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国际农学杂志/2020/文章

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卷 2020 |文章的ID 2795108 | https://doi.org/10.1155/2020/2795108

Edy Setiti Wida Utami，Sucipto Hariyanto那 “有机化合物的含量及其在兰花种子萌发和原球茎发育中的作用"，国际农学杂志那 卷。2020那 文章的ID2795108那 12. 页面那 2020． https://doi.org/10.1155/2020/2795108

有机化合物的含量及其在兰花种子萌发和原球茎发育中的作用

Edy Setiti Wida Utami1和 Sucipto hariyanto.1

1Airlangga大学科学与技术学院生物学系，泗水60115，印度尼西亚

学术编辑：伊莎贝尔品牌
收到了 2020年1月26日
修订过的 2020年5月09
公认 2020年5月23日
发表 2020年6月11日

抽象的

本质上，植物毒液萌发是菌根真菌感染后的强制性，其用水，碳水化合物，维生素和矿物质供应显影胚胎，导致种子相对缓慢地发芽并以低萌发率发芽。1922年发现的兰花种子的非肌电萌发适用于在体外传播。成功的种子发芽了在体外受到有机化合物补充的影响本文综述了有机补充剂在促进兰科植物种子萌发、原球茎发育和幼苗生长方面的内容和作用。我们系统地从Scopus、谷歌Scholar、ProQuest等科学文献数据库以及已出版的书籍和会议记录中收集信息。椰子汁(CW)、蛋白胨(P)、香蕉匀浆(BH)、土豆匀浆(PH)、壳聚糖(CHT)、番茄汁(TJ)和酵母浸膏(YE)等多种有机化合物均能促进各种兰科植物种子的萌发和生长发育。它们还能促进幼苗发育、形成原球茎样体(PLBs)、幼苗生长和多芽形成。在培养基中单独或联合添加有机化合物，可加速种子萌发和幼苗发育。不同类型和浓度的有机养分是成功的必要条件在体外培养，取决于物种和基因型。

1.介绍

兰科的一员，是最大和最多样化的开花植物科之一，由763属和超过28,000种可接受的物种[1］.兰花在各种栖息地中发现，主要（70％）附着在森林中的树干，作为腰果，在阴影中生长，包括世界上几分之二的果皮菌群;剩下的25％是陆地，而在各种支持系统上发现5％[2那3.］.

兰花种子的食物储存组织有限，这是种子萌发和原球茎发育所需要的，使得种子在自然条件下萌发相对较低(<5%)[4.那5.］.在自然条件下，成熟的种子依靠兼容的菌根真菌进行发芽和早期发育[6.那7.］.所以，在体外兰花种子萌发是繁殖和保护的一个重要方面。种子培养在体外可以在没有真菌的帮助下发展成完整的幼苗，这是商业兰花生产的合适方法[8.-12.］.

最初，在体外种子萌发是利用从各种自然环境中分离出来的菌根真菌进行刺激，被称为“共生种子萌发”。有机营养的添加在体外培养是为了刺激种子萌发。1922年，克努森[13.]成功地开发了一种通过培养种子来刺激兰花原球茎生长的方法在体外并洒在无菌营养培养基加蔗糖上。这种技术被称为“白生种子萌发”，因为它没有涉及菌根真菌。两种方法都有效。

2.兰花种子

兰花种子是开花植物产生的种子中最小的，因此被称为“尘埃种子”[14.］.然而，尽管它们的微观结构，它们在形状、大小、颜色、重量、种皮(细胞数量、大小、纹饰)和胚胎特征方面表现出广泛的变化。

根据Molvray和Kores [15.兰花种子可以是新月形，广泛椭圆形，丝状，纺锤形，梭形，长圆形，不规则或可剥离。Verma等。[16.]确定卵状、丝状和匙形种子存在于androcorys monophylla.那Goodyera Biflora.,扁花药,分别。

