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营养素、饮食成分和衍生物对肠道微生物群和炎症相关疾病的影响,从分子基础到治疗

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体积 2020 |物品ID 2120971 | 8. 页面 | https://doi.org/10.1155/2020/2120971

右美托咪定对大鼠缺血再灌注肾损伤的保护作用

学术编辑:江红梅
已收到 2020年3月5日
认可的 2020年3月24日
出版 03年4月20日

摘要

急性肾损伤(AKI)是一种临床综合征,是一种突然发作的肾功能衰竭,严重影响肾小管。一种潜在的治疗方法是右美托咪定(DEX),一种高度选择性的药物α2.- 一种用作麻醉剂佐剂的激动剂。它还具有抗炎,神经保护和同情的品质。本研究的目的是建立德克斯是否还提供针对缺血和再灌注的保护 - (I / R-)诱导大鼠的AKI。腹膜内注射德克斯(25 μg/kg)给药30分钟 导入I/R之前的最小值。结果表明,在I/R大鼠中,DEX通过减少肾小管损伤和维持肾功能发挥保护作用。此外,作为对I/R的反应,DEX治疗降低了TNF的mRNA表达-α,IL-1β肾组织中IL-6和MCP-1以及血清TNF水平-α,IL-1βIL-6和MCP-1。DEX还能降低肾小管细胞的氧化应激和凋亡水平。这些结果表明,在I/R肾损伤中,DEX通过抑制炎症和小管细胞凋亡,减少活性氧的产生,促进肾功能,发挥保护作用。

1.介绍

急性肾损伤(AKI)可能是大手术的后果。它显著增加了发病率和死亡率的风险[1.].AKI可以导致心律失常,脑水肿,高钾血症,肾功能不全和水中毒品。所有这些条件都构成了死亡的风险[2.].关于急性应激性AKI的研究报道很少;因此,有必要研究其潜在机制和有效的治疗方法。

AKI可由缺血再灌注(I/R)引起。在I/R期间,肾小管上皮细胞的细胞极性和细胞骨架完整性受到干扰,细胞-细胞和细胞-基质相互作用受到破坏,线粒体受损,活性氧(ROS)合成增加[3.5.].由急性约束应激引起的氧化应激已被确定可导致海马和肝脏损伤[6.]. 因为氧化应激可以促进细胞凋亡,它也有能力引起AKI。事实上,许多病理性肾损伤都归因于细胞凋亡[6.].这一发现刺激了对氧化应激和细胞凋亡在I/ r诱导的肾损伤病理过程中的作用的研究。

右美托咪定(DEX)具有几种可能有益于治疗AKI的性质。这是一种有效的、高度选择性的方法α2.肾上腺素能激动剂具有镇痛,镇静和反动脉分解特征[7.,8.].肾脏的远端和近端小管以及梗死脉管系统丰富α2.-肾上腺素受体[7.,8.]. 利用动物模型,研究探索了DEX在I/R损伤后的作用。DEX不仅有利于肾小管的结构和功能以及肾小管上皮细胞的凋亡,还能减少ROS的合成并抑制促炎细胞因子的分泌[9].尽管德克斯在手术后缓解了肾I / R损伤的能力,但它在AKI上行使的机制尚未阐明。

本研究旨在探讨地塞米松对大鼠肾I/R损伤的保护作用。此外,目的是确定DEX调节细胞凋亡、炎症细胞因子和ROS的机制。

2.材料和方法

2.1. 动物与实验设计

这项研究遵循了中国医科大学的实验动物使用指南。经中国医科大学第一医院动物实验伦理委员会审批。

使用了180名健康的7-8周龄雄性Sprague-Dawley大鼠220-270g。他们被安置在实验室( ,12–12 h光暗循环)在试验前一周在无病原体的外壳中。直到12月12日,食物和水都是自由提供的 h在实验前。食物随后被取出;然而,水是可用的。

大鼠镇静后用10%水合氯醛(0.3 ml/100 g)和10μg/kg枸橼酸舒芬太尼(仁福药业,中国,批号81A06031)腹腔注射为改善围手术期镇痛,在手术切口前和缝合后,采用0.2%罗哌卡因(阿斯利康AB,瑞典)局部浸润。测量大鼠体温,用热垫将其维持在37°C(±1°C)。用皮下电极监测心率。在左股动脉放置24g套管针,有创地监测动脉压力。排除标准适用于心率低于每分钟200次(bpm)且持续时间超过5分钟或平均血压(MAP)低于55 mmHg的大鼠。为诱导肾I/R损伤,钳取右侧肾蒂45 min,手术切除左侧肾蒂。

