杂志的病原体

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杂志的病原体/2018/文章

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体积 2018 |文章的ID 6845985 | 7 页面 | https://doi.org/10.1155/2018/6845985

广谱倍他酰胺酶(ESBL)和金属倍他酰胺酶(MBL)生产的流行铜绿假单胞菌鲍曼不动杆菌从各种临床样本中分离出来

学术编辑器:马里奥·m·D 'Elios
收到了 2018年5月31日
接受 2018年9月23日
发表 2018年10月24日

抽象的

本研究的目的是了解广谱倍倍内酰胺酶(ESBL)和金属倍倍内酰胺酶(MBL)的流行情况铜绿假单胞菌答:baumannii分离自各种临床样本。在2014年7月至2016年6月的两年时间里,在巴斯廷达阿德什医学科学和研究所微生物系进行了这项研究。临床标本包括尿液、脓液、血液、阴道高拭子、呼吸道样本和各种体液进行处理铜绿假单胞菌答:baumannii分离菌株按标准方案进行鉴定。采用Kirby-Bauer纸片扩散法对所有分离株进行药敏试验。用圆盘增强试验检测这些细菌中ESBL和MBL的产生。最大ESBL阳性菌株铜绿假单胞菌在脓液样本中观察到MBL阳性菌株,在气管吸出物中检测到最大MBL阳性菌株。答:baumannii表现出ESBL和MBL生产中的最大阳性在内插分泌中。该研究由于产生扩展谱贝酰胺酶和金属酰胺酰胺酶,旨在朝着头孢菌素和肉豆蔻酸和肉豆蔻酸的高患病率发动令人惊叹的迹象。早期检测,严格的抗生素政策,以及对感染控制实践的符合是对这些生物的最佳防御。

1.介绍

对抗菌药物的耐药性很常见,并且在过去几年中在人群中有所增加铜绿假单胞菌铜绿假单胞菌) 和鲍曼不动杆菌答:baumannii)由于许多菌株现在差异几乎抵抗所有常用的抗生素。这些生物之间的多药耐药性使它们造成的感染难以和昂贵。已知这些细菌产生扩展光谱贝酰酰胺酶(ESBLS)和金属酰胺酰胺酶(MBLS)[1].第三代头孢菌素如头孢噻肟,头孢菌和头孢他啶等第三代头孢菌素的大规模使用导致了较新的贝拉酰胺酶如ESBLS的演变。ESBLs是质粒介导的酶,其水解oxyiminoβ内酰胺和单氨酰胺(Aztreonam),但对Cephamycins(Cefoxitin,Cefotetan)和Carbapenems(Infipenem)没有影响。是质粒介导的,它们可以容易地从一个生物转移到另一个生物体[2].由于对氨基糖苷类、氟喹诺酮类、脲类青霉素类和第三代头孢菌素类药物的频繁耐药性,碳青霉烯类药物是控制此类感染的重要药物。耐碳青霉烯铜绿假单胞菌答:baumannii是由多种原因造成的,如外膜蛋白和碳烯酶的表达减少[3.].MBL生产铜绿假单胞菌答:baumannii已成为全世界越来越多的治疗问题。对MBL阳性分离物的快速检测是控制感染所必需的,并防止他们的传播[4].本研究的目的是确定ESBL和MBL在菌株之间的流行程度铜绿假单胞菌答:baumannii从各种临床样本中获得。

2.材料和方法

2.1.研究设计与样本

本实验室前瞻性研究于2014年7月至2016年6月在Bathinda Adesh University Adesh Institute of Medical Sciences and Research (AIMSR)微生物系进行,为期两年,经Adesh University论文研究学位委员会和伦理委员会批准。在将患者纳入本研究之前,需征得患者或其监护人的书面同意。记录患者的年龄、性别、入院日期、免疫状况、抗生素治疗情况、出院日期等临床病史,并记录在患者病历中。根据患者的临床诊断,采集ICU及医院各病房患者的临床样本共2261份。这些包括尿液、脓液、血液、耳拭子、阴道拭子、痰液、气管内分泌物、气管吸出物和各种体液。所有样本均按标准微生物指引收集[5].

2.2。实验室方法

在严格的无菌条件下,将采集的各种样品接种于血琼脂(BA)和麦康凯琼脂(MA)平板上。平板在有氧条件下37°C孵育24-48小时。临时的识别铜绿假单胞菌答:baumannii在血琼脂和麦康凯琼脂培养基上革兰氏染色、形态学和菌落特征。进行了一系列生化测试,以确认分离物[6].