种子颜色也有所不同，包括橙色黄色石斛兰formosum和Dendrobium杜森诺伦，内棕黄色虎纹石斛,黄色大花蕙兰,白色的伊利亚达尔茨利伊，淡黄色利帕里elliptica和石仙桃属pallida金黄色的Bulbophyllum mysorense，淡黄色Coelogyne breviscapa[16.那17.］.Molvray及Kores [15.显示种子大小在150 - 6000之间μM和权重范围为0.31 ~ 24μg。

种子细胞组织简单，并且由未分化的胚胎细胞和基本的胚乳组成，覆盖着透明的Testa [18.］.根据Arditti和Ghani [14.]，兰花胚相对较小且简单，通常呈椭圆形或球形，有时仅由少数细胞组成，多数没有胚乳。

3.有机营养补充剂的作用

发展与再生在体外通过添加各种有机营养素可以改善培养的植物组织[19.-21.］.这些物质包括椰汁(CW)、蛋白胨(P)、土豆匀浆(PH)、香蕉匀浆(BH)、壳聚糖(CHT)、番茄汁(TJ)和酵母提取物(YE)。有机营养素是维生素、氨基酸、脂肪酸、碳水化合物、多肽和生长因子的来源，这些都有助于生长[22.］.已经研究了少量有机营养物质的含量和在改善兰花中的原子萌发和发育中在体外模型(表1图形1）.以下部分讨论了其中一些研究。
媒体 种 有机补充剂（OS） 获得重点结果 参考
½女士 Rhynchostylis婆罗 CW：0,50,100,150,200 ml。-1 在含150 mL·L CW的½MS培养基中萌发最快(14 d)，发芽率最高(93%)-1）.移栽入土的45株苗中，有40株存活。 [23.]
m Acampe papillosa CW: 0,150 mL·L-1 加入150ml·L的CW-1对M培养基加速萌发和幼苗形成，萌发率为70.75％。然后将完全幼苗转移到粘土罐中，用砖块，泥炭藓，松树树皮和木炭碎片（1：1：1：1）的介质混合物，其中70％的幼苗存活。 [24.]
叶:0.2 g·L-1
AC: 0.2 g·L-1
太太 凤仙花macranthos CW: 0,50, 100, 200 mL·L-1 最佳种子萌发率为70.8％，并在100毫米的MS培养基上获得74.2％的质子形成率。-1CW。 [25.]
BS: 0,50, 100, 200 mL·L-1
MPS：0,50,100,200 ml。-1
BH: 0,15,30,60 g·L-1
P:0,1,2,4 克·升-1
½女士 Paphiopedilum wardii CW：0,50,75,100,150mL·L-1 在含有NAA 0.5mg·L的½mS培养基上实现最快的发芽（65天）和最佳种子萌发率（65.33％）和幼苗形成速率（35.67％）-1AC 1 g·L-1补充有100毫克-1CW。曾等人。[26.]也有报道称，高度为5厘米的植株被移栽到培养基混合物(1:2:1;V / V / V)破碎的冷杉树皮，兰花的石头，和筛过的泥炭。在温室中放置180天后，92.33%的植株成活。 [26.]
PH值:25、50、75、100 g·L-1
BH：25,50,75,100 g·l-1
T：0.5,1,1.5 g·l-1
P: 0.5、1、1.5 g·L-1
¼女士 renanthera imschootiana CW: 0、100、150、200、250 mL·L-1 ¼含有0.5 mg·l的MS培养基-1naa，1 g·l-1AC，补充有200毫克-1CW，1 G·L.-1P最适合在第5阶段的种子萌发（93.10％）和Protocorm发育（41.10％）（幼苗）。生存renanthera imschootiana在温室内，将植株移栽到泥炭藓盆中60天后发现植株(95%)。 [27.]
T: 0、0.5、1、1.5 g·L-1
P：0,0.5,1，1.5 g·l-1
pH：0,0.5,1.5,2.0g·l-1
BH: 0, 0.5, 1.5, 2.0 g·L-1
