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特殊的问题

Yersiniosis和食品安全

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体积 2011年 |文章的ID 735308年 | https://doi.org/10.4061/2011/735308

h·福岛,清水,y Inatsu, 鼠疫enterocolitica鼠疫的伪检测食品中”,杂志的病原体, 卷。2011年, 文章的ID735308年, 9 页面, 2011年 https://doi.org/10.4061/2011/735308

鼠疫enterocolitica鼠疫的伪检测食品中

学术编辑器:Latiful巴里
收到了 2011年5月03
接受 07年6月2011年
发表 2011年10月05

文摘

鼠疫enterocoliticay伪可导致人类和动物yersiniosis被认为是重要的食源性致病菌,是重要的食品安全卫生指标。致病性y enterocoliticaO血清型和生物型:3/4和3变种VP - O: 5, 27/2, O: 8/1b,和O: 9/2,全球已报告。y伪广泛分布低于y enterocolitica。隔离方法通常涉及选择性和恢复浓缩的食物样本随后镀上选择媒体,确认典型的殖民地和检测分离的菌株毒力的性质。最近,基于dna的方法,如PCR检测,开发了检测致病性y enterocoliticay伪食品中更快速,灵敏度比可以通过传统文化的方法。本文综述商用常规和pcr进行病原的检测程序鼠疫在食物。这些方法是有效的隔离和检测方法针对致病性y enterocoliticay伪在食物。

1。概述

食源性致病鼠疫(y enterocoliticay伪)是兼性厌氧的革兰氏阴性肠杆菌科和隔离经常从土壤、水、动物、和食物1- - - - - -4]。y enterocolitica导致人类感染的症状包括腹泻、终端回肠炎、肠系膜淋巴结炎,关节炎,和败血症。y伪导致肠系膜淋巴结炎、腹泻、败血症。好寒性的生物,鼠疫能够生长在4°C,冷链食品可以提供一个潜在的食品安全危害3,5,6]。致病性y enterocoliticaO血清型和生物型:3/4和3变种VP - O: 5, 27/2, O: 8/1b,全世界已报告和O: 9/2 (7,8]。在日本,O: 3/3变体VP -是人类yersiniosis(最常见的原因8]。在美国,尽管发病率下降O血清型:8/1b感染,O: 3/4和O: 5、27/2感染增加(7]。在欧洲,O血清型:3和O: 9感染占90%以上y enterocolitica感染。y伪广泛分布低于y enterocolitica,虽然经常与动物,很少是孤立的从土壤,水,和食物9- - - - - -12]。

大爆发y伪感染被报道在日本(13,14]。在远东包括日本、y伪各种血清型(1 b、2 a、2 b 2 c, 3, 4, 4 b、5、5 b,和所有的)从患者孤立exanthematous发烧等全身感染,几乎菌株分离产生superantigenic toxin-designed雅普玛所著编码雅普玛所著基因(14- - - - - -16]。在欧洲,血清型(1 a、1 b和3)已经从胃肠的患者症状和孤立的极低频隔离(16]。

因此重要的分离和识别和区分食源性致病鼠疫从非病原的鼠疫菌株。隔离方法通常与浓缩的食物样本随后镀上选择媒体,典型的殖民地,确认和检测分离的菌株毒力的性质(17]。该方法是一种有效的方法可以采用鼠疫enterocoliticay伪在食物。程序已经使用尤其是检测致病性y enterocoliticay伪在日本

2。程序目前量化和确认鼠疫sp.食品

的存在y enterocoliticay伪食品可以被直接定量确定文化选择性琼脂板上。然而,确认测试要求低温浓缩、选择性富集和亚文化选择性琼脂板上。传统的协议的探测和识别y enterocoliticay伪从食品如图1。可疑食物样本然而必须进行预处理,使成功的分析。

2.1。预处理的食物

与均质化食品样品预处理开始(25克)三角胸衣的2分钟225毫升的磷酸盐(PBS)或其他冷富集培养基(见下文)。由此产生的匀浆用于直接文化、富集培养实验。快速分离和浓度,25克食品样品和225毫升0.02%的渐变20-buffered蛋白胨水(BPW)塑料袋(Stomafilter P型;Gunze、东京、日本),包含一个聚四氟乙烯布(40目)内部和均质在三角胸衣2分钟18]。

