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寄生学研究杂志
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寄生学研究杂志/2017/文章

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体积 2017 |文章的ID 5056314 | https://doi.org/10.1155/2017/5056314

蒂亚戈·门德斯，凯伦·米诺里，玛琳·乌塔，达尼洛·西克内·米格尔，西尔玛拉·马奎斯·阿莱格莱蒂， ＂强调强调诊断和药物研究的强肌腱病"，寄生学研究杂志， 卷。2017， 文章的ID5056314， 13. 页面， 2017． https://doi.org/10.1155/2017/5056314

强调强调诊断和药物研究的强肌腱病

Tiago Mendes.，1 凯伦Minori，1 玛琳Ueta.，1 达尼洛·西科尼米盖尔，1 和 Silmara Marques Allegretti.1

1动物生物学系，校园大学（Unicamp），坎皮纳斯，SP，SP，SP，SP，SP

学术编辑：d·s·林赛
收到了 2016年10月25日
接受 2016年12月08
发表 2017年1月22日

抽象的

强肌腱病是由线虫引起的寄生虫忽视疾病类圆线虫属stercoralis影响着全世界3000万到1亿人。与酒精中毒、器官移植和HTLV-1病毒密切相关的并发症往往由于诊断较晚而出现，经常导致患者死亡。在处理这种寄生虫时，缺乏先发制人的诊断并不是唯一的困难，因为没有黄金标准的诊断技术，而且所用的诊断技术存在与敏感性相关的问题，导致假阴性。治疗也是一个问题，因为使用伊维菌素和苯并咪唑会导致不一致的治愈率和一些副作用。研究新的反类圆线虫属毒品是一项艰巨的任务S. Stercoralis.要到成年阶段才发育亩肌肉（除了SCID小鼠外），主要实验主机模型。幸运的是，可以使用另一种寄生虫模型，肌腱喇叭和S.委内瑞斯。然而，即使在这些模型中，寻找新药物也存在其他并发症，这些药物与特定的体外测定方案步骤相关，例如幼虫去污。在这篇综述中，我们突出了与新药物搜索相关的挑战，测试的化合物，以及发表的体外测定方法的清单。到目前为止，我们还指出了抗强肌腱病诊断的进展。

1.介绍

抗肌腱引起的抗肌腱引起的属植物类圆线虫属，是一个疏忽疾病，普遍存在的普遍存在，拉丁美洲，欧洲，亚洲和撒哈拉以南非洲[1］.在人类，类圆线虫属stercoralis，也可以寄生在其他哺乳动物，如狗或猫，是主要的物种[2，3.］.据认为，由于不适当或低灵敏度诊断技术，估计在全球范围内被感染了30％至1亿人。3.］.

在免疫诊断或宿主免疫反应方面，已经发表了几项使用小鼠模型的研究，试图理解仍然未知的免疫方面[4- - - - - -10.］.免疫抑制与感染加重相关，主要是在HTLV-1病毒合并感染、酒精中毒和使用糖皮质激素的病例中[11.- - - - - -14.］.理解这种特殊背景下的寄生虫行为将不仅可以允许更好的治疗方法的研究和开发，但也能够导致检测寄生虫负荷感染的更好的诊断方法，使患者在健康状况下会恶化。

Ivermectin是反对的选择药物S. Stercoralis.;但是，它的使用受到了若干国家的限制，并且关于应给予多少剂量或每种剂量之间的时间，尚未达到多少剂量。Ivermectin还显示出不规则的固化率，免疫活性患者的55％至100％之间[29.- - - - - -31.］.其他药物如阿糖唑（38至87％之间的固化率）及其类似物也被使用，噻吩唑是最常用的，固化率在52和100％之间，虽然其使用可能导致恶心等副作用，呕吐，厌食症，哮喘和腹泻以及神经系统效应，如头晕，困倦和迷失方向，使其使用不鼓励健康专业人士[29.，31.］.

在这篇综述中，我们强调开发具有更高敏感性的新诊断技术的必要性和强制性的重要性S. Stercoralis.不仅要筛查器官捐赠者和接受者，还要筛查免疫抑制患者。此外，目前还缺乏更有效的治疗策略来治疗圆线虫病患者，需要建立更充分的剂量和研究新药/药物配方。然后，本文总结了目前正在搜索的药物清单和所采用的方法。

2。S. Stercoralis.免疫抑制和诊断

HTLV-1是属于日本，撒哈拉以南非洲，黑素节，中东和南美洲的逆转录像家庭的RNA逆转录病毒。与T细胞淋巴瘤有关，HTLV-1已与之相关S. Stercoralis.感染由于它抑制了宿主的免疫系统，允许寄生虫建立感染[32.- - - - - -37.］.

进入T细胞后，龙眼病毒加剧了细胞生产，产生了加剧的TH1响应，具有高水平的INF-γ肿瘤坏死因子-β，和IL-2以及IL-4，IL-5和IL-10生产的下降[38.，39.］.病毒引起的免疫抑制促进大量S. Stercoralis.感染，由于寄生虫传播，使治疗困难。在报道的病例中，与该辛融合相关的最常见的症状学中包含呕吐，腹泻，体重减轻，咳嗽，并且在某些情况下，幼虫和/或成年女性可以在痰中找到[14.，32.- - - - - -36.，39.，40］.

酗酒也与之有关S. Stercoralis.感染[13.，41.］.乙醇抑制免疫系统，并且当过度消耗时，导致行为变化，这可以进一步暴露于已经受损的宿主进行感染[41.］.在Silva等人发表的一篇论文中[13.]，S. Stercoralis.酒精中毒患者的感染率(23.5%)高于非酒精中毒患者(5.4%)。在酒精中毒患者中，81.3%表现出较高的寄生虫载量，提示高皮质醇水平(通常与酒精中毒有关)可能导致大规模感染。乙醇水平的增加会导致皮质激素的增加，降低t细胞的功能并增加S. Stercoralis.女性生育能力(13.]，警报不仅是酒精患者，还需要服用皮质类固醇的患者都存在风险。

有几例接受器官移植的患者，每天使用皮质类固醇，由于S. Stercoralis.感染，往往导致他们的死亡[42.- - - - - -56.］.通常，在移植病人中，只有在并发症出现后才会被诊断为圆线虫病，这表明在移植之前需要进行先发制人的诊断，不仅是对受者，而且对供者，因为已经描述了通过受感染器官的病例[57.］.在Luvira等人发表的一篇论文中[58.]使用335名免疫功能性患者，使用3种诊断技术，8例感染S. Stercoralis，在哪里类圆线虫属通过间接酶联免疫吸附测定（ELISA）的IgG检测仅显示42.9％的灵敏度。Steinmann等人。［59.还观察到，在治疗失败但寄生载量减少的情况下，诊断测试通常未能检测到剩余的寄生虫，表明需要更敏感的测试。

由于S. Stercoralis.能够自动感染宿主，只有完全治愈才能消除未来并发症的风险;因此，必须采用能够检测轻微和轻微感染的准确诊断方法[60.］.目前，没有金标准诊断技术S. Stercoralis.［61.，62.］．常规诊断通常包括寄生虫学和/或血清学方法，尽管它们的效果并不好[60.］.采用几种寄生虫学方法检测粪便样品中的幼虫，包括Baermann法、福尔马林-乙酸乙酯法、原田-森培养法和琼脂平板培养(ACP);然而，由于寄生虫载量低和幼虫清除不规律，这些检测的灵敏度较低(21至89%)，因此有必要在数天内收集若干粪便样本[7，60.，63.］.在这些方法中，ACP被认为是最有效但也是最费力的方法，需要2 - 3天，需要新鲜的粪便样本和经验丰富的技术人员[7，63.- - - - - -65.］.

