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| 研究 |
样本
(学习小组的大小) |
研究设计 |
| 影响骨(s) |
骨折的生产 |
骨折类型 |
骨折固定/分心 |
剂量的维生素E治疗组中使用的模拟 |
治疗持续时间 |
干预控制和其他对照组(s) |
主要结果测量(s) |
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| Kurklu et al。15] |
成年新西兰白兔
(控制= 15;
治疗= 15) |
中间三分之一的右胫骨
(正常的骨骼模型) |
截骨术 |
开放骨折 |
使用圆形外固定器分心 |
20毫克/公斤/天生育酚(肌肉) |
30天 |
对照组不接受任何治疗。 |
放射学评价骨形成(基于分级系统的车道和Sandhu16])20天,天30、40天的学习
Scintigraphical评估计算成骨细胞的活动率(胫骨分心/侧正常胫骨)5天20天的学习
组织病理学评价骨形成的分心胫骨段(基于分级系统。哈迪et al。17)在40天的学习 |
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| Shuid et al。18] |
女性Sprague-Dawley老鼠
(虚假的= 8;
控制= 8;
治疗= 8) |
Mid-diaphysis右股骨(骨质疏松性骨模型) |
三点弯曲方法使用断头台设备 |
关闭骨折 |
内固定利用电线 |
60毫克/公斤/天生育酚(每个口服填喂法)(切除卵巢的治疗组) |
14天 |
只Sham-operated和切除卵巢的对照组收到车辆(口服填喂法) |
图中测量轴向无情的解剖腿节后第14天的学习
放射学评估无情分期(基于分级系统由Shuid et al。19])的解剖腿节后第14天的学习
放射学评价骨折愈合(基于分级系统管理员等。20.])的解剖腿节后第14天的学习 |
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| Paskalev et al。8] |
成年男性的混血狗
(控制= 6;
治疗= 6) |
骨干的胫骨和腓骨(正常的骨骼模型) |
截骨术 |
开放骨折 |
内固定使用的盘子 |
100毫克/天生育酚(/口头) |
30天 |
对照组不接受任何治疗 |
放射学评估无情登台的形成和骨重建肢体操作1天,星期2,1月,2月,3月,4月手术后(评分系统并未说明) |
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| Turk et al。21] |
男性Sprague-Dawley老鼠
(控制= 30;
治疗= 30) |
右胫骨(正常骨模型) |
未指明的手动断裂过程 |
关闭骨折 |
内固定利用电线 |
20毫克/公斤/天生育酚(腹腔) |
60天 |
注入盐水对照组(腹腔) |
放射学评价骨形成(基于车道的分级系统和Sandhu [16])的胫骨在60天的学习
组织病理学评价骨折愈合(基于分级系统由艾伦et al。22])的解剖右胫骨后60天的学习 |
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| Durak et al。23] |
新西兰雄性白兔子
(控制= 10;
治疗= 10) |
右股骨(正常骨模型) |
手动压力测角 |
关闭骨折 |
外固定使用石膏固定。 |
20毫克/公斤生育酚(肌肉)前1小时和当时的过程。
20毫克/公斤/天生育酚(肌肉)术后 |
5天 |
对照组不接受任何治疗。 |
组织病理学评价骨折愈合(基于分级系统由艾伦et al。22])的右胫骨解剖后的21天。 |
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| Sarisozen et al。24] |
成人Sprague-Dawley老鼠
(控制= 12;
维特。E只有
治疗= 12;
维特。C只
治疗= 12;
维特。E和维特。C组合
治疗= 12) |
右股骨
(正常的骨骼模型) |
手动压力测角 |
关闭骨折 |
骨折了原位 |
40毫克/公斤α生育酚(腹腔)每天从第一天到第三天,从第四天开始每周3次 |
14天
21天 |
对照组不接受任何治疗
维特。维特只C组200毫克/公斤。C每日(腹腔)从第一天到第三天,从第四天开始每周3次
维特。C和维生素。E组40毫克/公斤维特组合。服用维生素E和200毫克/公斤。C每日(腹腔)从第一天到第三天,从第四天开始每周3次 |
放射学评价骨折愈合(基于Oni的无情指数计算等。25])右胫骨的老鼠在14和21天牺牲了
组织病理学评价骨折愈合(基于分级系统由艾伦et al。22])的右胫骨解剖老鼠牺牲在14和21天 |
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