文摘

从药用植物内生细菌分离是小说的公认的有价值的来源生物活性化合物与不同的活动,如抗菌,抗癌,抗病毒。在这项研究中,11个细菌内生菌分离得到表面消毒根和离开组织,药用植物Dicoma是。植物内生菌的细菌被测序16 s rRNA基因,和属于五个属即杆菌,葡萄球菌,Stenotrophomonas,肠杆菌属,Pantoea。占主导地位的属是芽孢杆菌有5株,葡萄球菌与两种Stenotrophomonas有两个菌株。原油提取七选五致病性菌株细菌内生菌抗菌活性表示反对大肠杆菌(写明ATCC 25922),蜡样芽胞杆菌(写明ATCC 10876),金黄色葡萄球菌据国家反恐怖主义中心(6571),铜绿假单胞菌(写明ATCC 27853)克雷伯氏菌oxytoca(写明ATCC 13182),显著抑制浓度从0.312毫克/毫升0.625毫克/毫升。最后,基于内生菌的粗提取的数据分析,我们确定了生物活性次生代谢产物与报道生物活动,如抗菌、抗炎、抗氧化性能和生物技术应用于医药、农业等行业。本研究首次报道细菌内生菌与d .是对细菌病原体的抗菌活性。

1。介绍

药用植物的生物活性化合物的新型药物开发(1]。从历史上看,植物与治疗功效被利用在亚洲和非洲等大洲,治疗疾病,如腹泻、头痛和发烧1]。在现代天,大约80%的世界人口,尤其在发展中国家,依靠草药从传统治疗师治疗各种疾病2]。

药用植物的使用新的药物发现不过是一个限制因素,因为有时所需的植物材料是大量临床研究之前,甚至使它的产品市场;此外,一些化合物来自濒危或特有的植物物种。在解决这些问题所取得的进展之一是生活在植物、微生物的发现称为内生菌产生相同或相似的化合物产生的类似植物宿主(1,3]。内生菌是真菌或细菌和驻留在植物组织不造成任何伤害。当前的兴趣研究细菌内生菌。内生细菌属于不同属的许多生物活性物质提取植物内生细菌是报道与各种生物活性[小说4]。微生物是一个很好的来源提取生物活性化合物由于其易于隔离,增长,无法对环境的负面影响和农业生产力5,6]。从商业和工业的角度来看,它更容易扩大微生物发酵,最终可以增加生物活性化合物的生产。因此,微生物与药用植物提供了一个机会,隔离新颖的生物活性物质,保护药用植物的好处,需要最少的植物内生植物隔离。

内生菌显著改善植物生长的机制包括增加必需营养素的摄入,如磷酸盐、氨、氮,生产indole-3-acetic酸和赤霉素等激素和抑制病原体扩散通过与抗菌活性次生代谢产物的生产(1]。此外,许多细菌内生菌产生的抗菌化合物属于等结构性类肽,生物碱,类固醇,奎宁,萜类化合物,酚类化合物和黄酮类化合物与不同的应用程序(7]。因此,全世界有一个新的科学努力分离内生菌并研究他们的天然产品,发挥了重要作用,抗菌、抗病毒,抗氧化,抗关节炎药、抗糖尿病的immune-suppressive化合物。

Dicoma是与地下块茎是一种多年生草本植物;它属于菊科。Dicoma是主要分布在南部非洲国家;在南非发现林波波河,西北部,豪登省,普马兰加,自由州、北开普,夸祖鲁-纳塔尔省省(8,9]。Dicoma是根和叶有ethnomedicinal用途疾病如感冒和咳嗽,发烧,溃疡、劳动力痛,痢疾,胃病,皮肤病,溃疡,伤口8]。文献表明,d .是已知生产次生代谢产物包括乙炔的化合物,二萜、黄酮、酚酸、植物甾醇、皂苷、倍半萜烯内酯,丹宁酸,三萜烯(10]和报道的一项研究[8)已经表明,这些化合物具有抗菌,抗炎,抗氧化剂,antiplasmodial,抗癌,和细胞毒性,antihyperglycaemic和王亚南属性。因此,从细菌中提取和识别小说二级生物活性化合物内生菌与这种植物可能成为选择克服耐药水平和保护植物物种最终。

本研究进行分离和识别细菌内生菌d .是少,这是一个探索药用植物与ethno-botanical历史。此外,选择内生植物次生代谢物的原油提取化验了抗菌活性和分泌次生代谢物的进一步识别使用气相色谱高分辨飞行时间质谱(GC-HRTOF-MS)。我们所知,还没有以前的工作发表在抗菌活性的细菌从药用植物内生菌分离d .是。