2.3.抗菌药物敏感性试验

通过Kirby Bauer光盘扩散方法在穆勒亨顿琼脂上测定分离株的抗微生物敏感性测试[7].头孢他啶(30μ.g)、头孢吡肟(30μ.piperacillin-tazobactam(100克)μ.克/ 10μ.g) ,亚胺培南(10 μ.Meropenem (10 g)μ.g)、庆大霉素(10μ.g)、阿米卡星(30μ.Ampicillin-sulbactam (10 g)μ.克/ 10μ.g) ,复方新诺明(25 μ.aztreonam(30克)μ.g)、环丙沙星(5μ.g),Norfloxacin(30 μ.g)(尿分离株)、多粘菌素B(300单位)和粘菌素(10μ.g) .测量获得的区域尺寸,并根据CLSI指南进行解释[8].铜绿假单胞菌以ATCC 27853作为抗生素敏感性的对照生物。

2.4.ESBL阳性菌株的表型检测

通过椎间盘强化试验测试分离对头孢他啶和/或头孢塔的抵抗力头孢他啶片(30μ.G)和头孢他啶+克拉维酸(30μ.克/ 10μ.g)置于Mueller Hinton琼脂平板上,间隔20 mm, 37℃孵育过夜。在头孢他啶与头孢他啶+克拉维酸周围大于或等于5mm的区带差异被解释为ESBL阳性分离物[9].

2.5。MBL阳性分离物的表型检测

通过纸片增强试验对耐亚胺培南和/或美罗培南的菌株进行MBL产生试验μ.g)和亚胺培南+ EDTA (10μ.G / 750. μ.g)置于Mueller Hinton琼脂平板上,间隔20 mm, 37℃孵育过夜。亚胺培南和亚胺培南+ EDTA椎间盘周围大于或等于7mm的区差被解释为MBL阳性分离物[10].

图中显示了为检查ESBL和MBL产量所进行的圆盘增强试验12

2.6。统计分析

采用百分比和比率方法进行描述性统计分析,用Microsoft Excel制作条形图,表示抗菌药物敏感性、ESBL和MBL产量。

3.结果

在加工的总样品中,192铜绿假单胞菌和116年答:baumannii是孤立的。

铜绿假单胞菌分离物对多粘菌素B和Colistin敏感的敏感性,含有71.4%的敏感性,伊皮尼姆报告了中间敏感性(64.5%)被记录为Plaeracillin-Tazobactam和Meropenem。诺福克星仅针对尿液分离株进行测试,并且敏感性记录为48.4%。向头孢菌素鉴定了更少的敏感性:头孢他啶和头孢噻肟,即39.1%和42.2%。为P.获得的抗体诊断铜绿假单胞菌隔离物如图所示3.

答:baumannii分离菌株对所检测的大多数抗生素表现出高度耐药性。96.6%的菌株答:baumannii对头孢他啶耐药,94.8%菌株耐药。对亚胺培南和美罗培南的耐药率分别为60.3%和68.1%。而多粘菌素B和粘菌素的敏感性分别为96.5%和97.4%。抗菌谱获得了答:baumannii如图所示4

抗菌药物敏感性的铜绿假单胞菌答:baumannii根据不同的采样点,见表12,分别。


名字的抗生素
(54)
尿液
(54)

(4)
气管吸入
(29)
气管内分泌物
(20)
阴道拭子和耳拭子高
(17)
各种体液
(4)

(10)

头孢他啶 46.3% 42.6% 50.0% 13.8% 25.0% 58.8% 50.0% 40.0%
头孢隔 29.6% 59.3% 50.0% 20.7% 30.0% 70.6% 50.0% 50.0%
piperacillin-tazobactum 61.1% 81.5% 75.0% 41.4% 55.0% 70.6% 75.0% 60.0%
Aztreonam. 55.6% 59.3% 50.0% 10.3% 20.0% 41.2% 50.0% 60.0%
庆大霉素 61.1% 68.5% 50.0% 20.7% 25.0% 82.4% 50.0% 80.0%
Amikacin 75.9% 70.4% 50.0% 20.7% 35.0% 82.4% 50.0% 70.0%
Netilmicin 70.4% 81.5% 50.0% 24.1% 40.0% 76.5% 75.0% 50.0%
诺氟沙星 NT 48.1% NT NT NT NT NT NT
环丙沙星 70.4% NT 75.0% 24.1% 40.0% 88.2% 50.0% 60.0%
Imipenem 79.6% 90.7% 75.0% 27.6% 45.0% 82.4% 100.0% 40.0%
Meropenem 79.6% 70.4% 50.0% 27.6% 30.0% 88.2% 100.0% 30.0%
明蛋白B. 100.0% 100.0% 100.0% 100.0% 100.0% 100.0% 100.0% 100.0%
粘菌素 100.0% 100.0% 100.0% 100.0% 100.0% 100.0% 100.0% 100.0%