取下动脉夹后,观察剩余肾脏的颜色。5分钟内由深紫色变为红棕色,表明血流灌注恢复成功。每只大鼠每2小时给予0.5 ml生理盐水i.p.注射,直至苏醒或标本采集。I/R后24 h处死动物,立即采集腹主动脉血样。为了去除细胞元素,将血液样本放在冰上2小时,然后离心15分钟(3000 g, 4°C)。血清保存在−80°C。用冰冷的肝素化盐水经心脏灌注后取肾。部分肾组织切片用多聚甲醛固定,石蜡包埋;4μ取m切片,苏木精和伊红染色。此外,还进行了末端脱氧核苷酸转移酶脱氧尿苷三磷酸缺口末端标记(TUNEL)分析。其余肾组织保持在正常状态−80°C,直到进一步分析。

将大鼠随机分配给三组中的一个( 每组):

组1。假手术对照:大鼠在假手术前接受0.5 ml生理盐水i.p.注射。肾血管未被夹住。

组2。Renal I/R group (I/R): The surgery was performed as previously described.

组3。DEX+I/R组(DEX+I/R):在开始肾缺血前30 min, 25μ通过腹腔注射给予g/kg的DEX。

2.2.肾组织学

用10%缓冲的福尔马林将肾脏分解,脱次乙醇溶液,嵌入石蜡,切片,并用苏木精和曙红染色。急性管状坏死在0至4级的基础上,基于皮质或外部髓质的损伤分级:0 =正常,1 =最小损伤(<5%的受累),2 =温和损伤(5-25%的参与),3 =中度伤害(参与25-75%),4 =严重损害(> 75%的参与)[10].

2.3. 肾功能

使用UniCel DxC800 Synchron设备(美国贝克曼)对血清肌酐(CREA)和血清尿素氮进行定量。使用标准酶免疫分析试剂盒(BioPorto Diagnostics,Gentofte,丹麦)来确定中性粒细胞明胶酶相关脂质沉积蛋白(NGAL)和胱抑素C的血清浓度。

2.4.逆转录聚合酶链反应

逆转录聚合酶链反应(RT-PCR)检测TNF的表达水平-α,IL-1β肾脏中的IL-6和MCP-1。用TRIzol(Invitrogen)提取细胞总RNA,用Moloney小鼠白血病病毒(M-MLV)逆转录试剂盒(Promega)合成cDNA。通过使用IQ SYBR Green Supermix试剂(美国Bio-Rad)和Bio-Rad实时PCR机进行定量实时PCR。遵循制造商的说明。数据采用统计分析方法进行分析−ΔΔCT方法。甘油醛3-磷酸脱氢酶(GAPDH)用作管家基因,靶向靶基因的表达水平标准化。桌子1.呈现引物序列。


底漆 序列

肿瘤坏死因子-α 向前,5 -CCC GGA ATG TCG ATG CCT GAGTG-3
反向,5 -CGC CCC GGC CTT CCA AAT AAAT-3

il - 1β 向前,5 -cat CCT CTG tga CTC at-3
反向,5 -Agg cca cag gta TTT TGT cg-3

il - 6 向前,5 -TCT CGA GCC CAG GAA CGA-3
反向,5 -Agg gaa GGC agt GGC TGT ca-3

MCP-1 向前,5 -AGC ATC CAC GTG CTG TCT C-3
反向,5 -GAT CAT CTT GCC AGT GAA TGAG-3

GAPDH. 向前,5 -Agg TCG GTG tga acg gat ttg-3
反向,5 -TGT aga cca TGT agt tga ggtca-3

2.5.肾氧化应激分析

制备肾组织匀浆以测量谷胱甘肽(GSH)和丙二醛(MDA)的浓度。匀浆还用于鉴定超氧化物歧化酶(SOD)抗氧化酶活性。遵循制造商关于相应分析试剂盒的说明(中国南京建成生物工程研究所)。

2.6。血清炎症细胞因子分析

通过使用南京建成生物研究所(南京,江苏,中国)的商用酶联免疫吸附试验(ELISA)试剂盒和450℃的微孔板阅读器测量血清炎性细胞因子 纳米(热科学,马萨诸塞州沃尔瑟姆)。遵循制造商的指南。