2。材料和方法

2.1。植物样品收集和识别

Dicoma是植物材料收集在2018年4月从自然栖息地缝在Eisleben土壤类型,南非林波波省(23.52年代29.824 E)。整个植物包括根被置于无菌聚乙烯袋和运送到实验室在4°C。植物的识别进行了约翰内斯堡大学植物标本(JRAU)和植物材料的样品标本存放JRAU凭证标本Serepa-Dlamini 204和物种的名字Dicoma是。剩下的在实验室收集植物材料立即被处理。

2.2。内生细菌的分离

后立即集合,在实验室里,内生细菌是孤立的从新鲜的叶子和根茎植物后[描述的过程11]。总之,植物部分用自来水和表面彻底清洗和70%乙醇消毒5分钟,其次是用无菌蒸馏水冲洗、浸泡在2% NaClO 3分钟,最后用无菌蒸馏水冲洗3次,最后冲洗水镀在营养琼脂板控制。surface-disinfected植物的部分被使用无菌研钵和研杵和浸渍磷酸盐缓冲剂(8 g氯化钠,氯化钾0.2克,1.44 g Na₂HPO₄和KH₂阿宝₄在pH值7.4)。无菌技术后,匀浆条纹在营养琼脂板和孵化控制盘子一起28°C 2 - 7天。板块为增长的日常观察;发展殖民地亚文化几次直到单个菌落。确认文化纯洁的菌株的基础上选择表型特征如菌落形态、菌落颜色、群体大小和革兰氏染色反应。总共11隔离被选为本研究和保存在30%甘油股票(v / v)为长期存储解决方案−80°C。

2.3。基因型特征的细菌内生菌

2.3.1。基因组DNA提取

基因组DNA提取纯固体殖民地使用Zymo研究真菌/细菌DNA MiniPrep装备按照制造商的协议(美国Zymo研究)。提取的DNA在1%琼脂糖凝胶电泳和浓度决定使用Nanodrop分光光度计(美国热费希尔科学)。

2.3.2。16 s rRNA基因序列分析

用聚合酶链反应(PCR),每一个细菌的DNA隔离放大使用16 s rRNA基因通用引物所描述的(12]。的放大16 s rDNA反应管进行了最后的25μL包含2.5μL (< 1000 ng)的模板DNA, 2.5μL (10μ米)的正向引物5′-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3 F和反向引物5′′-AAGGAGGTGATCCAAGCCGCA-3 R′, 4μL 2 x PCR主混合标准缓冲(MgCl Tris-HCI 20毫米,1.8毫米₂NH, 22毫米₄氯化钾Cl, 22毫米,0.2毫米核苷酸、5%甘油、0.06% IGEPAL®ca - 630, 0.05%渐变®20、25个单位/毫升Taq®DNA聚合酶)和最终成交填满25岁μL nuclease-free水。消极的控制(PCR混合没有DNA)是包含在所有PCR实验。使用MyCycler™热循环(美国Bio-Rad), PCR反应条件如下:最初在94°C变性3分钟,其次是35周期在94°C的变性1分钟,退火在48°C 1分钟和扩展在72°C 2分钟,和最后一个扩展72°C的10分钟。PCR产物纯化了ExoSAP-it™(美国热费希尔科学)和发送测序的商业服务提供者Inqaba Biotechnical行业(企业)有限公司,比勒陀利亚,南非。

2.3.3。系统发育分析

原始序列数据被用来创建共识序列使用BioEdit序列比对编辑版本7.2.6 [13]。获得的16 s rDNA序列受到基本的局部比对搜索工具(爆炸)分析对核糖体rna序列数据库(细菌和古生菌)国家生物技术信息中心(NCBI)(可用http://blast.ncbi.nlm.nih.gov)比较亲密相关的细菌物种。只有细菌物种相似身份百分比最高(90 - 100%)选择进行系统发育分析。系统发育树构建使用大型7 (14)与肌肉对齐后(15]。根据田村Nei DNA替换了模型。内生菌的系统发育关系与其他近亲属是集群使用最大似然方法。引导复制1000年被用作统计系统发育树中的节点的信心。外围集团被认为支持物种间的差异。16 s rRNA基因的核苷酸序列沉积基因库((https://www.ncbi.nlm.nih.gov/genbank/),加入数字地址分配。