已经研究了几种免疫技术，包括酶联免疫吸附测定（ELISA），间接凝集，间接免疫荧光和Western印迹，其均具有不同的敏感性和特异性，这取决于抗原和同位素的抗粘蛋白制剂[6，9，66.- - - - - -78.］.免疫学方法的敏感性高于传统的寄生虫学方法;然而，由于与其它[6，67.，68.由于抗体持续存在而出现假阳性。尽管对免疫检测的特异性存在担忧，但一些研究在使用内部间接免疫荧光抗体检测(IFAT)方面显示出了有希望的结果(灵敏度97%;特异性~100%)或ELISA(敏感性>97%;特异性~ 100%)[60.，72.，79.］.即便如此，需要进一步研究来优化它们的使用。还应该注意到，在免疫抑制的患者中，免疫诊断可能是棘手的，由于血清抗体检测的敏感性降低，在患者更免疫的患者的情况下，敏感度越低[60.，80］.基于人类圆线虫病诊断的血清学和流行病学研究通常使用血清学和粪便培养，而一些研究人员已经开始使用PCR(常规或非常规)，尽管不太频繁[80］.

在诊断技术中，聚合酶链反应（PCR）的利用（常规PCR（CPCR），巢式PCR或实时PCR（QPCR））[7，8，62.，79.- - - - - -91.]一直被认为是一种有价值的方法。与寄生虫学或免疫学方法相比，PCR方法具有更高的敏感性，甚至有研究表明，敏感性可能因提取方法而异[7，62.，79.，80，82.，86.，88.，89.］.因此，优化和标准化DNA提取方法非常重要，以提高分子诊断敏感性。

基于QPCR的诊断已经更频繁地应用，显示出高的灵敏度和特异性。它的使用可能代表诊断所需的时间量和增加寄生虫检测成功，不仅用于粪便样本，而且用于患者的脑脊液样本类圆线虫属相关脑膜炎[8，62.，75.，79.，83.，84.，87.，88.，91.］.目前，QPCR是由于与CPCR相比的敏感性更高的敏感性（敏感性76,7％;特异性84,3％）[84.]，但它的成本也高于cPCR。Sharifdini等人[62.]发现巢式pcr的灵敏度(灵敏度100%，特异度91.6%)高于qPCR(灵敏度84.7%，特异度95.8%)，是一种成本较低的可能选择。

更好的诊断工具S. Stercoralis.需要感染。寄生方法显示出不令人满意的敏感性，即使进行APC，虽然血清学诊断显示出良好的敏感性，但有几个关于交叉反应的担忧[6，7，60.，67.- - - - - -73.，75.，76.］.分子诊断可以被认为是在某些研究和临床实验室中使用的有希望的工具，但到目前为止没有标准化方法[12.，40，92.- - - - - -95.］.优化S. Stercoralis.诊断无疑是对抗圆线虫病的关键一步，这样就可以避免未来由这种寄生虫引起的并发症和/或死亡。

3.模型类圆线虫属临床前调查和药物研究中的感染

治疗类圆线虫属感染是一项重大挑战。Ivermectin是最有效的药物S. Stercoralis.;但是，它在若干国家没有获得许可，并且需要更好地评估治疗方案[29.，30.］.虽然阿苯达唑和其他苯并咪唑可以作为替代品，但其效率低于伊维菌素[30.]，在投资和寻找替代反应方面表现出迫切需要类圆线虫属药物。

从历史上看，亩肌肉小鼠是生物医学研究中了解基础生物学和疾病最常用的模型。然而，小鼠和大鼠不容易受到S. Stercoralis.感染 [2，96.- - - - - -98.由于幼虫渗透皮肤并迁移到肺部，朝向骨骼肌移动，不能促进甚至无法促进肠道的专利感染，因此不可能维持寄生虫，并在实验室常规中使用非常具有挑战性［2，97.，99.］.有趣的是，就像有免疫能力的小鼠，在裸鼠(t细胞缺陷)中，S. Stercoralis.在小肠中不成熟。然而，在SCID小鼠(T和b细胞缺陷)中，整个S. Stercoralis.循环可以复制，但由于成本高和免疫系统受损的特殊需要限制了其使用[96.］.

肌腱喇叭是第一种用于研究圆线虫病的替代模型，数年后，昆西斯酮乙烯丝也被认为是适合这种疾病的模型。虽然利用这些物种的感染有一些限制，主要是由于没有自身感染(存在于S. Stercoralis.)，美国ratti和S.委内瑞斯自然是感染啮齿动物，也具有内源性和外源周期，是了解强肌腱病生物和免疫学的重要模型，并寻求新药物替代品类圆线虫属［100.- - - - - -103.］.

狗和灵长类自然会感染S. Stercoralis.［104.］.直到90年代，由于缺乏啮齿动物的模型，大多数实验室都使用它们作为实验S. Stercoralis.宿主，研究寄生虫生物学和免疫学[19.］.即使现在有些实验室仍在使用它们，无论是用于寄生虫维持或实验室实验[18.，104.]当Nolan等人时，他们的使用减少了。［23.]发表了一篇论文，证明沙鼠(梅里恩unguiculatus）能够发展类似于人类观察到的慢性感染。Gerbils开发长期感染（〜130天），可以用类固醇治疗诱导自动化，导致巨大的Hypernfection，通常与人类免疫抑制有关，使得对宿主寄生虫相互作用的许多生物学和免疫方面的重要模型进行了巨大的模型[18.，19.，23.］.