CW：200毫升/ L + P 0.5 G·L.-1
CW: 200 mL/L + P 1 g·L-1
CW:200 毫升/升 + 第1.5页 克·升-1
Hyponex 花花混合动力车 CW: 0、10、30、50、100 mL·L-1 CW浓度为50 毫升·升-1显着提高了盆腔干重和鲜重。 [28.]
½女士 万带兰pumila CW：0,50,100毫克-1 原球茎在含1mg·L的½MS培养基上培养，可获得最多的芽数(9.5个/次)-1加至100 mL·L-1CW。当含有2mg·L的½ms培养基上培养质子染色时，获得最长的枝条（0.7厘米/培养）。-1BAP加入100ml·L-1CW。 [29.]
亲属：0,1,2毫克·L.-1
BAP：0,1,2 mg·L.-1
½女士 Phaius Tankervilleae.var。阿尔巴 CW：0,50,100,150,200 ml。-1 原球茎在含50 g·L的½MS培养基上培养的芽数最高，为3.0个/外植体-1pH并补充有50毫克-1CW。 [30.]
PH值:0,25,50 g·L-1
KC Dimorphorchis LowIi. CW: 100、150、200 mL·L-1 CW浓度为150毫米-1外植体成芽率(100%)、每外植体成芽数(13.83)和茎长(38.86 mm)最高。 [31.]
TJ:100150200 毫升·升-1
BH: 25、75、125 mL·L-1
P：1,2,5 G·L.-1
叶:0.2 g·L-1
m 石斛兰鸟羽 BH: 0,10,20,30 g·L-1 CW浓度为200毫克-1在M培养基中导致最高的再生百分比（80.25％）和最高数量的PLBS / Protocorm（10）。 [32.]
CW: 100、200、300 mL·L-1
vw. 大花石斛 P：0,1,2,3 g·l-1 培养12周后，所有处理的种子发芽率均为100%。将高2-3厘米的植株移栽到用椰丝和泥炭藓(3:1;V / V)，并在温室中适应。超过90%的植株存活。 [33.]
PM，MS，M Epidendrum ibaguense昆斯 P: 0.2 g·L-1 补充2 g·L-1与无磷对照相比，在M和PM培养基中施用磷能提高种子的萌发率和原球茎的生长(90%)在体外具有2至3个叶子的小植物在罐中单独种植，泥炭苔，砖块和木炭碎片（0.25：1：1）和90％的植物存活下来。 [34.]
下午,女士 spathoglottis plicata.布拉姆 P: 0.2 g·L-1 在补充有2g·l的PM培养基上获得的种子萌发（95％）的最高百分比。-1P.将良好的小植物转移到含有由锯粉尘，椰子益官，腐殖质和煤炭组成的混合物（1：1：1：2; w / w / w）组成的罐中，并具有80％外部环境中的生存率。 [35.]
KC 石斛兰parishii P: 0.2 g·L-1 当KC培养基补充2g·L时，获得最高百分比的种子萌发（100％）-1P. [36.]
KC,女士 航空公司Ringens.(采用)。费舍尔 P:0,0.25,0.5,0.75 克·升-1 在含8.9%的KC培养基中，种子发芽率最高（89.28%） μM BAP补充0.5 克·升-1在此培养基上培养的种子生长最快(55-65天)，原球茎大小最大(1.89 mm)。植株再生通过在体外将种子萌发过程转移到具有木炭，破碎的砖块和/或树蕨根系的混合物的罐中，并且存在80％的存活率。 [37.]
½女士 Taprobanea spathulata P：1.25,2.5,5 G·L.-1 p浓度为5 g·l-1导致多种质子导热的最显着诱导（14.64）。 [38.]
TJ: 5、10、15% (w/v)
CW：5,10,15毫克-1
BM-1 Paphiopedilum venustum BH: 0,10,20,30 g·L-1 P浓度为1 g·L-1促进了每个外植体不定芽的最高再生（3.05）和每个芽的最高总植株数（4.05）。 [39.]
