌学者gydF4y2Ba
- J. A. Yoder, T. M. Orcutt, D. Traver,和G. W. Litman,“斑马鱼与跨膜免疫受体相关的适配器分子同源性的结构特征”,gydF4y2Ba基因gydF4y2Ba,第401卷,第1期1-2,页154-164,2007。gydF4y2Ba视图:gydF4y2Ba出版商的网站gydF4y2Ba|gydF4y2Ba谷歌学者gydF4y2Ba
- K. J. Livak和T. D. Schmittgen,“使用实时定量PCR分析相对基因表达数据和gydF4y2Ba方法。”gydF4y2Ba方法gydF4y2Ba,第25卷,第2期4,第402-408页,2001。gydF4y2Ba视图:gydF4y2Ba出版商的网站gydF4y2Ba|gydF4y2Ba谷歌学者gydF4y2Ba
版权gydF4y2Ba
版权所有©2012 Radhika N. Shah et al。这是一篇发布在gydF4y2Ba知识共享署名许可协议gydF4y2Ba,允许在任何媒介上不受限制地使用、传播和复制,但必须正确引用原作。gydF4y2Ba