2.7。末端脱氧核苷酸转移酶脱氧尿苷三磷酸镍骨贴贴标签(TUNEL)测定

为了检测凋亡的小管上皮细胞,按照制造商的说明书(in situ Cell Death Detection Kit, POD, Roche, Switzerland)使用原位TUNEL法。石蜡固定的切片被脱蜡。然后用二甲苯和一系列分级的乙醇和双蒸馏水再水合。切片用蛋白酶K (20μg/ml),在室温下冲洗15分钟,然后用磷酸盐缓冲盐水(PBS)冲洗两次。载玻片干燥后,50μ应用1%的TUNEL反应混合物。载玻片在37°C的加湿室内孵育60分钟 分钟,然后用PBS冲洗三次。转炉吊舱(50 μl)加入标本,加盖,37℃湿室孵育30min。再用PBS冲洗三次,然后用二氨基联苯胺(DAB)底物染色(中国北京中山)。10min后,用PBS冲洗三次,去除DAB。苏木精或甲基绿污渍,然后立即用自来水冲洗。ImageJ软件(1.38版本;美国国立卫生研究院(Rockville, MD)用于计算10个随机选取切片的目标网格中tunel阳性细胞的数量。计数使用了一个40倍物镜,由一名对实验目的不知情的研究人员进行。对这10个计数的平均值进行分析。

2.8. 统计分析

数据在IBM SPSS Statistics for Windows, version 22.0 (SPSS Inc., Chicago, IL, USA)中进行分析。结果以平均值和标准偏差(SD)表示。采用单因素方差分析(ANOVA)对多组数据进行比较。统计显著性设为 .这些图形是在GraphPad Prism 7.00(美国加利福尼亚州圣地亚哥GraphPad公司)中创建的。

3.结果

为了证实DEX对I/R诱导的肾损伤的作用,25 μG / kg DEX通过I.P给药。在I / R之前30分钟注射。数字1.报告肾脏损伤的组织学图像。苏木精和伊红染色的证据表明,I/R大鼠肾脏的组织学损伤包括局灶性肾出血、局灶性肾小管坏死、中性粒细胞浸润和肾小管上皮细胞空泡变性( ).dex处理的大鼠组织学损伤较轻( )比I/R大鼠的情况要好。

如图所示2.,血清CREA显著升高( )和尿素氮( )提示I/ r诱导的肾功能障碍。然而,这些血清标志物显著降低( )与I/R大鼠相比这说明在I/R诱导后,dex处理的大鼠肾脏功能得到了一定程度的维持。此外,I/ r诱导大鼠血清NGAL和胱抑素C水平显著升高( )比假组的人要多。然而,他们明显较低( )dex处理的大鼠比I/ r诱导的大鼠更明显(图)2.).

还评估了DEX对氧化应激的影响。如图所示3.在I/R诱导的大鼠中,MDA浓度显著升高( )比假组的人要多。然而,在用DEX处理的I/R大鼠中,氧化应激水平降低( )与I/R大鼠相比。I/R组GSH和SOD活性显著降低( )比假对照组的人要多。确实,I/R组用DEX处理后GSH浓度和SOD活性水平显著升高( )与I/R组相比。

评估DEX对促炎细胞因子表达的影响。肾脏样本的RT-PCR结果表明IL-1的表达水平β、IL-6、MCP-1和TNF-αmRNA显著升高( )在I/ r诱导的大鼠中比在对照组中(图)4.).DEX具有调节作用。IL-1的mRNA表达β、IL-6、MCP-1和TNF-α( )右美地塞米松治疗组大鼠肾组织中酶活性明显低于I/ r诱导组大鼠。血清IL-1水平β、IL-6、MCP-1和TNF-α在I/R大鼠中明显高于dex处理的I/R大鼠( ).血清IL-1水平β、IL-6、MCP-1和TNF-α( )接受DEX治疗的大鼠的死亡率低于I/R诱导的大鼠。这表明在I/R损伤的情况下,DEX对炎性细胞因子的表达具有抑制作用。

现有证据表明,肾小管细胞的凋亡加剧了I/R损伤的发病机制。因此,我们探讨了地塞米松对I/ r诱导大鼠肾小管上皮细胞凋亡的影响。TUNEL实验结果显示,I/R损伤与显著增加相关( )在这些上皮细胞的凋亡水平。相比之下,dex处理的大鼠肾脏样本中凋亡细胞较少( )与I/R组相比(图)5.).