2.2。枚举的鼠疫sp.通过直接培养法

对于这个过程,一个整除的匀浆接种到选择性琼脂板(见下文)治疗后的碱(9,19]。碱性治疗可以通过混合0.5毫升的匀浆和0.5毫升的0.72% KOH在0.54%氯化钠30秒。鼠疫是能够抵抗弱碱性治疗,此属性用于选择生物而抑制背景植物如假单胞菌、变形杆菌沙雷氏菌属(20.]。据报道,y enterocoliticaO血清型:3:5日,27日,O: 8 O: 9y伪5血清型菌株在人工污染的猪肉样本显示相对高阻KOH,鼠疫菌株从污染的猪肉样本超过102每g细胞直接KOH治疗后,没有浓缩(9]。然而,食物样本污染较低(小于102细胞/ g)需要一个浓缩过程成功的复苏鼠疫

2.3。寒冷和选择性浓缩康复的鼠疫sp.从食物样本污染较低水平

冷浓缩的接种培养基(例子所示)是在4°C的环境中发生三个星期。后1、2、3周,0.5毫升的媒介是接受KOH和接种到选择性琼脂板上。这个过程的浓缩是很有用的y enterocoliticay伪。好寒性的,鼠疫可以生长在4°C。然而如果中选择性较低,环保鼠疫物种和其他细菌也可以用在浓缩(17]。碱处理的介质有助于减少这种非鼠疫背景植物。冷浓缩媒体用于检测鼠疫食物和水样本(1)磷酸盐(PBS;880毫升0.061 Na2HPO4120毫升0.061 KH2阿宝4,0.85%的氯化钠)[21),(2)PBS和1%甘露醇和0.15%胆汁盐(PMB) (22),(3)PBS蛋白胨0.5%和1%的山梨糖醇,0.15%胆汁盐(公安局)23),(4)PBS蛋白胨0.25%和0.25%甘露醇(PMP) [5),(5)缓冲蛋白胨水(BPW,默克公司,德国)。

替代冷浓缩是选择性富集。选择性富集包含抗菌药物使用媒体。几个选择性浓缩媒体隔离y enterocolitica在更高的温度下开发(17]。一般来说,冷浓缩收益率较高回收率的致病性y enterocolitica比选择性富集。此外,一个有效的选择性浓缩系统y伪还没有被开发出来,所以目前的选择性富集过程尤其低。

然而,在爆发的情况下,选择性富集程序隔离的致病性y enterocolitica可用于快速检测和确认的病原体。在这种情况下,9毫升Irgasan-ticarcillin-potassium氯酸(ITC,默克,达姆施塔特,德国)接种1毫升的介质从寒冷的浓缩和耗氧孵化25 - 30°C 48小时(22]。

2.4。快速分离和浓度鼠疫从食品样品细胞计数和PCR (18]

传统的协议快速分离和食品中食源性致病菌浓度样品使用过滤,离心,浮力密度离心(BDC)之前由活细胞计数量化和实时PCR如图2。25克食品样品与225毫升0.02%的渐变20-BPW混合在一个小塑料袋(Stomafilter P型)和均质在三角胸衣2分钟。大约220毫升的部分匀浆的过滤解决方案放在消毒350毫升玻璃管和离心1880 g×5分钟在室温下,用一个摇摆转子。上部是转移到消毒500毫升塑料管,然后在16000×g离心5分钟在室温下。然后颗粒悬浮在1.5毫升的0.15 M氯化钠和离心机在14500×g桌上型离心机在室温下为5分钟。合成颗粒收集并用于第二步。

第二步是浮选和沉降BDC食源性致病菌的净化。浮选试验,0.5毫升的部分样品悬浮液混合1毫升的1.050 g / mL Percoll解决方案(法玛西亚生物技术,瑞典)和离心机在4500×g在室温下15分钟。上部,包括食品矩阵,小心地删除。沉降试验,底部部分(约0.5毫升),包括生物、食物残渣,浮力密度最高的质量,均质,然后放在上面两层(0.6毫升的1.050 g / mL Percoll解决方案和0.6毫升的1.123 g / mL Percoll解决方案)在1.5毫升超小型电子管两个密度标记(1.033 g / mL橙色和绿色为1.098 g / mL)。准备在14500×g离心5分钟在室温下,然后用无菌1 mL吸量管,1毫升取自两个制造商和密度之间的界面分为两个样品。样本添加到1毫升的0.15 M氯化钠1.5毫升超小型电子管。