在研究新的反类圆线虫属为了确保感染的质量，需要考虑一些要求，如使用未经污染的幼虫，这可能是一个挑战，因为它们是从粪便中获得的[15.］.鉴于幼虫去污对感染程序的重要性，关于这一步骤的协议总结在表中1．
物种 过程 无菌状态的确认 幼虫用 参考
S.委内瑞斯 (i)从Bearman培养物中采集L3幼虫
（ii）将幼虫在0.25％次氯酸钠溶液中洗涤10分钟
（iii）将幼虫暴露于苄基甲霉素（180mg / L）和Ceftazidime（1mg / ml）（30或60分钟）		 将幼虫置于含硫乙醇肉汤的试管中，在25°C和37°C孵育7天，并灌注脑和心 NIH无菌小鼠感染 ［15.］
S.委内瑞斯 (i)从Bearman培养物中采集L3幼虫
（ii）在含有青霉素（100II / ml），链霉素（0.1mg / ml）和氟康唑（0.8mg / ml）的蒸馏水中，将幼虫在蒸馏水中洗涤6次20分钟。		 28℃血琼脂培养24h 96孔板测定含水 ［16.］
美国ratti （i）L3幼虫在PBS缓冲液中洗涤3次 - - - - - - 6孔板测定含有4mL PBS缓冲液（pH 7.3） ［17.］
S. Stercoralis. (i)将L3幼虫浓缩悬液置于37℃水浴中。
（ii）1体积的低熔点琼脂糖（除盐水中3％低熔点琼脂糖; 50 mm Na2HPO4;22毫米KH.2宝4;将70mM NaCl）在37℃下与2体积的浓缩寄生虫悬浮液混合（该操作在37℃下用水浴中的管进行，以避免凝固）。
（iii）将100mm的培养皿置于冰上，将5ml寄生虫悬浮液中的1％琼脂糖灭吸在板的中心，避免与板的侧面接触
（iv）凝固后，将10-20ml在37℃下的Bu盐水加入到板上，并在37℃下孵育30分钟的活虫在此期间从琼脂基质迁移到周围培养基中
(v)然后收集液体介质并转移到15ml锥形离心管中。蠕虫可以通过重力沉淀法15分钟或500 rpm离心5分钟		 - - - - - - 体外测定 ［18.］
S. Stercoralis. (i)从琼脂培养中收集L3幼虫
(ii)用含青霉素(100 U/mL)和链霉素(0.1 mg/mL)的盐水(PBS)清洗幼虫数次		 - - - - - - 沙鼠(Merionesunguiculatus)感染 ［19.］
S.委内瑞斯和美国ratti （i）用两性霉素B在室温下在室温下孵育L3幼虫（0.25 μg/mL)和头孢曲松(20μg / ml） - - - - - - 96孔板测定，用1%融化的琼脂 ［20.］
S. Stercoralis. (i) L3幼虫用M9缓冲液洗两次
（II）除去上清液，并重新悬浮在残留体积中的蠕虫颗粒
（iii）将蠕虫加入到含有Percoll溶液的锥形离心管中，以40％补充有25mm Heppes和10,000 u青霉素/ 10mg链霉素
（iv）将悬浮液以1000rpm离心2分钟，用m9缓冲液洗涤两次		 - - - - - - 体外测定 ［18.］
S. Stercoralis. (i)从木炭培养物中收集L3幼虫，用100 U/mL青霉素、0.1 mg/mL链霉素和0.1 mg/mL庆大霉素的无菌RPMI离心和重悬洗涤
（ii）之后，在琼脂糖后，将它们在2％的低熔点溶液溶液中置于2％的低熔融琼脂糖溶液中20分钟，并在琼脂糖后加入PBS（补充有100U / mL青霉素，0.1mg / ml链霉素和0.1mg / ml庆大霉素）凝固
（III）然后收获迁移到PBS溶液中的幼虫		 - - - - - - L-3抗原溶解 ［21.］
“-”:不执行或不显示。
表1
协议用于类圆线虫属spp。L3幼虫去污。

在体外化合物和药物检测测定中可以提及相同的方法。目前，很少有反类圆线虫属新药研究论文已发表;但是，考虑到少数，使用了大量多样化。这些论文中评价的参数包括幼虫存活，由寄生虫运动和蛋孵化确定（表2）[16.，17.，22.，24.，25.］.2-(丁基氨基)十六烷-1-醇的活性Newbouldia光滑的精油,花椒属植物zanthoxyloides精油对美国ratti和S.委内瑞斯或者eryngium foetidum粗提取物和eryngial（Trans-2-Dexecenal）反对S. Stercoralis.［16.，21.，22.)(表3.）.另一方面，在Vivo公布的数据中（概述在表格中）4)并不一定支持体外获得的结果。例如，在Legarda-Ceballos等人进行的一项研究中。16.]，在四种体外实验结果有希望的化合物中，只有一种能够将小鼠的寄生虫载量降低~60%。化合物来源于吹笛者结核，具有已知的杀虫、杀锥虫和杀真菌作用，化合物来源于Lippia Sidoides.，对某些细菌有效AEDES AEGYPTI.幼虫，无效S.委内瑞斯体内。Monepantel (AAD 1566)在兽医学中被用作驱虫剂，但效果不佳美国ratti体内(27.，28.］．TREDIMIMIDINE表现出效率美国ratti在体内单次给药50mg /kg后感染72 h，可降低感染率98.9% [17.];然而，当用于临床试验时，在感染了S. Stercoralis，治愈率下降了54,5％[105.］.考虑到总结的数据，很明显，实验室寄生虫模型是极其重要的，尽管在跨越时可能会出现一些限制S. Stercoralis。减少这些障碍的另一种方法是使用沙鼠（Meriones Unguiculatus），啮齿动物模型易感S. Stercoralis.在实验免疫抑制时显示出自身敏感的感染[23.］.不幸的是，使用沙鼠作为体内感染模型进行药物分析仍然非常有限;直到最近，只有一项研究证明了伊维菌素对这些疾病的疗效S. Stercoralis.来华的动物(19.］.
物种 目的 过程 参考
S.委内瑞斯 L3幼虫活动及生存能力观察 (i)将100只L3消毒过的幼虫加入96孔板的水中。
(ii)加入化合物，平板在28°C孵育72 h。
（iii）通过XTT比色法量化幼虫活力。并通过使用倒置显微镜和摄像机通过暴露于2分钟的照射运动（通过接触2分钟）。
(iv)在治疗后24、48、72小时进行观察。
（v）在观察2分钟后未检测到移动时，幼虫被认为死亡。		 ［16.］
美国ratti 有卵孵化作用的化合物 (i)将粪便在水中均质，并通过含有250、125 e 40的筛子过滤μm。
（ii）收集卵并离心（5分钟，3,500×g）。
(iii)去除上清，加入350 g/L的NaCl溶液。
(iv)混合物均质，然后离心5分钟(3500 ×g)）．		 ［22.］
（v）将上清液通过40过滤 μ用筛子洗净，用水提取鸡蛋。
鸡蛋分布在96孔板上(每孔100个鸡蛋，200个μL最后卷)。
(vii) 23℃孵育48 h。
(viii)停止孵育，加入甲醛溶液(10% PBS)。
（IX）L1幼虫和鸡蛋从200次计数 μl计算等分试样和阴影百分比。
美国ratti 影响L3幼虫迁移的化合物 （i）将L3幼虫在20℃下在与提取物混合的PBS溶液中温育3小时。
（ii）在PBS溶液中洗涤幼虫3次并离心。
(3) 800μL浓度为1000 L3/mL的幼虫悬液置于20μM过滤器。
(iv)将过滤器添加到与PBS溶液表面接触的锥形管中。
（v）在3小时后，丢弃过滤器上方的幼虫，并使用光学显微镜计算通过网眼渗透到PBS的那些，并计算迁移百分比。		 ［23.］
美国ratti 对L3幼虫具有杀幼虫活性的化合物 (i) L3幼虫用PBS洗涤3次，置于含4ml PBS溶液的6孔板中孵育。
(ii)添加化合物并将幼虫孵育96 h(25°C, 5% CO)2）.
（iii）使用光学显微镜在1,2,24,48,72和96h下进行观察。		 ［17.］
S. Stercoralis. 影响L3幼虫运动的药物 （i）〜1克粪便在一块滤纸的中心涂抹并在玻璃管中添加。将5ml测试药物加入到25℃下孵育的管的底部。
(ii)在第3天和第5天对试管进行分析，通过它们的运动来评估药物对蠕虫生存能力的影响。		 ［24.］
S. Stercoralis. 影响L3幼虫死亡率的化合物 (i)将犬粪便加入琼脂平板，室温静置3 ~ 5天。
（ii）收集迁移到板盖的L3幼虫，用盐水溶液（0,85％，pH7.4）洗涤，并离心（2000 rpm，5分钟）。
(iii)用青霉素G (1000 IU)和链霉素(0,1 mg/mL)的PBS (0.1 M, pH 7.4)冲洗小球3次。
（iv）以1,000幼虫/ ml的终浓度加入1ml幼虫悬浮液至1ml测试化合物。
(v)板在37℃5% CO中孵育2大气层。
（vi）通过在光学显微镜下观察后通过幼虫运动评估死亡率七天。		 ［25.］
S. Stercoralis. 影响L3幼虫死亡率的化合物 （I）在洛克的线虫盐水（LNS）含有植物提取物（50mg / mL）和曙红（0.1mg / ml）的悬浮液中的50L3幼虫在计数之间的无可光环境中保持。
(ii)评估幼虫为活动的、不活动的(未染色)和死亡的(伊红染色)。
（iii）通过将最有效的提取物（最短时间）的LT5分开通过每个提取物的LT50来计算相对活性（Ra）。		 ［26.］
表2
用于体外药物/化合物试验的方案。
物种 化合物 LD50 IC50 / 标准 参考
S.委内瑞斯 2-（丁基氨基）十六烷-1-OL LD50 = 52μ米 L3幼虫死亡 ［16.］
(2) - Ethylamino hexadecan-1-ol LD50 = 52μ米
叔,丁N- （1-氨基二癸癸-2-基）氨基甲酸酯 ld50 = 39. μ米
叔丁N氨基甲酸- (1-aminohexadecan-2-yl) LD50 = 39.1μ米
美国ratti 花椒属植物zanthoxyloides香精油 IC50 = 19.5 μ克/毫升 鸡蛋孵化抑制 ［22.］
IC50 = 46. μ克/毫升 L3幼虫迁移抑制
Newbouldia光滑的香精油 IC50 = 18.2μ克/毫升 鸡蛋孵化抑制
IC50 = 36. μ克/毫升 L3幼虫迁移抑制
美国ratti Tribendimidine 100% L3幼虫10时死亡µG / ml（24小时） L3幼虫死亡 ［17.］
S. Stercoralis. Cardiospermum halicacabum.水提物 LD50 = 2000µ克/毫升(< 24小时) L3幼虫的生存 ［25.］
Cardiospermum halicacabum.ethanolic提取 LD50 = 2000µ克/毫升(> 36 h)
S. Stercoralis. eryngium foetidum原油提取物 RA = 1.00 L3幼虫死亡 ［26.］
的原油提取物 ra = 0.606.
五角美国原油提取物 RA = 0.452.
Tamarindus indica.原油提取物 Ra = 0.437.
拜登pilosa原油提取物 RA = 0.414
Picrasma Excelsa.原油提取物 RA = 0.380
cecropia peltata.原油提取物 RA = 0.371
Rivina云淡的原油提取物 RA = 0.371
含羞草帕丁原油提取物 Ra = 0.366.
特别美味的食物hispida原油提取物 RA = 0.346
Rhytidophyllum tomentosum原油提取物 Ra = 0.242.
Stachytarpheta jamaicensis原油提取物 Ra = 0.235.
葫芦塔辣椒原油提取物 RA = 0.234.
萝藦原油提取物 Ra = 0.225.
azadirachta indica.原油提取物 Ra = 0.213.
ChenopoPodium Ambrosioides.原油提取物 Ra = 0.206.
Allium Sativum.原油提取物 Ra = 0.205.
Centrostachys indica.原油提取物 Ra = 0.205.
Annona Squamosa.原油提取物 ra = 0.203
芦荟vulgaris.原油提取物 RA = 0.196
穿心莲香原油提取物 RA = 0.191
Eryngial (反式2-dodecenal) 24 h LD50 = 0.461 mM 48 h LD50 = 0411
:中等致死剂量;IC50:半最大抑制浓度;RA:最有效提取物(最短杀伤50%时间)的相对活性(RA) LT50除以各提取物的LT50。
表3
在体外试验中使用的药物/化合物类圆线虫属spp。
物种 动物模型 化合物 反类圆线虫属活动 寄生虫减负荷 剂量 参考
S.委内瑞斯 CD1小鼠 2-（丁基氨基）十六烷-1-OL 是的 56％ 20 mg/kg/d，持续5天，感染后1天 ［16.］
(2) - Ethylamino hexadecan-1-ol 不 45％
叔,丁N- （1-氨基二癸癸-2-基）氨基甲酸酯 不 21％
叔丁N氨基甲酸- (1-aminohexadecan-2-yl) 不 50％
美国ratti Wistar大鼠 Monepantel（AAD 1566） 不 0％ 32 mg / kg ［27.］
S.委内瑞斯 Wistar大鼠 吹笛者结核提炼 不 没有显示 150毫克/公斤 ［28.］
Wistar大鼠 Lippia Sidoides.香精油 是的 74.4% 150毫克/公斤
ratti年代 Wistar大鼠 Tribendimidine 是的 98.9％ 感染后50 mg / kg 72小时 ［17.］
表4
用于体内试验的药物/化合物类圆线虫属spp。