P：0,1,2 G·L.-1
Hyponex 万达罗克斯堡 PH值：0,2.5,5,10,20%（w/v） PH浓度为20%时，萌发率从17.2%(对照)显著提高到78.24%。 [40]
vw. Dimorphorchis LowIi. CW: 0, 10% (v/v) 150日龄荚膜种子在添加10% PH的VW培养基上萌发率最高(98.02%)，其次为10% CW(97.23%)、10% TJ(93.71%)和对照(91.79%)。 [41.]
pH：0，10％（w / v）
TJ: 0,10% (w/v)
½女士 石斛兰tosaense BH: 0.8% (w/v) 在pH浓度为8％，获得最高幼苗鲜重（0.39g）和最长的根长（7.7cm）。 [42.]
pH：0,8％（w / v）
CW: 0.8% (v/v)
½女士 石斛兰officinale PH值：0,25,50,100%（w/v） 最佳拍摄繁殖和拍摄生长培养基石斛兰officinale含有0.1 mg·l的½ms-1NAA和2mg·L-1该培养基的增殖率为6.2，茎长为2.5 cm。 [43.]
vw. Bulbophyllum nipondhii pH：0,25,50,75 g·l-1 VW培养基含100 毫升·升-1CW和补充有75 G·L.-1pH，显示出最多数量的新伪症/外植体（3.5），根数/外植体（8.1），平均根长（13.6毫米），平均叶长（19.2mm）。 [44.]
嗯 Chloraea Gavilu. BH: 0,100 g·L-1 BH成功地提高了发芽率，达到90%以上。 [45.]
TJ: 0,100% (w/v)
½女士 石斛属sp。 BH：0,2.5,5,10,20％（w / v） 当BH浓度为10%时，PLB的再生率最高，为554个/株。 [46.]
何26. Paphiopedilum hangianum. BH：0,50,100 G·L.-1 何26.含有1g·l的培养基-1P和1 mg·L-1naa并补充有100 g·l-1BH，适用于Plantlet（95.33％）。植物再生在体外萌发过程在温室条件下成功生长180天，存活率为88.5％。 [47.]
Harvais. 凤仙花macranthos CW：0,50,100毫克-1 在调查的有机补充剂中，添加BH（25和50 g·l-1）改进拍摄号码，根号，拍摄长度和根长度。 [48.]
PH值:0,25,50 g·L-1
BH：0,25,50 G·L.-1
KC Hadrolaelia purpurata. BH：0,90 G·L.-1 在补充90g·L的KC培养基中获得最高幼苗数（90.08）和叶子数（3.19）-1BH。 [49.]
P：0，1 G·L.-1
CW: 0,150 mL·L-1
vw. 蝴蝶兰属amboinensis 连续波:150毫升·L-1 有机补充剂150 mL·L-1CW加10g·L-1BH在VW培养基中可使植株生长到最大高度(62.1 mm)和干重(15.5 g)。在温室条件下，通过种子非共生萌发过程再生的植株成功驯化，成活率大于85%。 [50.]
连续波:150毫升·L-1 + BH 5 克·升-1
连续波:150毫升·L-1 + BH 10 g·L-1
连续波:150毫升·L-1+ BH 15 g·L-1
vw. 石斛兰bigibbum和石斛兰formosum 十、聚合物:P70P80P90.五种浓度：0,10,20,40,80 mg·l-1 用CHT型o获得最高种子萌发率（91.2％）80在10 mg·L-1使用石斛兰formosum。 [51.]
十、寡聚物:阿70阿,80阿,90.五种浓度：0,10,20,40,80 mg·l-1
vw. 石斛属sp。 CHT: 0,5、10、15、20、25 mg·L-1 在添加15 mg·L的VW培养基中，鲜重最高(0.83 g)，苗数最高(12.33)，苗数最高(6.66)-1本契约。 [52.]