然后准备在14500×g离心5分钟。底部部分(0.5毫升)与1毫升的0.15 M氯化钠resuspended然后在14500×g离心5分钟。每个颗粒用于活细胞计数和DNA提取InstaGene矩阵(Bio-Rad)。一分的样本是解决50μL的0.15 M氯化钠,然后活细胞计数(CFU / g),由培养获得每个稀释(10μL)使用选择性琼脂板,确定这些BDC-lysate颗粒(50μL),另一部分是处理50μL InstaGene矩阵进行DNA提取实时qPCR之前使用游泳时底漆的致病性y enterocoliticay伪。25克食品样品的总量减少到0.1毫升,和目标生物样本的理论集中在2小时250倍。

2.5。隔离鼠疫使用选择性琼脂媒体

隔离鼠疫和致病性鼠疫(致病性y enterocoliticay伪)可以通过使用Cefsulodin-Irgasan-Novobiocin琼脂(CIN琼脂,Difco Oxoid) [20.),包含0.1%七叶灵和0.05%柠檬酸铁CIN琼脂(修改后的毒性鼠疫enterocolitica琼脂(mVYE琼脂))(24]。

CIN琼脂有助于加快复苏y enterocolitica和mVYE琼脂毒性与无毒隔离(数字34)。特色深红色中心(“靶心”)和一个透明的保证金和直径2 - 4毫米的出现鼠疫殖民地在30°C CIN孵化24小时是重要的识别,由于甘露醇的存在。鼠疫中的甘露醇发酵培养基,产生一个酸性pH值使殖民地红颜色和外观“靶心”。

mVYE琼脂是致病的最大的优势y enterocolitica,形成红色的殖民地,很容易从最不致病的分化鼠疫生物和其他革兰氏阴性细菌,形成深红色的殖民地与黑暗的边缘区由于甘露醇发酵、七叶灵水解。y伪,形成暗销殖民地由于七叶灵水解,很容易从最不致病的分化鼠疫生物。

“靶心”殖民地在CIN琼脂和红色的殖民地mVYE琼脂是怀疑的毒性y enterocolitica(有时y kristensenii)。红销殖民地在CIN琼脂和深红色的销殖民地mVYE琼脂是怀疑y伪。

2.6。第一个殖民地从选择性琼脂媒体确认试验

殖民地表现出典型的形态在CIN和mVYE琼脂(至少四个殖民地从每个琼脂板)的选择。压力是根据表中所示的标准确认1。第一个确认测试是由接种尿素肉汤,TSI介质,LIM介质,Bile-esculin琼脂和孵化24小时30°C。


测试 媒介 条件 特征 反应
物种 y enterocolitica y伪

第一个确认测试 尿素肉汤 30°C, 24小时 尿素 + +
TSI 倾斜/列 黄/黄 红/黄 红/黄
H2年代
气体
LIM 细胞溶解酶
吲哚 d
能动性 + d + +
Bile-esculin琼脂 七叶灵 + +

第二个确认测试 Pyrazinamidase-test琼脂 30°C, 48 h Pyrazinamidase +
TSB 25°C & 37°C, 24 h 自身凝集 + + +

生物型的y enterocolitica
1 1 b 2 3 3变种副总裁 4 3副总裁- - - - - -,年代 1、2、3、6 5 4
基因群y伪

生物型测试 30°C, 48 h 脂肪酶 + +
吲哚 + + (+)
木糖 + + + + + + + + +
Voges-Proskauer(副总裁) + + + + +
蔗糖 + + + + + +
差异化测试 鼠李糖 + + +
蜜二糖 +

血清学分型 其他人 O: 8 27 O O: 5: 9 O: 3 O: 3 O: 3 O: 3 O O: 1: 15 O: 3 的一部分
O: 1、
5,
6,
7,
9,
O: 10,
11,
O: 12

Pyrazinamidase测试是由接种的倾斜Pyrazinamidase测试琼脂和孵化30°C 48小时。然后1毫升1%刚做好的硫酸高铁铵的水溶液是偏倒。15分钟后,反应了。褐色的粉色表示pyrazinic酸的形成,是一个积极pyrazinamidase反应。
自身凝集试验进行接种Trypticase酱油汤(TSB;桶)(或MR-VP介质;Difco)和孵化24小时25°C和37°C。的毒性plasmid-positive应变总是autoagglutinated TSB种植时37°C,但没有25°C。