2.3.4。加入核苷酸序列号码

加入细菌隔离被分配以下数字:MN029049 (Stenotrophomonassp.应变MHSD20)、MN029050 (肠杆菌属sp.应变MHSD22)、MN029051 (葡萄球菌sp.应变MHSD24)、MN029052 (葡萄球菌sp.应变MHSD26)、MN029053 (芽孢杆菌sp.应变MHSD28), MN078165芽孢杆菌sp.应变MHSD13 MN078166 (芽孢杆菌sp.应变MHSD14)、MN078167 (芽孢杆菌sp.应变MHSD16)、MN078168 (芽孢杆菌sp.应变MHSD17)和MN093331 (Pantoeasp.应变MHSD15)。

2.4。抗菌试验最低抑制浓度(MIC)

2.4.1。制备细菌内生植物次生代谢物的原油提取

从选择孤立的细菌内生菌次生代谢产物提取;谨慎,包括物种以前没有化验。选择的种类包括StenotrophomonasMHSD20 sp.压力,肠杆菌属MHSD22 sp.压力,葡萄球菌MHSD26 sp.压力,芽孢杆菌MHSD28 sp.压力,StenotrophomonasMHSD12 sp.压力,芽孢杆菌sp.应变MHSD14,Pantoea年代MHSD15 p压力。植物内生菌的细菌培养1 l Luria肉汤(磅)7天在28°C在180 rpm颤抖的孵化器。培养后,2 g / L的消毒安伯来特®XAD-7-HP树脂(Sigma-Aldrich,达姆施塔特,德国)添加到文化和动摇了2小时在180 rpm,吸收次生代谢物。树脂通过粗棉布过滤,筛选了3 * 200毫升的丙酮。丙酮是用旋转蒸发器蒸发。包含原油的剩余液体提取物进一步与乙酸乙酯提取3 * 1:1的比例(v / v)和乙酸乙酯与旋转蒸发器蒸发和浓缩。包含二次代谢物的粗提取物被转移到20毫升烧杯和箔覆盖储存在室温下晾干,直到进一步分析。

2.4.2。最低抑制浓度(MIC)

最低抑制浓度研究细菌体内寄生菌的粗提取物进行根据[方法16)做了一些调整。提取的短暂,股票的解决方案由溶解0.02 g 1毫升二甲亚砜(DMSO)产生一个最后的20毫克/毫升的浓度,然后连续稀释浓度的10毫克/毫升,5毫克/毫升,2.5毫克/毫升,1.25毫克/毫升,0.625毫克/毫升,0.312毫克/毫升使用Mueller-Hinton误事。致病性试验菌株革兰氏阴性细菌大肠杆菌(ATCC25922),铜绿假单胞菌(ATCC27853),克雷伯氏菌oxytoca(ATCC13182)和革兰氏阳性细菌金黄色葡萄球菌(NCTC6571)和蜡样芽胞杆菌(ATCC10876)。使用麦克法兰0.5标准,50μL 15毫升的每个病原体接种Muller-Hinton肉汤和孵化24小时37°C。96年后无菌技术microtitre板块,100μL致病性试验菌株添加水平和100年μL的粗提取液稀释浓度添加垂直从高到低浓度。负控制[100μL DMSO和100μL无菌Mueller-Hinton汤,1:1的比例(v / v)]和积极控制1毫克/毫升链霉素抗生素(瑞士Sigma-Aldrich)添加了垂直井后续的低浓度。microtitre板块在37°C孵化24小时。一式三份的麦克风进行了分析。孵化后,十毫升的刃天青钠盐溶液(0.02% (w / v))添加到井作为微生物的指标增长和孵化为另一个2小时。粗提取物抑制致病菌株的能力没有颜色的变化表明了刃天青钠盐溶液(仍然是蓝色)和孵化后的颜色由蓝色变成粉红色表示没有细菌的抑制作用。麦克风(最低浓度的提取显示无明显增长)值直观地确定。

2.5。使用GC-HTOF-MS代谢物指纹图谱分析

代谢物分析的粗提取物进行了二维模式使用飞马GC-HRTOF-MS系统(美国Leco公司圣约瑟夫,MI)。每个样本的一个微升注入和氦用作载气在1毫升/分钟流量。主要列是一个Restek Rtx-5siLMS (30 m×250μm d.f。)和第二列Restek Rxil7siLMS (1×250μ米×0.25μm d.f)。GC烤箱温度维持在60°C 1分钟,然后增加到330°C 10°C / min,然后5分钟在传输线温度为280°C。入口温度为250°C。女士是优化−70 eV(电子能源)离子源在250°C。收集到的质量范围是40到660米/z与收购10光谱/秒的速度。生成的数据进行了分析使用ChromaTOF®软件。NCBI Pubchem数据库,可用https://pubchem.ncbi.nlm.nih.gov/(17),被用来解释官能团和通过在线数据库,可用http://www.way2drug.com/passonline被用来预测生物活性的代谢产物18]。