vw. 蝴蝶兰石斛 虾红:0,5、10、15、20、25 mg·L-1 Cht浓度为15 mg·l-1，观察到来自共源芽的最高PLB生长，重量为0.15克。 [53.]
½女士 Grammatophyllum speciosum CHT：0,5,10,15,20,25,50 100 mg·l-1 CHT的用量为15 mg·L-1与对照（54mm）相比，增加PLB直径（69毫米）。类似地，这种治疗产生了最多的新PLBS /剥夺蛋白（11.2），芽/外植体（3.1），以及叶/外植体（1.8）。 [54.]
vw. 蝴蝶氏植物植物学 CHT: 0,5、10、15、20、25 mg·L-1 培养20周后，10毫克·升-1与对照(1.5 g)、5 mg·L处理(5 mg·L)相比，CHT处理的PLB鲜重增加最多(3.4 g)-1（1.2克），15毫克·L.-1（0.8克），20毫克·L.-1(1.3 g)， 25 mg·L-1分别为(1.2 g)。 [55.]
绿房子 Grammatophyllum scriptum CHT: 0、0.5、0.75、1 g·L-1 CHT的有效添加量为0.5 ~ 0.75 g·L-1株高0.8 cm，叶长0.5 cm。 [56.]
绿房子 石斛属简历。索尼娅17. CHT: 2.5、5、7.5、10 mg·L-1 增加7.5 毫克升-1单株穗数(9.93)、小花数(8.45)、穗长(32.87 cm)、花径(7.92 cm)最高。 [57.]
绿房子 石斛属Suree桃子 cht：0,10,30,50,100 mg l-1 在温室移栽10周后，施用100 mg·L-1红隧，连同5 克·升-1莲藕，导致叶子数最多（8.5）。 [58.]
KC 万带兰helvola TJ：0,10,15,20,40％（v / v） 培养90天后，补充有15％TJ的KC培养基是最适合种子萌发，40％TJ支持最高根数和长度，以及最宽的叶片宽度。David等人。[59.]也报道了添加TJ的KC培养基促进种子快速萌发(23天)，而不添加TJ的对照(28天)则相反。再生植株通过在体外在温室条件下成功驯化了种子的萌发过程。 [59.]
CW：0,10,15,20％（v / v）
P: 0, 0.1, 0.2, 0.3% (w/v)
YE: 0, 0.1, 0.2, 0.3 (w/v)
½女士 赤花地霉 TJ: 5、10、15% (v/v) 补充有5％TJ的½MS培养基导致萌发率最高和质子染色。 [60.]
太太 CW: 5, 10, 15% (v/v)
KC PH: 5、10、15% (v/v)
vw. 万达Kasem的喜悦 PH: 0,5, 10, 20, 30% (w/v) 大众传媒辅以20%和30%的TJ推动了PLB的快速发展。 [61.]
PE：0,5,10,20,30％（w / v）
TJ：0,5,10,20,30％（v / v）
太太 Dimorphorchis Rossii. YE: 0, 0.1, 0.2, 0.3 (w/v) 培养130 d后，原球茎增殖以0.2% YE(41.67%)最高，其次为对照(33.33%)、0.3% YE(31.25%)和0.1% YE(12.50%)。 [62.]
KC 万达迪雷 YE: 0,0.15, 0.2, 0.25, 0.5% (w/v) 添加0.5％ye，显着增强种子萌发（85.9％），缩短发芽时间为23天。幼苗，高度为6.5厘米，适应温室环境，并继续发展成健康的植物。 [63.]
P: 0, 0.15, 0.2, 0.25, 0.5% (w/v)
伯克希尔哈撒韦：0,2.5,7.5,12.5%（w/v）
CW：0,10,15,20％（v / v）
TJ：0,10,15,20％（v / v）
表1
有机补充剂对兰花种子萌发和质子萌发的影响。