4.结束言论

圆线虫病是一种被忽视的世界性疾病，其并发症通常与酒精中毒、器官移植、HTLV-1病毒和免疫抑制密切相关[11.- - - - - -14.］.必须强调的是，即使是早期诊断，与检测灵敏度有关的问题也可能导致假阴性，因此需要新的诊断方法。一些诊断方法(主要是免疫学和分子)正在研究中，并显示出巨大的潜力，但在考虑将其作为市场上可用的替代方法之前，还需要进行更多的研究[6，63.，67.，79.，81.］.由于伊维菌素不规则治疗率和对每项给药之间的剂量数和时间缺乏共识，治疗可能难以和不成功。29.- - - - - -31.］.新的药物研究是一个挑战S. Stercoralis.不感染最常用的实验室模型，亩肌肉和鼠形［98.］.使用美国ratti和S.委内瑞斯是这一领域的一个重要选择;然而，自愈和这些检测中缺乏标准化方法似乎限制了多年来替代疗法研究的数量[10.，97.，98.，100.］.

在本综述中，我们指出了强烈的肌腱病原体早期诊断以及一些正在调查的新诊断方法。此外，我们总结了新药研究中使用的不同方案，并且在体外和体内测试了哪种化合物，以试图在针对发现新型抗的临床前研究中阐明一些光类圆线虫属候选人．