2.6。统计分析

麦克风的原油提取统计验证了单向方差分析(方差分析)使用Microsoft Excel 2016。显著的差异≤0.05被认为是统计上的不同。

3所示。结果与讨论

3.1。形态学鉴定

在这项研究中,共计11个细菌内生菌从5属属于两门(厚壁菌门和变形菌门)隔绝表面消毒健康药用植物的叶子和根d .是。多数的内生细菌分离从根6隔离,紧随其后的是树叶和隔离(表51)。观察一个伟大的形态多样性,每个隔离显示独特的特点的殖民地色彩,形状,大小,和利润率。隔离被分成两个不同的类基于革兰氏染色技术,(7隔离)革兰氏阳性细菌和革兰氏阴性细菌(4隔离)。

表面消毒技术是足够的控制盘显示没有微生物的增长。因此,细菌菌落媒体视为内生细菌的增长d .是。我们所知,这是第一次报告的隔离细菌内生菌d .是。芽孢杆菌属发生在叶和根样品,有一个更大的发生与5株。这些结果与各种研究报道不同属的厚壁菌门和变形菌门包括芽孢杆菌(19),葡萄球菌(20.),Stenotrophomonas(21),肠杆菌属(22),而Pantoea(23];从这些属细菌物种似乎发生许多植物的细菌内生植物群落。

细菌在植物内生菌的分布和多样性受到许多因素的影响包括寄主植物物种,年龄和类型的植物组织,地理和栖息地分布,采样季节,表面灭菌方法,增长媒体,和培养条件24]。在这项研究中,缝土壤的植物材料收集在2018年4月,我们利用营养琼脂的增长和隔离细菌内生菌,并且这导致有限数量的确定细菌内生菌。

3.2。分子识别和细菌内生菌的系统发育分析

16 s rRNA基因序列识别是一个快速细菌物种的分子识别的方法。厚壁菌门和变形菌门被发现孤立的内生细菌(表2)。细菌分为五类,包括隔离芽孢杆菌5五隔离,葡萄球菌与2隔离,Stenotrophomonas1与分离肠杆菌属1孤立,和Pantoea1隔离,指示芽孢杆菌作为最主要的属。获得的16 s rDNA序列提交NCBI和分配表中提供的加入数字2。每个属在单独的系统发育树分析(数据1- - - - - -5)。

葡萄球菌sp.应变MHSD24和MHSD26序列是符合的葡萄球菌属,大肠杆菌AE-1 (AB269763)作为一个外围集团(图1)。应变MHSD24是密切相关的葡萄球菌warneriMK791673有98.29%相似而应变MHSD26接近葡萄球菌pasteuriMK875469相似(表为97.44%2)。系统发育分析表明,应变MHSD26有多源的集群葡萄球菌pasteuriDCo1和美国warneriBPB17,应变MHSD24也多源的关系美国warneriPSB16。数字高于或低于1000年之后生成的节点显示引导值复制。

肠杆菌属sp.应变MHSD22是密切相关的肠杆菌属ludwigiiKU054383相似(表为97.48%2)和系统发育分析显示应变MHSD22多源的关系密切相关肠杆菌属物种;链球菌(AY360354)作为一个外围集团(图2)。

Stenotrophomonas应变MHSD20和MHSD12与种类密切相关Stenotrophomonas属,大肠杆菌AE-1 (AB269763)作为外群分类单元(图3)。应变MHSD20是密切相关的Stenotrophomonas maltophilia(KM279660)有98.55%的相似度和应变MHSD12是密切相关的Stenotrophomonas maltophilia(MK734043)有96.85%相似(表2)。过去,两株显示出高度的相似性,具有多源的关系密切相关Stenotrophomonas物种(图3)。Pantoeasp.应变MHSD15有多源的关系密切相关的物种(图4),它有92.70%的相似度Pantoea sp。(MH769026)(表2)。