根据目标生物,殖民地被选中作进一步的检验。在的情况下y enterocolitica,殖民地,尿素是正面的;赖氨酸- LIM介质;没有气体形成的TSI介质;葡萄糖积极、蔗糖积极;乳糖-(黄色斜和黄色TSI中的琼脂列中)应该被选中。如果目标是y伪,y enterocolitica生物型3副总裁- - - - - -和蔗糖- / O血清型:3,葡萄糖积极的殖民地,蔗糖负数,乳糖-(黄色和红色偏TSI中的琼脂列中)应该被选中作进一步的检验。应该注意的是,致病性y enterocolitica菌株(O血清型:3:5日,27日,O: 8 O: 9)七叶灵是负面的y伪压力和不致病的y enterocolitica1株(生物型/其他许多种血清型)七叶灵是积极的。

2.7。第二个确认测试从第一个确认测试

株疑似为致病性y enterocoliticay伪第一个确认测试的第二选择确认测试(pyrazinamidase测试(25)和自身凝集试验(26])。对于pyrazinamidase测试,测试菌株接种到pyrazinamidase琼脂偏(见下文),在30°C 48小时孵化。对于自身凝集试验,压力是孵化Trypticase酱油汤(TSB;桶)(或MR-VP介质;Difco) 25°C和37°C 24小时。Pyrazinamidase测试琼脂。Trypticase大豆琼脂(Difco) (30.0 g)。酵母提取物(Difco) (3.0 g)。Pyrazinecarboxamide(默克公司)(1.0 g)。pH6 Tris-maleate(0.2)(1000毫升)。5毫升的部分培养基是热压处理过的和冷却,使偏。

pyrazinamidase测试是迄今为止染色体显性标准区分潜在的致病性和非病原的压力。致病性y enterocoliticay伪显示消极反应,不致病的鼠疫菌株显示积极的反应,把褐色的粉红色的亚铁盐(图5)。自身凝集试验阳性的质粒鼠疫(毒性)- pYV——积极的菌株y enterocoliticay伪孵化的37°C而不是25°C(图6)。亚文化的pYV失去压力,特别是在37°C,并存储,显示消极反应。

2.8。进一步的生化和血清学确认

纯粹的疑似菌株致病性y enterocoliticay伪准备在血琼脂或其他营养琼脂。菌株进行氧化酶活动(负面),进行革兰氏染色法(负)。然后执行菌株生物型的y enterocolitica或基因的分组y伪根据表中所示的标准1。血清型是由幻灯片使用商业抗血清凝集O: 3 O: 5 O: 8 O: 9y enterocolitica(Denka Seiken、东京、日本)和抗血清O: 1, O: 2 O: 3 O: 4、O: 5和O: 6 (Denka Seiken)y伪。的血清型和subserotypey伪可能通过O-genotyping使用o抗原基因提供集群范围内进行pcr (27]。

以下参数可以用来区分y enterocolitica和其他鼠疫物种:蔗糖(积极的),鼠李糖(负面)、蜜二糖(负面),鸟氨酸脱羧酶(正面)和Voges-Proskauer (VP)阳性。然而,副总裁和/或sucrose-negative株y enterocolitica(18,28,29日)和melibiose-negative菌株y伪(16可能发生)。

y enterocoliticaO血清型:3 /生物型4分布世界各地,在西方国家是人类主要致病菌株。然而,O血清型:3副总裁/生物型3变体- - - - - -是人类主要致病菌株在中国,台湾,日本,和O血清型:3 /生物型3副总裁- - - - - -蔗糖- (S- - - - - -在日本)也报道。O血清型:5,27日报道,在美国,中国,和日本,和O血清型:9,来自北欧国家、中国和日本,属于生物型2。来自美国和日本的O血清型:8属于生物型1 b。生物型1包括许多种血清型,没有与人类相关疾病,是常见的食品和环境。