相互竞争的利益

提交人声明没有与本文的出版物相关的竞争利益。

参考

  1. S. Puthiyakunnon，S.Boddu，Y.Li等，“强烈的强血症 - 洞察其全球普遍存在和管理”PLoS被忽视的热带病，卷。8，不。8，2014年物品ID e3018,2014。查看：出版商网站|谷歌学术
  2. h·j·道金斯和d·i·格罗夫，"试图建立感染类圆线虫属stercoralis在老鼠和其他实验动物中，”寄生虫学杂志》第56期1，页23-26,1982。查看：出版商网站|谷歌学术
  3. M. Beknazarova，H. willy和K. Ross，Strongyloidiasis：社会经济缺点的疾病，“国际环境研究与公共卫生杂志，第13卷，第2期2016年第517条第5款。查看：出版商网站|谷歌学术
  4. A. L. R. Gonçalves, K. C. L. de Araújo, E. F. G. Carvalho, M. T. Ueta, J. M. Costa-Cruz，“对孤雌线虫和委内瑞拉圆线虫卵的特异性IgG和免疫复合物反应，用于诊断感染大鼠的免疫抑制，”寄生虫学杂志》，卷。90，没有。3，pp。342-346,2015。查看：出版商网站|谷歌学术
  5. D. R. Herbert, J. J. Lee, N. A. Lee, T. J. Nolan, G. A. Schad，和D. Abraham，“IL-5在小鼠对粪圆线虫幼虫先天和适应性免疫中的作用”，免疫学杂志，第165卷，第165号8、2000年。查看：出版商网站|谷歌学术
  6. M. Boscolo，M.Gobbo，W. Mantovani等，“评估抗施酮类别的间接免疫荧光测定作为诊断和随访的工具，”临床和疫苗免疫学第14卷第2期2，页129-133,2007。查看：出版商网站|谷歌学术
  7. L. A. Chaves, A. L. R. Gonçalves, F. M. Paula et al.，“用寄生虫学、免疫学和分子方法评估实验性感染免疫抑制大鼠粪便样本的比较昆西斯酮乙烯丝”,寄生虫学，第142卷，第2期。14, pp. 1715-1721, 2015。查看：出版商网站|谷歌学术
  8. J. Gomez-Junyent, D. Paredes-Zapata, E. R. de Las Parras等，“实时聚合酶链反应检测粪便中的传播类圆线虫属stercoralis从受感染的供体到实体器官移植的接受者"美国热带医学与卫生杂志，卷。94，没有。4，pp。897-899,2016。查看：出版商网站|谷歌学术
  9. A. L. R. Gonçalves, G. A. Machado, M. R. F. Gonçalves-Pires, A. Ferreira-Júnior, D. A. O. Silva，和J. M. Costa-Cruz，“通过寄生虫学和血清学分析评估犬舍狗和饲养者的圆线虫病”，兽医寄生虫学，卷。147，没有。1-2，pp。132-139,2007。查看：出版商网站|谷歌学术
  10. D. I. Grove，C. Northern和P. J. Heenan，“类圆线虫属stercoralis小鼠肌肉感染:研究圆线虫病全身性阶段的模型病理，卷。18，不。1，pp。72-76,1986。查看：出版商网站|谷歌学术
  11. A. Alsharif, A. Sodhi, L. C. Murillo, A. S. Headley, D. Kadaria，“等等!!”这种哮喘没有类固醇，”美国案件报告，第16卷，第398-400页，2015。查看：出版商网站|谷歌学术
  12. E.A.Rodriguez，T.Baraham和F.K. Williams，“皮质类固醇治疗后的阴性血清学严重的抗阵挛性，”美国案件报告，第16卷，第95-98页，2015。查看：出版商网站|谷歌学术
  13. M.L.S.Silva，E.J.Nyês，A. B. S. Souza等，“之间的协会类圆线虫属stercoralis酒精中毒患者的皮质醇分泌和感染Acta Tropica， 2016, vol. 154, pp. 133-138。查看：出版商网站|谷歌学术
  14. M. Montes, C. Sanchez, K. Verdonck等人，“htlev -1和蛔虫合并感染中的调节性T细胞扩增与IL-5应答降低有关类圆线虫属stercoralis抗原。”PLoS被忽视的热带病，卷。3，e456，2009年。查看：出版商网站|谷歌学术
  15. W. A. Martins, A. L. Melo, J. R. Nicoli等人，“一种净化的方法昆西斯酮乙烯丝在无菌和常规小鼠中研究圆线虫病的幼虫，”医学微生物学杂志，第49卷，第49期。4，页387-390,2000。查看：出版商网站|谷歌学术
  16. A. L. Legarda-Ceballos, J. López-Abán, E. Del Olmo等人，”在体外和体内评价2-氨基烷醇和1,2-链烷二胺衍生物的反对昆西斯酮乙烯丝”,寄生虫和向量， 2016年第9卷，第364条。查看：出版商网站|谷歌学术
  17. J. Keiser, K. Thiemann, Y. Endriss, J. Utzinger，肌腱喇叭：在体外和体内tribendimidine活动”,PLoS被忽视的热带病，第2卷，第2期第1条e136,2008年。查看：出版商网站|谷歌学术
  18. 洛克先生，"类圆线虫属stercoralis：寄生线虫生物学翻译研究模型，“蠕虫手册，页1-18,2007。查看：谷歌学术
  19. P. Sithithaworn，Y.Fijimaki，Y.Mitsui，R.Prasanthong，W. Yutanawiboonchai和Y.Aoki，“Ivermectin的疗效”类圆线虫属stercoralisJirds的感染个案(梅里恩unguiculatus），“寄生虫学实验，卷。89，没有。2，pp。205-212,1998。查看：出版商网站|谷歌学术
  20. A. C. Kotze，S.Clifford，J.O'Grady，J.M. Behnke和J.S.Mccarthy，“一个体外幼虫动力测定，以确定人钩虫的血清敏感性类圆线虫属物种”,美国热带医学与卫生杂志，第71卷，第71期5, 2004。查看：谷歌学术
  21. D. R. Herbert，T. J. Nolan，G. A. Schad，S. Lustigman和D.Brearaham，“免疫亲亲人 - 分离的抗原诱导幼虫保护免疫力类圆线虫属stercoralis在老鼠中，“寄生虫学实验号，第100卷。2，页112-120,2002。查看：出版商网站|谷歌学术
  22. P. A. Olounladé， E. V. B. Azando, M. S. Hounzangbé-Adoté et al.，“植物精油的体外驱虫活性花椒属植物zanthoxyloides和Newbouldia光滑的反对肌腱喇叭”,寄生虫学研究号，第110卷。4, pp. 1427-1433, 2012。查看：出版商网站|谷歌学术
  23. T. J. Nolan，Z. Megyeri，V.M.Bhopale和G. A. Schad，“类圆线虫属stercoralis：蒙古·阿伯利尔（蒙古）（梅里恩unguiculatus），“传染病杂志，卷。168，不。6，PP。1479-1484,1993。查看：出版商网站|谷歌学术
  24. P. M. Intapan, T. K. Prasongdee, P. Laummaunwai, K. Sawanyawisuth, S. Singthong, and W. Maleewong，“简短报告:筛选的改良滤纸培养技术类圆线虫属stercoralis伊维菌素在临床标本中的敏感性，“美国热带医学与卫生杂志，卷。75，没有。3，pp。563-564，2006。查看：谷歌学术
  25. T. Boonmars, W. Khunkitti, P. Sithithaworn, Y. Fujimaki， "体外抗寄生虫活性的提取物Cardiospermum halicacabum.对三龄幼虫类圆线虫属stercoralis”,寄生虫学研究第97卷第1期5，页417-419,2005。查看：出版商网站|谷歌学术