同样,序列的芽孢杆菌sp.应变MHSD28是密切相关的蜡样芽胞杆菌(MK503979)有97.88%的相似度,芽孢杆菌sp.应变MHSD13是密切相关的芽孢杆菌对象(MK850860)有97.33%的相似度,芽孢杆菌sp.应变MHSD14是密切相关的苏云金杆菌(LT838181)有97.68%的相似度,芽孢杆菌sp.应变MHSD16是密切相关的芽孢杆菌年代p。(EUC01244)相似度90.96%,芽孢杆菌sp.应变MHSD17是密切相关的蜡样芽胞杆菌(KJ935725)有98.15%的相似度如表示2。系统发育分析显示应变MHSD28和MHSD16姐妹关系,应变MHSD17和MHSD14形成多源的关系相关芽孢杆菌物种,MHSD13也多源的关系密切相关的物种(图5)。

植物内生菌分离细菌鉴定到属水平使用16 s rRNA基因的系统发育分析;我们建议以外的其他基因测序物种16 s rRNA进一步描述和系统描述。16 s rRNA基因已被推荐用于鉴定细菌,这种技术被认为是黄金标准物种分类,因为原核生物的基因是无处不在的,包含大约1500个碱基是足够的对于物种分析(25]。16 s RNA基因还包括变量之间的区域,使物种比较远亲物种和16 s rRNA基因不太可能接受水平基因转移(HGT) [42]。尽管16 s rRNA基因适合细菌鉴定(26],许多细菌物种不能分化他们的16 s rRNA基因序列密切相关的物种之间的高相似性由多源的关系的形成还表示在种系发生树(25]。细菌内生菌中确定本研究多源的形成关系密切相关的压力。在另一项研究[27),基于phylogenomic分析,表明Stenotrophomonas应变MHSD12密切相关Stenotrophomonas pavanii应变DSM 25135这是一个从甘蔗内生植物隔离28]。

3.3。抗菌试验使用最低抑制浓度

植物内生细菌的抗菌活性的原油提取决心对五个致病性试验菌株:革兰氏阴性细菌大肠杆菌(ATCC25922),铜绿假单胞菌(ATCC27853),克雷伯氏菌oxytoca(ATCC13182);革兰氏阳性细菌金黄色葡萄球菌(NCTC6571)和蜡样芽胞杆菌(ATCC10876)。麦克风活动变化取决于所使用的测试压力,大多数提取显示有趣的结果,积极控制链霉素1毫克/毫升是有效的对所有测试菌株。提取的粗提取物的最低抑制浓度细菌内生植物范围从0.312毫克/毫升10毫克/毫升。MIC值最低的是0.312毫克/毫升和其他原油提取表示MIC值高于1毫克/毫升,如表所示3。

细菌体内寄生菌Stenotrophomonassp。应变MHSD20 MIC值从0.625毫克/毫升5毫克/毫升,抑制b的仙人掌在0.625毫克/毫升。肠杆菌属sp.应变MHSD22显示麦克风值从1.25毫克/毫升10毫克/毫升被认为是noninhibiting。的粗提物葡萄球菌sp.应变MHSD26麦克风集中值从0.312毫克/毫升10毫克/毫升,抑制b的仙人掌和金黄色葡萄球菌分别在0.625和0.312毫克/毫升。芽孢杆菌sp.应变MHSD28显示麦克风值从0.312毫克/毫升10毫克/毫升,抑制金黄色葡萄球菌0.312毫克/毫升大肠杆菌在0.625毫克/毫升。原油中提取的芽孢杆菌sp.应变MHSD14 MIC值0.312毫克/毫升5毫克/毫升抑制金黄色葡萄球菌在0.312毫克/毫升,最后Pantoeasp.应变MHSD15原油提取MIC值0.625毫克/毫升10毫克/毫升抑制金黄色葡萄球菌在0.625毫克/毫升。与一些研究这些发现都是相等的,这表明,内生细菌已被证明是小说的潜在可靠的来源与抗菌活性生物活性化合物10]。粗提取物的麦克风值< 1毫克/毫升进行分类有显著的抗菌活性,同时提取用麦克风值> 1毫克/毫升分为noninhibitors [29日]。内生植物的大部分原油提取有显著抑制值最低的MIC值0.625毫克/毫升和0.312毫克/毫升。肠杆菌属sp.应变MHSD22没有显著的抑制对所有测试菌株。麦克风的原油提取值在0.625 - -0.325毫克/毫升明显不同(除了< 0.05)肠杆菌属sp.应变MHSD22曾MIC值高于1对所有测试菌株。