名字的抗生素 等分泌物
(34)
气管吸入
(28)

(29)
尿液
(9)

(7)

(6)
各种体液
(3)

头孢他啶 0.0% 0.0% 0.0% 22.2% 28.6% 0.0% 0.0%
头孢隔 0.0% 0.0% 3.4% 22.2% 28.6% 0.0% 33.3%
Piperacilllin——Tazobactum 0.0% 3.6% 13.8% 55.6% 28.6% 33.3% 33.3%
氨苄青霉素 - 磺乳糖 5.9% 17.9% 41.4% 66.7% 42.9% 33.3% 33.3%
庆大霉素 0.0% 0.0% 10.3% 44.4% 57.1% 0.0% 0.0%
Amikacin 0.0% 0.0% 10.3% 44.4% 42.9% 33.3% 0.0%
Cotraimoxazole. 0.0% 0.0% 6.9% 55.6% 28.6% 0.0% 0.0%
诺氟沙星 NT NT NT 22.2% NT NT NT
环丙沙星 5.9% 14.3% 13.8% NT 28.6% 16.7% 0.0%
Imipenem 20.6% 21.4% 75.9% 77.8% 42.9% 0.0% 33.3%
Meropenem 17.6% 21.4% 62.1% 22.2% 57.1% 0.0% 33.3%
多粘菌素B 91.2% 96.4% 100.0% 100.0% 100.0% 100.0% 100.0%
粘菌素 94.1% 96.4% 100.0% 100.0% 100.0% 100.0% 100.0%

在192个菌株中铜绿假单胞菌34株(17.7%)分离株产生ESBL, 42株(21.8%)分离株产生MBL,见表3..116株答:baumannii32株(27.5%)分离株产生ESBL, 52株(44.8%)分离株产生MBL,见表4


不。的隔离 尿液 耳朵拭子 等分泌物 气管吸入

ESBL阳性 3. 1 1 9 8 8 4
(34)

MBL积极 6 1 1 8 10 12 4
(42)


不。的隔离 尿液 等分泌物 气管吸入

ESBL阳性 4 3. 3. 12 8 2
(32)

MBL积极 6 3. 6 17 18 2
(52)

4。讨论

的情况下铜绿假单胞菌,脓液、尿液、高阴道和耳拭子对抗生素的敏感性最高,而从气管内和气管造口管中获得的分泌物/抽吸物的敏感性较低。

同样的,答:baumannii从Et分泌物和气管吸出物中获得的分离物表现出对头孢菌素,氨基糖苷类,氟喹啉,甚至CarbapeNems的易感性非常差。与呼吸位点相比,从其他位点获得的分离物相对敏感。

由于严重的头部损伤和脑血管意外导致抗生素治疗时间延长,大多数ICU患者接受机械通气。ICU患者住院时间延长、抗生素治疗时间延长以及ICU环境中的选择性压力可能也是导致这种变化的相关因素这一特殊的分离菌群产生ESBLs和MBL。

在本研究中,17.7%的分离株铜绿假单胞菌对生产ESBL有积极作用。结果类似于Senthamarai等人的研究。[11),他们报告了ESBL的生产铜绿假单胞菌22.2%。Goel等[12和Rani等人[13已经报道了ESBL的生产铜绿假单胞菌分别为42.3%和37.2%,略高于本研究。Woodford等人[14和Lim等人[15]报道这些细菌中ESBL的产量很低,分别为3.7%和4.2%。在本研究中,21.8%的分离株铜绿假单胞菌对MBL生产有积极影响。结果与Upadhyay等人相似[16谁报道了MBL生产铜绿假单胞菌为20.8%。Sadhna等人。[10],Madhu等人[17和Behera等人[18]已经报道了MBL的生产铜绿假单胞菌分别为41.0%、61.5%和69.5%,高于本研究。Aggarwal等人[19据报道,与本研究相比,MBL产量为11.4%。在本研究中,27.5%的分离株答:baumannii对生产ESBL有积极作用。结果与Sinha等人的结果完全相似。20.也报告了ESBL的生产答:baumannii27.5%。Vahaboglu等人[21]及乔杜里和帕亚西[22已经报道了ESBL的生产答:baumannii与本研究相比,分别为46.0%和83.6%。巴厘岛。[23]据报道,ESBL的产量为5.2%,与本研究相比要低得多。在我们的研究中,44.8%的菌株答:baumannii对MBL生产有积极影响。结果类似于Irfan等人。[24也报告了MBL的生产答:baumannii为49.0%。Hodiwala等。[4]和Kabbaj等人。[25]报道了非常高的MBL生产答:baumannii分别为96.6%和74%。Gupta等人[26]报告的MBL产量为7.5%,与本研究相比要少得多。这些差异可能是由于不同的抗生素使用和明智的选择抗生素的医院设置。