y伪菌株属于基因1组1到6和血清型,1 b, c 1, 2 a、2 b, c 2, 3, 4, 4 b、5 a, b 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12、13、14和15所示。遗传组3(远东systemic-pathogenicity类型)/血清型1 b, c 1, 2 a、2 b, c 2, 3, 4, 4 b、5 a, b 5, 6, 7, 8日,10日和15的人类病原体在日本、中国和韩国。遗传组2(欧洲gastroenteric-pathogenicity类型)/血清型1 a和1 b和遗传组5 / O血清型:3是西方国家的人类病原体。尽管大多数的y伪蜜二糖积极、遗传组4 / O血清型:1,O: 5, O: 6 O: 7, O: 9 O: 10 O: 11日和O: 12(不致病的病毒株),分布在日本的环境,和遗传组5 / O血清型:3是蜜二糖- (16]。

2.9。通过PCR快速检测的分子检测y enterocolitica

用PCR、致病性y enterocolitica可以检测到样品快速、高特异性和敏感性17]。几个PCR化验检测pYV-positive已经开发出来y enterocoliticay伪在临床、食品和环境样品。这些样品用引物瞄准游泳时virF基因位于pYV。因为可能的质粒损失亚文化和存储(30.),PCR方法针对染色体毒性基因也已创建环境样品。的苦恼基因位于染色体的致病性y enterocolitica菌株,发票基因位于染色体的y伪菌株,是最常用的目标。多重PCR方法使用引物的混合物发票(5′-TAAGGGTACTATCGCGGCGGA-3′, 5′-CGTGAAATTAACCGTCACACT-3′),苦恼(5′-ACTCGATGATAACTGGGG AG-3′, 5′-CCCCCAGTAATCCATAAAGG-3′),和virF(5′-TCATGGCAG AACAGCAGTCAG-3′, 5′-ACTCAT CTTACCATTAAGAAG-3′) (31日设计了检测y enterocoliticay伪在食物和水32]。

实时PCR是一种强大的进步的基本PCR技术。目前,最流行的实时PCR检测是基于“Taqman”和“SYBR绿色”方法。Taqman系统5′核酸酶测定,利用特定的杂交dual-labelled Taqman探针PCR产品。SYBR绿色系统是基于绑定SYBR荧光绿色染料的PCR产物(33]。染色体编码苦恼(34),yst(35基因,plasmid-borne游泳时基因(36,37)和一个鼠疫特殊区域的16 s rRNA基因(37,38)已被用于实时PCR。

致病性y enterocoliticay伪菌株会产生积极的PCR产品游泳时基因(39]。使用SYBRGreen实时PCR分析,Tm值的游泳时引物对(yadA-F1757: 5′-ACGAGTTGACAAAGGTTTAGCC-3′和yadA-R1885: 5′-GAACCAACCGCTAATGCCTGA-3′)致病性之间也是不同的y enterocolitica(82.2°C)y伪(81.5°C)株(图7)。因此,该引物对被证实是有用的检测和分化两个致病鼠疫物种。

3所示。结论

鼠疫enterocoliticay伪继续对食品安全非常重要。而鼠疫可以在许多类型的食物,没有太多的流行信息。本文涵盖了传统商用和pcr进行病原的检测程序鼠疫在食物。这些方法有效目标病原的检测方法y enterocoliticay伪在食物。然而,需要快速测试方法的发展促进更加及时和有效的测试。