图1
综述了几种有机补充剂在兰科植物种子萌发和原球茎进一步发育中的内容和作用。

4.椰子水

CW是一种无色的液体胚乳Cocos Nucifera．通常添加到含有植物蛋白的培养基中，用于快速诱导繁殖和细胞生长。Van Overbeek等人首次尝试使用CW在组织培养中。[64.那65.他报告说，把它添加到培养基中对青少年的成长至关重要曼佗罗胚胎。

CW含有作为碳的天然来源的可溶性糖，以及氨基酸和维生素，如硫胺素、吡哆醇、抗坏血酸和矿物质[66.那67.］.它还由各种有机离子组成，例如磷，镁，钾，钙，铁和锰[68.那69.，所有这些都有助发芽[70］.此外，CW还含有吲哚乙酸(IAA)、脱落酸(ABA)、赤霉素(GA)和玉米素[71.，一般用作植物组织培养中的生长补剂。

兰花种子的萌发通常可以通过在培养基中添加CW来提高(见表)1）.例如，托马斯和迈克尔[23.报告称93％的萌芽Rhynchostylis婆罗加150 mL·L-1CW到半力量的Murashige和Skoog培养基（½ms; Murashige和Skoog [72.]). Piri等人也得出了类似的结论[24.]，谁表示加入CW 150ml·L-1到Mitra培养基（M; Mitra等[73.]）最适合种子萌发Acampe papillosa．

根据Huh等人。[25.]，补充有CW的MS培养基增强了种子萌发和前置形成凤仙花macranthos．在对不同有机补充剂的研究中，包括CW，桦树液（BS），枫树SAP（MPS），BH和P，在各种浓度下，使用100毫升-1CW的发芽率（70.8%）和原球茎形成率（74.2%）最高[26.]还确定½MS培养基含有0.5 mg·L-1α-萘乙酸(NAA)和1.0 g·L-1活性炭（AC）补充CW，促进种子萌发和幼苗形成Paphiopedilum wardii．在不同的有机补充剂中，包括CW，pH，BH，胰蛋白胨（T）和P，具有各种浓度，100毫升-1与其他处理相比，CW提高了种子发芽率（65.33%），并具有最高的成苗率（35.67%），而Wu等人[27.结果表明:¼MS培养基含0.5 mg·L-1naa和1 g·l-1AC，补充有200毫克-1CW和1 G·L.-1在培养75天后，适用于种子萌发和前置发育renanthera imschootiana．

CW不仅影响萌发和质子染色的发展，而且还在形成蛋白质形状（PLBS），植物生长和多次芽诱导中起着重要作用。根据Baque等人。[28.]，摇晃媒介，卡诺[74.]，补充CW能有效促进观赏兰植株的生长花花杂交种。测试的各种CW浓度（0,10,30,50和100毫克）-1），浓度为50毫克-1显著增加植株干重。Maharjan等[29.]测定不同浓度CW(0、50、100 mL·L)的影响-1)对药兰茎部形成的影响万带兰pumila结果表明，在含CW的½MS培养基上，原球茎的数量和长度均有所增加。Punjansing等人也得出了类似的结论[30.谁确定了加入CW（50毫米）-1)至含50 g·L的½MS培养基-1PH对促进苗的增殖效果最好Phaius Tankervilleae.var.阿尔巴。这个结果早些时候得到了Jainol和Jualang的支持[31.]谁观察到不同有机补充剂（CW，TJ，BH，P，P和YE）在多种芽形成上的各种浓度的影响Dimorphorchis LowIi.发现CW在150毫米-1结果产生了最高的芽数。考尔等人[32.[在各种浓度上调查添加各种有机补充剂（BH，CW和对照）的各种有机补充剂（BH，CW和对照）的影响在体外质子素在药兰花中的倍增（石斛兰鸟羽）.在他们的研究中，M培养基添加200 mL·L-1CW最适合增强质子染色倍增。