4.讨论

心血管和移植手术或休克的后遗症是引起AKI的肾I/R损伤。这导致住院时间延长,甚至死亡[11].本研究表明,DEX预处理有助于维持I/R损伤患者肾脏的形态和功能。当肾脏I/R发生时,血液中循环的炎症介质水平降低,由于给药DEX,肾脏经历的氧化应激减少。这些结果提示DEX可能是一种适当的药物干预,以减少急性损伤引起的肾脏损害。

DEX的优点之一是它保留麻醉效果和促进血流动力学稳定。因此,DEX经常作为围手术期和重症监护药物的镇静剂。它也被用作麻醉剂的佐剂[12].右美托咪定具有镇痛、血流动力学、镇静和解交感神经的特性,对围手术期患者特别有用,因此具有广泛的临床应用价值。

其他特征是它对大脑、心脏、肺和肾脏的抗炎、抗氧化和抗凋亡作用[13,14]. 几项动物模型研究的结果表明,DEX还可以保护肾脏免受I/R损伤[12,15].其他研究也强调了DEX在预防心血管及其他重大外科手术患者肾脏损伤方面的有益作用[16].这些发现补充了早期的研究,即在I/R损伤后CREA和BUN水平显著升高。这表明肾功能受损。组织病理学检查显示I/R引起肾损伤;DEX预处理可起到缓解作用。

在应激状态下,机体会产生过量的氧自由基。这就破坏了氧化系统和抗氧化系统之间的微妙平衡17].本研究结果表明,DEX可降低氧化损伤的重要生物标志物MDA水平,提高GSH和SOD水平。MDA是自由基损伤程度的一个有用的间接指标[18].相比之下,GSH和SOD是重要的抗氧化剂[19].结果表明,I/R通过提高MDA水平、降低GSH和GSH酶活性来降低抗氧化防御系统。这提示I/R可诱导氧化应激,氧化应激可能在AKI的发病机制中起重要作用。DEX治疗有助于防止氧化应激,表明它有抗氧化作用[20.].因此,DEX对I/ r诱导的AKI具有保护作用。

I/R损伤的另一种表现是炎症反应增强[21,22]. 这种反应加重了病情,因为巨噬细胞、T细胞和其他炎症介质被征募到I/R损伤的组织中[21,22]. 正如本研究中从I/R损伤大鼠肾脏获得的组织样本的结果所示,IL-1的表达β、IL-6、MCP-1和TNF-α信使rna是升高的。相比之下,在I/R后注射地塞米松的大鼠肾组织样本显示IL-1较低β、IL-6、MCP-1和TNF-α信使rna表达。发现肾脏形态、血清炎症介质水平和细胞凋亡状态之间的关系。I/R损伤的发病机制和进展受到包括IL-1在内的促炎细胞因子的影响β、IL-6、MCP-1和TNF-α[23,24]. DEX不仅作用于肾脏的局部α2.- 一种肾上腺素抑制剂,但也影响抗炎反应,从而减轻I / R对肾脏的破坏作用。

细胞凋亡,也称为程序性细胞死亡,是维持细胞稳定性的关键机制;但是,太多可能会损坏身体[25].通常,细胞凋亡是肾I/R损伤的早期事件,与随后的炎症和肾损伤相互作用[26].在本研究中,从I/ r损伤的肾脏中提取的tunel阳性细胞数量明显高于接受DEX干预的肾脏。研究发现TNF-α对肾脏造成伤害[27,28]. DEX可能通过刺激抗凋亡作用保护I/R后的AKI。

本研究中获得的数据表明,通过抑制管状细胞凋亡和炎症,降低ROS生产和促进肾功能,DEX对大鼠I / R损伤的保护作用对大鼠I / R损伤产生保护作用。这些结果表明DEX可能在治疗I / R启动的AKI中发挥作用。但是,Dex并非没有副作用;通过副交感神经激活,它可以促进颅卡。Dex如何最好地剥削以保护重要机构尚未建立。进一步研究其应用是合理的。

数据可用性

用于支持本研究结果的数据可根据要求从相应作者处获得。

的利益冲突

作者宣布关于本条的出版物没有利益冲突。

作者的贡献

包乃仁完成了初稿;戴迪批判性地修改了手稿。所有作者都同意提交手稿。

致谢

这项工作得到了辽宁省教育署科技研究项目(LK201651)的支持。

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