  26. W. M. Forbes, W. a . Gallimore, a . Mansingh, P. B. Reese, R. D. Robinson，“Eryngial (trans-2- dodecal)，一种生物活性化合物eryngium foetidum:鉴定、化学分离、表征及与伊维菌素的比较在体外”,寄生虫学，第141卷，第141期2，pp。269-278,2014。查看：出版商网站|谷歌学术
  27. L. Tritten, A. Silbereisen和J. Keiser， "在体外和体内monepantel (aad1566)对人体肠道线虫感染实验室模型的疗效PLoS被忽视的热带病，卷。5，不。12，物品ID E1457，2011。查看：出版商网站|谷歌学术
  28. C. O. Carvalho, A. C. S. Chagas, F. Cotinguiba et al.，“植物提取物的驱虫作用Haemonchus contortus和昆西斯酮乙烯丝”,兽医寄生虫学第183卷，第183期。3-4, pp. 260 - 268,2012。查看：出版商网站|谷歌学术
  29. Z. Bisoffi，D. BuonFrate，A. Montresor等，“类圆线虫属stercoralis：一个辩诉的行动，“PLoS被忽视的热带病，第7卷，第5期5、文章编号e2214, 2013。查看：出版商网站|谷歌学术
  30. G. Panic，U. Duthaler，B. Speich和J. Keizer，“重新施肥治疗和控制蠕虫感染”，“国际寄生虫学杂志：毒品和耐药性，第4卷，第4期。3，pp。185-200,2014。查看：出版商网站|谷歌学术
  31. V. Luvira，D. Watthanakulpanich和P.Pittisutthum，“管理类圆线虫属stercoralis：令人费解的寄生虫，“国际健康，第6卷，第2期4, pp. 273-281, 2014。查看：出版商网站|谷歌学术
  32. D. M.斯图尔特，R.Ramanathan，S.Mahanty，D.P.Fedorko，J. E.Janik和J. C. Morris，“传播类圆线虫属stercoralisHTLV-1相关成人T细胞白血病/淋巴瘤感染，“Acta Haematologica第126卷第1期2，第63-67页，2011。查看：出版商网站|谷歌学术
  33. P.R.S.Lagacé-Wiens和G. K. M. Harding，“加拿大移民繁殖类圆线虫属stercoraliS和人类T型淋巴细胞病毒1，“CMAJ.第177期5，页451-453,2007。查看：出版商网站|谷歌学术
  34. L. Rater，C. Grant，B. Zimmerman等，“治疗的影响类圆线虫属患有成人T细胞白血病患者HTLV-1表达的感染“美国血液学杂志，第82卷，第2期10，页929-931,2007。查看：出版商网站|谷歌学术
  35. S. Jansen，E. G. Rossatanga，S.Jurriaans，I. J. M. Ten Berge和M.P. Grobusch，“HIV-1的三重感染，HTLV-1和类圆线虫属stercoralis，渲染CD4.+T细胞计数误导性实体“抗病毒治疗，卷。18，不。7，pp。949-951,2013。查看：出版商网站|谷歌学术
  36. P. Hindy, R. Parvin, K. Hanna，和F. Gress，“在感染人类t细胞淋巴病毒1型患者中表现为十二指肠阻塞的圆线虫病”，胃肠内镜第74卷第1期2, pp. 439-441, 2011。查看：出版商网站|谷歌学术
  37. T. Kinjo, D. Nabeya, H. Nakamura等，“急性呼吸窘迫综合征由于类圆线虫属stercoralis感染宫颈癌患者，"内科，卷。54，不。1，pp。83-87,2015。查看：出版商网站|谷歌学术
  38. J. E. Weatherhead和R. Mejia， "对感染的免疫反应类圆线虫属stercoralis在感染患者和heffinfection中，“目前的热带医学报告，卷。1，不。4，pp。229-233,2014。查看：出版商网站|谷歌学术
  39. M. a . F.波尔图，a . Muniz, J. Oliveira Júnior，和e . M. Carvalho，“Implicações clínicas e imunológicas da associação entre o HTLV-1 e a estrongiloidíase，”Revista da Sociedade Brasileira de Medicina热带，第35卷，第641-649页，2002。查看：谷歌学术
  40. E.B.Kia，H.R.Rahimi，H.Mirhendi等，“慢性淋巴细胞白血病患者致命强震和分子表征的病例，”韩国寄生虫学杂志第46卷，第46期4，pp。261-263,2008。查看：出版商网站|谷歌学术
  41. M. P. Zago-Gomes、K. F. Aikawa、S. F. Perazzio、C. S. Gonçalves和F. E. L. Pereira，“酒精中毒患者肠道线虫患病率”，Revista da Sociedade Brasileira de Medicina热带第35期6，页571-574,2002。查看：出版商网站|谷歌学术
  42. F. A. Abanyie, E. B. Gray, K. W. Delli Carpini et al.，“2009-2013年美国实体器官移植受者中供体来源的固醇圆线虫感染”，美国移植杂志，第15卷，第5期。5，pp。1369-1375,2015。查看：出版商网站|谷歌学术
  43. B. A. Abdalhamid，A. N.A.M. Al Abadi，M. I. Al Saghier，A. A.Joudeh，M. A. Surehan和S. S. S. AMR，“类圆线虫属stercoralis肾移植受者感染，“沙特肾脏疾病和移植杂志，卷。26，不。1，pp。98-102，2015。查看：出版商网站|谷歌学术
  44. R.Agarwala，J.Sielewski和B. Biman，“肾移植后的肺抗弓形虫病，没有前往地方区域，”牛津医学案例报告， 2014年第5期。4, pp. 83-85, 2014。查看：出版商网站|谷歌学术
  45. C. Arango, C. Arango，和C. Seas，“临床热带医学图像:29岁肾移植患者急性呼吸衰竭，”美国热带医学与卫生杂志，卷。86，没有。6，pp。911-912,2012。查看：出版商网站|谷歌学术
  46. M. V. Batista, L. C. Pierrotti, E. Abdala等，“巴西实体器官移植受者的地方性和机会性感染”，热带医学和国际健康，第16卷，第5期。9，pp。1134-1142，2011。查看：出版商网站|谷歌学术
  47. L. O. Coster，“固体器官移植受者的寄生虫感染”北美传染病诊所，卷。27，不。2，pp。395-427,2013。查看：出版商网站|谷歌学术
  48. C. J.A.Ferreira，D.A.Da Silva，P.H.H.Almeida等，“肾移植后的致命散发致硫化物，”Revista da Sociedade Brasileira de Medicina热带第45卷第5期5，第652-654页，2012。查看：出版商网站|谷歌学术
  49. K. W. Hamilton，P.L.Abt，M. A. Rosenbach等，“捐赠者衍生的类圆线虫属stercoralis肾移植受者的感染移植，卷。91，没有。9，pp。1019-1024，2011。查看：出版商网站|谷歌学术
  50. 徐志南、曾绍华、张绍文、陈玉英，"类圆线虫属stercoralis肠道移植受者的感染移植传染病，第15卷，第5期。4, pp. E139-E143, 2013。查看：出版商网站|谷歌学术
  51. A. P. Iori，A. Ferretti，G. Gentile等，“类圆线虫属stercoralis异基因干细胞移植感染1例报告及文献复习移植传染病，第16卷，第5期。4, pp. 625-630, 2014。查看：出版商网站|谷歌学术