5.蛋白胨

P偶尔用作兰花种植中的培养基，促进外植体的生长和发展。许多研究表明，P补充剂增强了发芽（表1）.例如，Utami等人。[33.]评估不同P浓度的效果（0,1,2和3 g·l-1)对种子萌发和芽形成的影响大花石斛，在培养后的4,8和12周观察到。在所有治疗中孵育12周后获得种子萌发率（100％）在不同浓度的P中。然而，他们还报告说，拍摄形成是岩浆中的最高（84.0％），并进入媒介（VW; vacin并走[75.])补充2 克·升-1种子萌发率Epidendrum ibaguense昆斯和观赏兰花spathoglottis plicata.植物或植物培养基（PM; PHYTAMAX™，Sigma Chemical Co.，USA）较高，补充有2 G·L.-1p比没有包含p的治疗方法[34.那35.］.类似地，Buyun等人[36.的种子发芽率为100%石斛兰parishii用Knudson介质(KC;努森(13.])补充2 克·升-1P.根据Srivastava等人。[37.]，种子萌发率航空公司Ringens.在含8.9的KC培养基上培养时，显著增加μ不同浓度的P(0.25、0.5、0.75 g·L .-1），在0.5g·l中获得最高萌发率（89.28％）-1p作为孵育30天后的添加剂。

P也能刺激多芽和原球茎的形成。Devi等人[38.报道了p改善了在体外药用果实异常兰花的倍增Taprobanea spathulata．在测试的不同浓度，5 g·l-1P是诱导多种质子膜的合适浓度。kaur和bhutani [39.]评估不同浓度的不同有机添加剂（BH和P）对试验结果的影响在体外射击乘法Paphiopedilum venustum发现改良的陆生兰花培养基(BM-1;Waes和Debergh [76.]）补充p（1 g·l-1）是刺激多个芽最有效的，每次外植体有三次芽。除了促进多次芽和质子形成的形成外，蛋白胨促进幼苗生长[77.]因为它含有高水平的氨基酸[78.]和维生素，包括硫胺素，生物素，吡哆醇和氮气[79.］.

6.土豆匀浆

培养基PH对兰花种子萌发有显著影响1）.Islam等人[40]评估pH的影响在体外发芽的万达罗克斯堡结果表明，添加PH的Hyponex培养基提高了种子发芽率，促进了幼苗发育[41.]评估了不同浓度的有机补充剂（PH、CW和TJ）对小麦种子萌发的影响Dimorphorchis LowIi.结果表明，10% (w/v) PH值下种子萌发率最高。此外，PH也能促进幼苗生长石斛兰tosaense[42.并刺激了。的增殖和成长石斛兰officinale芽(43.］.此外，75 G·L.-1PH在VW培养基中，含100 mL·L-1CW最适合在体外在扩散Bulbophyllum nipondhii假鳞茎(44.］.

pH含有重要的维生素，如C，B1和B6，以及矿物元素，例如钾，铁和镁，以及促进种子萌发的碳水化合物和氨基酸[80那81.］.Miransari和Smith [82.[报道，种子在萌发过程中消耗大量的氮，因此培养基中的pH可以影响萌发速率。

7.香蕉匀浆

培养基中的BH影响种子萌发和原球茎发育（表1）1）.Pereira等[45.]评价不同有机添加剂（BH和TJ）对萌发的影响Chloraea Gavilu.结果表明，Malmgren改良地兰培养基(MM;Malmgren [83.])添加BH成功地提高了种子发芽率。