引用

  1. m . l . acker s Schoenfeld j . et al .,林言箴”的爆发年代O: 8感染与巴氏杀菌奶。”《传染病杂志》上的研究,卷181,不。5,1834 - 1837年,2000页。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  2. s . Aleksic a·g·Steigerwalt j . Bockemuhl g . p . Huntley-Carter, d·j·布伦纳。”鼠疫rohdeisp. 11月隔绝人类和狗粪便和地表水,”国际期刊的细菌学,37卷,不。4、327 - 332年,1987页。视图:谷歌学术搜索
  3. c . c . G Aulisio j . t . Stanfield s . d . Weagant和w·e·希尔,”Yersiniosis与豆腐消费:血清学、生化和致病性的研究鼠疫enterocolitica隔离。”《食品保护,46卷,第230 - 226页,1983年。视图:谷歌学术搜索
  4. 沙玛,p . Sachdeva, j . s . Virdi“新兴水传播病原体,”应用微生物学和生物技术,卷61,不。5 - 6,424 - 428年,2003页。视图:谷歌学术搜索
  5. h·福岛,k .齐藤m . Tsubokura, k .大月。”鼠疫种虫害在松江的地表水,日本。”Zentralblatt毛皮Bakteriologie Mikrobiologie和卫生,卷179,不。3、235 - 247年,1984页。视图:谷歌学术搜索
  6. d . Grahek-Ogden b . Schimmer k . s . Cudjoe k . Nygard和g . Kapperud”爆发鼠疫enterocolitica血清组O: 9感染和加工猪肉、挪威、”新发传染病,13卷,不。5,754 - 756年,2007页。视图:谷歌学术搜索
  7. e . j . Bottone。”鼠疫enterocolitica:概述和流行病学关联。”微生物和感染,1卷,不。4、323 - 333年,1999页。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  8. h·福岛”,鼠疫enterocolitica,“在食源性感染和食品微生物学h .录像和t . Maruyama Eds。,pp. 315–334, Chuouhoki-shuppan, Tokyo, Japan, 2009.视图:谷歌学术搜索
  9. h·福岛“直接隔离鼠疫enterocolitica鼠疫的伪从肉”,应用与环境微生物学,50卷,不。3、710 - 712年,1985页。视图:谷歌学术搜索
  10. h·福岛“直接隔离鼠疫的伪从淡水在日本,“应用与环境微生物学,卷。58岁的没有。8,2688 - 2690年,1992页。视图:谷歌学术搜索
  11. m .井上h .中岛美嘉t·森r . Sakazaki k(和m . Tsubokura。”鼠疫的伪感染山区。”微生物学和免疫学》12卷,第310 - 307页,1991年。视图:谷歌学术搜索
  12. k . Shiozawa t .仁科y古板,t·森s Akahane k .伊藤,“殖民扁桃体的猪鼠疫enterocolitica”,微生物学和免疫学》12卷,第67 - 63页,1991年。视图:谷歌学术搜索
  13. m .井上h .中岛美嘉和o . Ueba社区爆发鼠疫的伪”,微生物学和免疫学,28卷,不。8,883 - 891年,1984页。视图:谷歌学术搜索
  14. 佐藤大m . Tsubokura k . k . et al .,“特殊特性的分布鼠疫的伪在日本,“临床微生物学杂志,27卷,不。4、790 - 791年,1989页。视图:谷歌学术搜索
  15. h·福岛”,鼠疫的伪,“在食源性感染和食品微生物学h .录像和t . Maruyama Eds。,pp. 335–346, Chuouhoki-shuppan, Tokyo, Japan, 2009.视图:谷歌学术搜索
  16. h·福岛,y松田,r·塞其et al .,“远东和西方国家之间地理异质性毒力质粒的患病率,超级抗原鼠疫的伪派生的有丝分裂原,高致病性岛之间鼠疫的伪压力。”临床微生物学杂志,39卷,不。10日,3541 - 3547年,2001页。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  17. m . Fredriksson-Ahomaa和h . Korkeala“低致病性的发生鼠疫enterocolitica在临床、食品和环境样品:一个方法论的问题,“临床微生物学检查,16卷,不。2、220 - 229年,2003页。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  18. h·福岛,k . Katsube y哈塔,r .岸和藤原,“食品中食源性致病菌的快速分离和浓度样品由活细胞计数和实时PCR量化之前,“应用与环境微生物学,卷73,不。1,第100 - 92页,2007。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  19. c . c . g . Aulisio i . j .梅尔曼和a·c·桑德斯碱方法的快速复苏鼠疫enterocolitica鼠疫的伪从食物,”应用与环境微生物学,39卷,不。1,第140 - 135页,1980。视图:谷歌学术搜索
  20. d . a . Schiemann Alkatolerance”鼠疫enterocolitica作为选择性的基础隔离从食物丰富功能,“应用与环境微生物学,46卷,不。1月22 - 27日,1983页。视图:谷歌学术搜索
  21. j·s·帕特森和r·库克的恢复方法Pateurella伪从粪便,”《华尔街日报》的病理学,细菌学卷,85年,第242 - 241页,1963年。视图:谷歌学术搜索