  52. H. Issa，M. A. Aljama和A. H. Al-Salem，“类圆线虫属stercoralis肾移植后患者的过度感染临床和实验胃肠病学，第4卷，第4期。1，页269-271,2011。查看：谷歌学术
  53. I. Izquierdo, J. Briones, R. Lluch, C. Arqueros，和R. Martino，《致命》(Fatal)类圆线虫属同种异体干细胞移植后的HyperInfect复杂于革兰氏阴性败血症：对文献的案例报告和审查，“血液学病例报告文章编号860976,5页，2013。查看：出版商网站|谷歌学术
  54. M.S.Khuroo，“肾移植受者的HyperInfection urdyloidisis”，BMJ案例报告, 2014年。查看：出版商网站|谷歌学术
  55. M. Le, K. Ravin, A. Hasan等，“三个实体器官移植受者的单供者来源的圆线虫病:病例系列和文献综述，”美国移植杂志第14卷第2期5，pp。1199-1206,2014。查看：出版商网站|谷歌学术
  56. V. Pochineni, D. Lal, S. Hasnayen, E. Restrepo，“免疫缺陷患者的致命圆线虫过度感染综合征”，美国案件报告，卷。16，pp。603-605,2015。查看：出版商网站|谷歌学术
  57. B. Chokkalingam Mani，M. Mathur，H. Clauss等，“类圆线虫属stercoralis和器官移植，“移植的病例报告，卷。2013年，第549038号，6页，2013年。查看：出版商网站|谷歌学术
  58. V. Luvira, K. Trakulhun, M. Mungthin等，“免疫功能低下患者圆线虫病的比较诊断”，美国热带医学与卫生杂志第95卷第1期2, pp. 401-404, 2016。查看：出版商网站|谷歌学术
  59. P. Steinmann，X.-N。周，Z.-w。Du等人，“Trimendimidine和Albendazole治疗土壤传播的蠕虫，类圆线虫属stercoralis和绦虫开放标签随机试验，"PLoS被忽视的热带病，第2卷，第2期第10条，2008年第322条。查看：出版商网站|谷歌学术
  60. D. Buonfrate, F. Formenti, F. Perandin，和Z. Bisoffi，“诊断的新方法类圆线虫属stercoralis感染，”临床微生物学与感染第21卷第2期6, pp. 543-552, 2015。查看：出版商网站|谷歌学术
  61. M. Montes，C. Sawhney和N.Barros，“类圆线虫属stercoralis:在那里却看不见，”传染病的最新观点，第23卷，第2期。5，pp。500-504,2010。查看：出版商网站|谷歌学术
  62. M. Sharifdini，H.Mirhendi，K.Ashrafi等，“巢式聚合酶链反应和实时聚合酶链反应与寄生方法检测类圆线虫属stercoralis在人类粪便样本中，美国热带医学与卫生杂志第93卷第5期6, pp. 1285-1291, 2015。查看：出版商网站|谷歌学术
  63. C. D.爱立信，R. Steffen，A.A.Siddiqui和S. L. Berk，“诊断类圆线虫属stercoralis感染，”临床感染疾病，卷。33，不。7，pp。1040-1047，2001。查看：出版商网站|谷歌学术
  64. T.Arakaki，M. Iwanaga，F. Kinjo，A. Saito，R.Sacato和T.Ikeshiro，琼脂平板培养物的疗效检测类圆线虫属stercoralis感染，”寄生虫学杂志》，第76卷，第76期3，第425-428页，1990。查看：出版商网站|谷歌学术
  65. T. Hirata, H. Nakamura, N. Kinjo等，“增加的检出率类圆线虫属stercoralis通过使用琼脂培养方法重复大便检查，“美国热带医学与卫生杂志第77期4，页683-684,2007。查看：谷歌学术
  66. M.Attia，K.Kamal，M.A.Fouad，M. H. Saleh，以及M. Abo-Sabe，“抗强度和间接诊断”埃及寄生虫学会学报第22卷第2期1，页115 - 119,1992。查看：谷歌学术
  67. Z.Bisoffi，D. BuonFrate，M.Sequi等，“五种血清晶石测试的诊断准确性类圆线虫属stercoralis感染，”PLoS被忽视的热带病，卷。8，不。1，物品ID E2640,2014。查看：出版商网站|谷歌学术
  68. D. Buonfrate, M. Sequi, R. Mejia et al.，“五种血清学检测用于随访的准确性类圆线虫属stercoralis感染，”PLoS被忽视的热带病，第9卷，第5期。2、文章编号e0003491, 2015。查看：出版商网站|谷歌学术
  69. H. T. Gonzaga, V. S. Ribeiro, N. D. Feliciano等，“IgG敏感性在人类圆线虫活动性感染的鉴别血清学诊断中的作用”，免疫学的信，第139卷，第139期1-2，页87-92,2011。查看：出版商网站|谷歌学术
  70. “明胶颗粒间接凝集和酶联免疫吸附试验用于诊断圆线虫病的应用昆西斯酮乙烯丝抗原。”皇家热带医学和卫生学会学报第97卷第1期5，页535-538,2003。查看：出版商网站|谷歌学术
  71. A.F.Júnior，M.R.F.Gonçalves-Pires，D. A.O. Silva，A.L.R.R.Conçalves和J. M. Costa-Cruz，寄生学和血清学诊断类圆线虫属stercoralis来自巴西东南部的家养狗兽医寄生虫学，卷。136，没有。2，pp。137-145,2006。查看：出版商网站|谷歌学术
  72. S. Koosha，M. Fesharaki和M.B.Rokni，“酶联免疫吸附测定和间接免疫荧光测定在人φ1型脑辐射诊断中的比较”印度胃肠学杂志，第23卷，第2期。6，页214-216,2004。查看：谷歌学术
  73. D. M.L.MOTA-FERREIRA，M. D.F.R.F.Gonçalves-Pires，á。F.Júnior，M.C.C.C.Sopelete，V.O.S.Abdallah和J. M. Costa-Cruz，“人类强血清的成对血清和母乳样品中的特定IgA和IgG抗体”，“Acta Tropica，第109卷，第2期。2，第103-107页，2009。查看：出版商网站|谷歌学术
  74. W. A. Page，K. Dempsey和J. S. McCarthy，“慢性抗硫型化疗后慢性抗震性血管病变的效用”，“皇家热带医学和卫生学会学报号，第100卷。11，PP。1056-1062，2006。查看：出版商网站|谷歌学术
  75. B. J. Pak, F. Vasquez-Camargo, E. Kalinichenko等，“利用基于衍射的新型生物传感器技术开发用于诊断圆线虫病的快速血清学分析”，PLoS被忽视的热带病，卷。8，不。8，2014年物品ID e3002,2014。查看：出版商网站|谷歌学术
  76. Y. Sato，J.Kobayashi和Y.Shirooma，“抗抗抗肌腱晕。申请和意义，“Revista De Medicina Tropitume de Sao Paulo，第37卷，第2期1，第35-41页，1995。查看：谷歌学术
  77. L. R.Bosqui，A.L.R.R.R.Conçalves，M.D.R.F.Vonçalves-Pires等，“检测寄生虫特异性IgG和IgA的配对血清和唾液样本中，用于诊断巴西北部的北部北部人氏化物，”Acta Tropica，卷。150，pp。190-195,2015。查看：出版商网站|谷歌学术
  78. E. F. G. de Carvalho，J.E.N. de Sousa，A.L.R.R.R.Conçalves，J.P.Da Cunha-Junior，J. M. Costa-Cruz，“免疫印迹昆西斯酮乙烯丝用于诊断实验性感染免疫抑制大鼠的幼虫、孤雌或卵提取物寄生虫学实验，卷。157，pp。117-123,2015。查看：出版商网站|谷歌学术