之间的抑制革兰氏阳性和革兰氏阴性的差异可能是由于其细胞壁结构的变化。革兰氏阴性细菌有一个额外的外膜,这可能增加对抗菌素不渗透性。其他研究也观察到类似的结果(30.]。粗提取物的抗菌活动获得的细菌内生菌的研究提供的证据表明,内生细菌可能有潜力将其他致病细菌,这需要他们在药物发现中使用。

3.4。气相色谱高分辨飞行时间质谱分析

据报道,细菌内生菌产生相同或相似的生物活性化合物产生的寄主植物(1),从而使其小说的有前途的来源的分子与各种生物技术的应用程序。Dicoma是ethnomedicinal历史治疗咳嗽,感冒发烧,和劳动力的痛苦与药理潜在抗菌,抗炎,antiplasmodial活动可能是一个潜在的目标生物活性次生代谢产物的研究(8]。不同类型的次生代谢物如酚酸、黄酮类化合物、三萜之前被确认d .是原油提取(8]。在最近的研究中,我们确定了15个化合物从乙酸乙酯粗提取的细菌内生菌分离d .是。识别和描述的次生代谢产物会导致新发现的化合物为药物开发(31日]包括发现感兴趣的化合物在食品、化妆品等行业。大部分的确定化合物在这项研究中已报告拥有有趣的生物活性包括抗菌、抗氧化、抗炎总结如表4。据报道,苯甲酸苄酯作为香味成分,杀虫剂,pH值调节器,防腐剂,溶剂和/或粘度降低代理在化妆品32]。苯甲酸苄酯被确定在两个肠杆菌属sp.应变MHSD22和Stenotrophomonassp.应变MHSD12细菌内生菌提取物,据报道有抗菌活性33]。这种化合物的鉴定表明,除了发现药物的发展,细菌内生菌也有用其他生物活性化合物的发现有益的食品,化妆品,化工34];这一发现需要进一步的研究。

9-Octadecenamide、(Z) -是一种油酸酰胺酰胺衍生油酸生物合成,显示抗氧化和降血脂药生物活性35]。之前确定芽孢杆菌原油中提取分离出花生的根际36]。据程et al。35),这种化合物也被报告为一个潜在的药用治疗情绪和睡眠障碍;它被发现在Stenotrophomonassp.应变MHSD12和Pantoeasp.应变MHSD15细菌内生菌提取物。十六烷被发现在所有细菌内生植物提取物Stenotrophomonassp.应变MHSD20作为一个例外。它是具有抗真菌和抗菌特性以及抗氧化活性(35,37]。Pyrrolo (1 a) pyrazine-1 4-dione hexahydro-3 - - - - - - -(2 -甲基丙基)被确认葡萄球菌MHSD26 sp.压力,肠杆菌属sp.应变MHSD22,芽孢杆菌sp.应变MHSD28提取这种化合物已被报道为抗生素,抗炎,胆固醇降低,抗肿瘤药物剂(38]。

二十七烷被报道有抗氧化性能39和之前确认假单胞菌种虫害隔绝豇豆属辐射(40]。在当前的研究中,二十七烷被确认芽孢杆菌MHSD28 sp.压力,芽孢杆菌MHSD14 sp.压力,StenotrophomonasMHSD12 sp.压力,葡萄球菌sp.应变MHSD26,Pantoeasp.应变MHSD15提取物。在这项研究中发现的大多数化合物有抗菌活性,这解释了重大粗提取物的抗菌活性。据我们所知,这是第一个研究报告首次细菌内生菌与d .是针对细菌病原体的抗菌活性和一道次生代谢物的分析。

4所示。结论

根据结果,我们得出这样的结论:d .是也有不同类型的内生细菌。此外,这些内生菌的粗提取物的抗菌活性是重要的致病菌株。进一步的调查应进行隔离生物活性化合物从细菌内生菌抗菌活性药物开发和使用在其他行业,如食品和化妆品。

数据可用性

本研究的16 s rRNA基因数据可从相应的作者。报道细菌内生菌在这项研究已经存入基因库加入以下数字:MN029049, MN029050, MN029051, MN029052, MN029053, MN078164, MN078165, MN078166, MN093331 MN078167, MN078168。

信息披露

本研究是基于SC Makuwa女士的理科硕士学位论文工作。

的利益冲突

作者宣称他们没有利益冲突有关的出版。

确认

我们应感谢南非国家研究基金会,Thuthuka(批准号TTK170405225920)和约翰内斯堡大学理学院,为金融支持这项研究。SC Makuwa女士收到DAAD-NRF联合国家奖学金(批准号:SFH180523334030)和约翰内斯堡大学理学院值得奖学金。