  22. 匿名的,”微生物的食物和动物饲养stuffs-horizontal假定的致病性检测的方法鼠疫enterocolitica”,EN ISO10273:2003,国际标准化组织,瑞士日内瓦,2003年。视图:谷歌学术搜索
  23. e . de Boer和j·f·m·Nouws“屠宰猪和猪肉作为人类致病的来源鼠疫enterocolitica”,国际食品微生物学杂志》上,12卷,不。4、375 - 378年,1991页。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  24. h·福岛”,新的隔离毒性选择性琼脂培养基鼠疫enterocolitica”,临床微生物学杂志,25卷,不。6,1068 - 1073年,1987页。视图:谷歌学术搜索
  25. k . Kandolo g .“,”Pyrazinamidase活动鼠疫enterocolitica和相关的生物。”临床微生物学杂志,21卷,不。6,980 - 982年,1985页。视图:谷歌学术搜索
  26. w·j·Laird, d . c .瓦诺。”Yersiniae自身凝集和毒性的相关性,”临床微生物学杂志,11卷,不。4、430 - 432年,1980页。视图:谷歌学术搜索
  27. t . Bogdanovich e . Carniel h .福岛和m . Skurnik”使用的o抗原基因的识别和O-genotyping提供集群范围内的pcr鼠疫的伪年代”,临床微生物学杂志第41卷。。11日,第5112 - 5103页,2003年。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  28. h·福岛,k . Maruyama Omori, k .伊藤和金子,”sucrose-negative的隔离鼠疫enterocolitica生物型3 O3菌株及其致病性血清型”目前微生物学,17卷,不。4、199 - 202年,1988页。视图:谷歌学术搜索
  29. g .“m·詹森a·g·Steigerwalt, d·j·布伦纳。”鼠疫mollaretiisp. 11月和鼠疫bercovierisp. 11月,原名鼠疫enterocolitica生物群3和3 b”,国际期刊的细菌学,38卷,不。4、424 - 429年,1988页。视图:谷歌学术搜索
  30. b . w . Blais和l . m . Phillippe”的比较分析游泳时苦恼聚合酶链反应的方法强鼠疫enterocolitica”,食品控制》第六卷,没有。4、211 - 214年,1995页。视图:谷歌学术搜索
  31. b·w·雷恩和s . Tabaqchali”病原的检测鼠疫enterocolitica通过聚合酶链反应”,《柳叶刀》,卷336,不。8716,693年,页1990。视图:谷歌学术搜索
  32. h .及其m .井上t·森伊藤k . i, e .荒川和h .渡边”的探测和识别鼠疫的伪和致病性鼠疫enterocolitica通过改进聚合酶链反应方法,”临床微生物学杂志,30卷,不。9日,第2486 - 2484页,1992年。视图:谷歌学术搜索
  33. 和h . m . Fredriksson-Ahomaa a Stolle Korkeala,“分子流行病学鼠疫enterocolitica感染。”《免疫学和医学微生物学卷,47号3、315 - 329年,2006页。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  34. 公元Jourdan s c·约翰逊,即诉韦斯利。”发展fluorogenic 5 '核酸酶PCR试验检测的苦恼的致病基因鼠疫enterocolitica”,应用与环境微生物学,卷66,不。9日,第3755 - 3750页,2000年。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  35. a . Vishnubhatla d . y . c . Fung r·d·Oberst m·p·海斯t . g . Nagaraja和s . j . a .洪水“快速5 '核酸酶(TaqMan)试验检测毒性菌株鼠疫enterocolitica”,应用与环境微生物学,卷66,不。9日,第4135 - 4131页,2000年。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  36. h·福岛、y Tsunomori和r·塞其“双实时SYBR绿色PCR检测化验的17种凳子的食品或水传播的病原体,”临床微生物学杂志第41卷。。11日,第5146 - 5134页,2003年。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  37. b . Norling p·沃尔夫,p . Radstrom”风险评估的假阳性食品定量实时PCR结果,由于检测的DNA来自死细胞,”《微生物方法,60卷,不。3、315 - 323年,2005页。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  38. k·森”,快速的识别鼠疫enterocolitica血液中5的核酸酶PCR试验”,临床微生物学杂志,38卷,不。5,1953 - 1958年,2000页。视图:谷歌学术搜索
  39. h·福岛,j .森y Etoh et al .,”同时筛选24目标基因的食源性病原体35食源性暴发使用多路实时SYBR绿色PCR分析,“国际微生物学杂志ID 864817条,卷。2010年,18页,2010年。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索

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