  79. S. L. Becker，N.Piraisoody，S.Kramme等，“检测的实时PCR类圆线虫属stercorali来自Côte科特迪瓦的人类粪便样本中的s:诊断准确性、实验室间比较和钩虫合并感染模式，”Acta Tropica，卷。150，pp。210-217，2015。查看：出版商网站|谷歌学术
  80. F. M. Paula, R. B. Sitta, F. M. Malta等人，“实验中的寄生虫学和分子诊断昆西斯酮乙烯丝感染，”Revista do Medicina Tropical deSãoPaulo，卷。55，不。2，pp。141-143,2013。查看：出版商网站|谷歌学术
  81. S. L. Becker，J. K. Chatigre，J.-P。Goou等，“基于粪便的多重PCR和显微镜，用于增强腹泻患者的病原体检测，来自Côted'Ivoire的无症状，”临床微生物学与感染第21卷第2期6、591. e1 - 591页。e10, 2015年。查看：出版商网站|谷歌学术
  82. P. D. Marques，F.M.Marta，D.M.C.L.L.Meisel等，“抗震线虫的诊断昆西斯酮乙烯丝在实验感染的大鼠中，“寄生虫学杂志》，卷。90，pp。422-427,2016。查看：出版商网站|谷歌学术
  83. E. Nadir，T. Grossman，P.Ciobotaro等，“实时PCR类圆线虫属stercoralis有关脑膜炎。”诊断微生物学和传染病，卷。84，不。3，PP。197-199,2016。查看：出版商网站|谷歌学术
  84. F. M. de Paula, F. D. M. Malta, P. D. Marques等，“热带地区圆线虫病的分子诊断:传统和实时聚合酶链反应与寄生虫学方法的比较”，Memorias Do Instituto Oswaldo Cruz号，第110卷。2，pp。272-274,2015。查看：出版商网站|谷歌学术
  85. S. A. Repetto, C. D. A. Soto, S. I. Cazorla等，“一种用于PCR检测的改进的DNA分离技术类圆线虫属stercoralis在粪便样本。”Acta Tropica第126卷第1期2, pp. 110-114, 2013。查看：出版商网站|谷歌学术
  86. S. A. Repetto, P. Ruybal, M. E. Solana等，“PCR和幼虫可视化诊断方法的比较类圆线虫属stercoralis在流行区域之外:一个提议的算法，”Acta Tropica， 2016, vol. 157, pp. 169-177。查看：出版商网站|谷歌学术
  87. J. M.Saugar，F.J.Merino，P.Marín-Rabadán等，“实时PCR在检测中的应用类圆线虫属spp。在西班牙参考中心的临床样本中，“Acta Tropica， vol. 142, pp. 20-25, 2015。查看：出版商网站|谷歌学术
  88. F. Schär, P. Odermatt, V. Khieu等，“实时PCR的评价类圆线虫属stercoralis和钩虫作为柬埔寨无症状学童的诊断工具，“Acta Tropica第126卷第1期2, pp. 89-92, 2013。查看：出版商网站|谷歌学术
  89. R.B.Sita，J.R.P.P.C.Chieffi，R.C.B.Gryschek和F.M.PCR，“常规PCR，即人氏菌的常规PCR。寄生虫学，第141卷，第141期5, pp. 716-721, 2014。查看：出版商网站|谷歌学术
  90. S. St Cyr，A. nagpal和M. R. I. Sohail，“Shiga毒素生产e Coli.继发血流感染类圆线虫属穿透肠道粘膜，”BMJ案例报告， 2013年。查看：出版商网站|谷歌学术
  91. Y. Sultana, N. jeffreys, M. R. Watts, G. L. Gilbert，和R. Lee，“实时聚合酶链反应用于检测类圆线虫属stercoralis在凳子上,“美国热带医学与卫生杂志第88期6, pp. 1048-1051, 2013。查看：出版商网站|谷歌学术
  92. M. Z.Abdelrahman，M. Zeehaida，N.Rahmah等，“致命的狗粪症休克相关类圆线虫属stercoralis血管免疫母细胞性t细胞淋巴瘤患者感染1例报告及文献复习寄生学国际第61卷第1期3，pp。508-511,2012。查看：出版商网站|谷歌学术
  93. K. Chunlertrith，A.Noiprasit，C.Kularbkaew，O. Sanpool，W.Maleewong和P.M. Intapan，“具有肠道淋巴结病阻塞的抗震症状的复杂案例”：分子识别“东南亚热带医学和公共卫生杂志第46卷，第46期1, pp. 1 - 7, 2015。查看：谷歌学术
  94. A. N. SEO，Y.-K.goo，d .-Chung，Y. Hong，O. Kwon和H.-i。BAE，“合并胃腺癌和胃和十二指肠类圆线虫属stercoralis感染:一例报告，”韩国寄生虫学杂志，第53卷，第53期1, pp. 95-99, 2015。查看：出版商网站|谷歌学术
  95. E. J. Won, J. Jeon, y . i。Koh，和D. W. Ryang，“伴有胃肠道间质瘤的糖尿病患者的圆线虫病:对类固醇治疗无反应的嗜酸性粒细胞增多症的原因，”韩国寄生虫学杂志，第53卷，第53期2, pp. 223-226, 2015。查看：出版商网站|谷歌学术
  96. S. Bonne-Anneé， J. A. Hess，和D. Abraham，“对线虫的先天和适应性免疫类圆线虫属stercoralis在鼠标模型中，“免疫研究第51卷第1期2-3, pp. 205-214, 2011。查看：出版商网站|谷歌学术
  97. 佐藤和托马，"昆西斯酮乙烯丝小鼠感染，“国际寄生虫学杂志，第20卷，第2期。1，页57-62,1990。查看：出版商网站|谷歌学术
  98. G.韦特海姆，“实验性同时感染肌腱喇叭和S.委内瑞斯在实验室大鼠中，“寄生虫学第61卷第1期3，页389-395,1970。查看：出版商网站|谷歌学术
  99. d . i .格罗夫强肌腱病：男人的主要蛔虫感染，泰勒和弗朗西斯，1989年。
  100. V.M.Bhopale，G. Smith，H. E.Jordan和G. A. Schad，“发展生物学和迁移”肌腱喇叭河鼠。”寄生虫学杂志》第78期5，第861-868页，1992。查看：出版商网站|谷歌学术
  101. M. Mojon，C.Saura，N.Roojee和R.T. M. Sung，“Anthelminthic药物治疗试验的实验模型”抗菌化疗杂志CHINESE，卷。19，没有。1，pp。73-77,1987。查看：出版商网站|谷歌学术
  102. c·e·奥尔森和e·l·席勒肌腱喇叭感染的老鼠。2可的松治疗的效果美国热带医学与卫生杂志，卷。27，不。3，pp。527-531,1978。查看：谷歌学术
  103. R. E. Weesner, J. Kolinjivadi, R. A. Giannella, T. Huitger-O'Connor, and R. M. Genta， "影响肌腱喇叭对正常和免疫抑制大鼠小肠功能的影响消化系统疾病与科学，卷。33，不。10，pp。1316-1321,1988。查看：出版商网站|谷歌学术
  104. V. L. T. Mati, P. Raso和A. L. de Melo， "类圆线虫属stercoralisMarmosets的感染：复杂和简单的人类疾病和寄生虫生物学的复制，“寄生虫和向量，第7卷，第5期1，2014年第579,2014。查看：出版商网站|谷歌学术
  105. P. Steinmann，X.-N。周，Z.-w。Du等人，“Trimendimidine和Albendazole治疗土壤传播的蠕虫，类圆线虫属stercoralis和绦虫开放标签随机试验，"PLoS被忽视的热带病，第2卷，第2期10，物品号。E322，2008。查看：出版商网站|谷歌学术

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