5.结论

本研究表明,ESBL和MBL的产生在铜绿假单胞菌答:baumannii在全球范围内呈上升趋势,因此使这些感染难以治疗。早期检测ESBL和MBL的产生对于降低死亡率和多药耐药菌的传播非常重要。圆盘增强试验简单、易于实施、经济,可与常规抗生素敏感性试验一起进行此外,重要的是实施抗生素限制政策,以避免在每家医院过度和不明智地使用超广谱头孢菌素和碳青霉烯类抗生素。

数据可用性

用于支持这项研究结果的数据包括在文章中。

利益冲突

作者声明本文的发表不存在利益冲突。

工具书类

  1. j . A. Memish, A. M. Shibl, A. M. Kambal, Y. A. Ohaly, A. Ishaq, D. M. Livermore,“沙特阿拉伯非发酵革兰氏阴性菌的抗菌素耐药性”,抗菌化疗杂志CHINESE,卷。67,没有。7,物品ID DKS091,PP。1701-1705,2012。视图:出版商的网站|谷歌学术
  2. A. O. Okesola和A. A. Oni,“广谱β -内酰胺酶产铜绿假单胞菌在尼日利亚西南部的发生”,作者:李莹莹,卷。6,不。3,pp。93-96,2012。视图:出版商的网站|谷歌学术
  3. P. Gladstone, P. Rajendran和K. N. Brahmadathan,“重症监护室呼吸道感染患者对碳青霉烯耐药非发酵革兰氏阴性杆菌的发病率”,印度医学微生物学杂志,卷。23,不。3,pp。189-191,2005。视图:出版商的网站|谷歌学术
  4. A. Hodiwala, R. Dhoke, and A. D. Urhekar,“产生金属-内酰胺酶的假单胞菌、不动杆菌和肠杆菌在住院患者中的发病率”,国际药学与生物科学杂志,卷。3,第79-83,2013。视图:谷歌学术
  5. J. G. Collee和W. Marr,“标本收集、培养容器和培养基”,刊于麦基和麦卡特尼实用医学微生物学,G. J. Colle,G. A. Fraser,B.P.Marmon和A. Simmons,EDS。,PP。14-27,elsevier,多伦多,加拿大,第14届,2008年第14号。视图:谷歌学术
  6. J. G. Collee, R. S. Miles,和B. Watt, "细菌鉴定的测试",刊于麦基和麦卡特尼实用医学微生物学、G. Collee、A. G. Fraser、B. P. Marmon和A. Simmons主编。,第131-150页,Elsevier,多伦多,加拿大,第14版,2008。视图:谷歌学术
  7. a . W. Bauer, W. M. Kirby, J. C. Sherris, M. Turck,“用标准化的单片法进行抗生素敏感性测试”,美国临床病理学杂志第45卷第5期4,第493-496页,1966。视图:出版商的网站|谷歌学术
  8. 临床和实验室标准研究所,抗菌药物敏感性试验的性能标准;22nd信息补充,CLSI文件M100-S22,韦恩,生病,美国,2012年。
  9. M. Banerjee, B. L. Chaudhary, S. Shukla,“从三级护理医院临床样本分离的不动杆菌中ESBL和MBL的患病率”,《国际科学与研究杂志》,第4卷,第4期。6, pp. 1183-1186, 2015。视图:谷歌学术
  10. C. Sadhana, W. Smita, D. Charan, and A. S. kare,“特别参考亚胺培南和金属-内酰胺酶生产的铜绿假单胞菌的耐药性模式”,印度基础和应用医学研究杂志,第4卷,第4期。1,pp。117-122,2014。视图:出版商的网站|谷歌学术
  11. S. Senthamarai, S. Sivasankari和M. S. Kumudhavathi,“泰米尔纳德邦坎奇普拉姆三级护理医院中铜绿假单胞菌ESBL菌株的敏感性模式”,国际最新科学研究杂志,卷。4,pp。1748-1750,2013。视图:谷歌学术
  12. V. Goel, S. Hogade, S. Karadesai,“三级护理医院重症监护病房中产生广谱β -内酰胺酶、AmpC -内酰胺酶和金属- β -内酰胺酶的绿脓杆菌和鲍曼不动杆菌的患病率”,科学学会杂志,第40卷,第5期。1, p. 28, 2013。视图:出版商的网站|谷歌学术
  13. S.V.Rani,K.R.Rao,S. Ravinder和P.Kanakadurga,“扩展谱β内酯(ESBL)的患病率从烧伤患者生产假鼠铜绿假单胞菌”国际当代医学研究杂志的诉讼程序,第5卷,第5期。3, pp. 1297-1300, 2016。视图:谷歌学术
  14. N. Woodford, J. Zhang, M. E. Kaufmann et al.,“探测铜绿假单胞菌分离出veb型扩展谱β- 在英国的 - 酰胺酶,“抗菌化疗杂志CHINESE第62期6, pp. 1265-1268, 2008。视图:出版商的网站|谷歌学术
  15. 杨志强等,“遗传指纹图谱与抗微生物药敏特性Pseudomonas Aeroginosa马来西亚医院分离菌,”微生物学与免疫学杂志,第42卷,第197-209页,2009。视图:谷歌学术
  16. S. Upadhyay, M. R. Sen, and A. Bhattacharjee,“临床分离的β -内酰胺酶的存在铜绿假单胞菌表达AmpC -内酰胺酶发展中国家感染杂志,第4卷,第4期。4,页239-242,2010。视图:谷歌学术
  17. M. Sharma, S. Sarita和U. Chaudhary,“产生金属- β -内酰胺酶的铜绿假单胞菌在新生儿败血症中的作用”,实验室医生杂志,第2卷,第2期1, p. 14, 2010。视图:出版商的网站|谷歌学术
  18. B. Behera, P. Mathur, A. Das, A. Kapil, and V. Sharma,“对四种不同表型技术检测金属-的评估β-产内酰胺酶铜绿假单胞菌”,印度医学微生物学杂志第26卷第2期3,页233-237,2008。视图:出版商的网站|谷歌学术
  19. S.Aggarwal,P. Durlabhji和S. Gupta,“Metallo-的发病率β-产内酰胺酶铜绿假单胞菌来自三级护理医院临床样本的分离株及其抗菌药物敏感性模式国际研究与审查杂志,第4卷,第4期。1,pp。92-98,2017。视图:谷歌学术
  20. M. Sinha, H. Srinivasa,和R. Macaden,“不动杆菌物种的抗生素耐药性和广谱β -内酰胺酶(ESBL)的产生”,印度医学研究杂志第126卷第1期1,页63-67,2007。视图:谷歌学术
  21. H. Vahaboglu, F. Coskunkan, O. Tansel等,“广谱的临床重要性β内酰胺酶(PER-1-type)第不动杆菌spp.和铜绿假单胞菌压力。”医学微生物学杂志,卷。50,不。7,pp。642-645,2001。视图:出版商的网站|谷歌学术
  22. M. Chaudhary和A. Payasi,“中东、非洲和印度患者鲍曼不动杆菌临床分离株的分子特征和抗菌药物敏感性研究”,蛋白质组学与生物信息学杂志,第5卷,第5期。11,页265-269,2012。视图:谷歌学术
  23. E. B. Bali, L. Açik, and N. Sultan,“SHV的表型和分子特征,TEM, CTX-M和扩展光谱β内酰胺酶产生的埃希氏杆菌属大肠杆菌,Acinobacter baumanniiKlebsiella.被隔离在土耳其医院"非洲微生物学研究,第4卷,第4期。8,页650 - 654,2010。视图:谷歌学术
  24. S. Irfan, A. Zafar, D. Guhar, T. Ahsan,和R. Hasan,“金属-β-内酰胺酶产生的临床分离不动杆菌种类及铜绿假单胞菌从强化护理单位患者的第三节护理医院,“印度医学微生物学杂志第26卷第2期3,页243 - 245,2008。视图:出版商的网站|谷歌学术
  25. H. Kabbaj, M. Seffar, B. Belefquih, and ETAL,“金属的流行-β-Lactamases生产鲍曼不动杆菌在摩洛哥医院"ISRN传染病文章编号154921,3页,2013。视图:出版商的网站|谷歌学术
  26. V. Gupta, P. Datta,和J. Chander,“金属的流行-β内酰胺酶(MBL)生产假单胞菌种虫害和不动杆菌在印度的一家三级护理医院"感染号,第52卷。5,第311-314页,2006。视图:出版商的网站|谷歌学术

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