Islam等人[46.]研究了不同BH浓度（0,2.5,5,10和20％; w / v）对PLBS的生长和开发的影响石斛属sp。并且表明，补充有10％BH的½ms培养基最适合PLBS再生。据曾等人说。[47.]，植物形成观赏鳞状兰花Paphiopedilum hangianum.当PLBS在HO培养时显着增加26.媒体（Zeng等人[84.]）含有1 G·L.-1P和1 mg·L-1naa并补充了bh。同样的研究结论，Harvais媒体（Harvais [85.]）各种有机补充剂有效地诱导幼苗生长凤仙花macranthos．在研究的各种有机补充剂(CW, PH, BH)中，BH的浓度为25或50 g·L-1改善射击和根号和射击和根长[48.］.gonçalves等。[49.发现……的数量Hadrolaelia purpurata.产生的幼苗是含有90g·l的KC培养基上最高-1黑洞。此外，Utami和Hariyanto [50.]观察补充150%葡萄糖的效果 毫升·升-1不同BH浓度(0、5、10、15 g·L-1)对植株发育的影响蝴蝶兰属amboinensis发现CW与BH一起的有机补充显着增加了植物的生长。香蕉经常被用作有机添加剂在体外培养物由于其高水平的钾，锰，钙，钠，铁，锌，硫胺，核黄素，烟酸，吡哆醇，泛酸，抗坏血酸，叶酸[86.]和自然生长调节剂，如扎丁，赤霉素和IAA [87.那88.］.它也富含碳水化合物，在异养植物的早期阶段提供能量在体外培养(89.］.

8.壳聚糖

CHT是甲壳素的生物聚合物衍生物，主要存在于节肢动物和甲壳动物的外骨骼中[90.]，并已应用于各个领域，包括农业[91.］.

许多研究表明，兰花种子萌发受到媒体的加入CHT的影响（表1）.Kananont等人[51.]研究了不同浓度的不同类型CHT对不同兰花种子萌发的影响，发现6种类型的CHT均未检测(CHT聚合物:P70P80P90.；CHT低聚物：O70阿,80阿,90.）在五个浓度（0,10,20,40和80 mg·L.-1）对种子萌发有显着影响石斛兰bigibbumvar.紧统;然而，添加显著促进了种子的萌发石斛兰formosum．结果表明，O型CHT的发芽率最高，为91.2%80在10 mg·L-1．Restanto等人[52.[评价CHT对Zygotic Embryo发育的影响石斛属sp。在体外并观察到CHT显著影响合子胚的生长和分化。对不同浓度(0、5、10、15、20、25 mg·L)的CHT进行了测定-1），PLB编号，PLB鲜重量和植物数量最高，使用15 mg·l-1红隧公司。Nge等人[53.]还研究了虾CHT在不同浓度（0,5,10,15,20和25mg·L的影响-1）关于芽的共生生长蝴蝶兰石斛并显示VW培养基补充有15毫克·L.-1结果表明，红藻毒素的鲜重最高。此外，同一研究得出结论，½MS液体培养基中添加CHT有效地诱导了PLB的发展Grammatophyllum speciosum．不同浓度的CHT测试（0,5,10,15,20,25,50和100mg·L.-1)，浓度为15 mg·L-1导致最高的增长率(4倍增长)[54.］.撒马福及卡迪尔[55.]研究CHT对PLB增殖的影响蝴蝶氏植物植物学， 6种浓度(0、5、10、15、20、25 mg·L .-1)测试，10 mg·L-1培养后20周后，VW培养基中的CHT导致最高的鲜浓度。

含壳多糖亦已知在温室条件下刺激小植物生长和发展。Pitoyo等人。[56.]研究了CHT对生长的影响Grammatophyllum scriptum结果表明，CHT对植株高度、叶长等参数均有显著影响。Kumari等人[57.]研究了不同CHT浓度的影响（2.5,5,7.5和10 mg·l-1的成长和发展石斛属简历。Sonia 17.在测试的四种浓度中，7.5毫克·L.-1导致每株植物数量最高，花直径增加，增强的尖峰长度，每穗数量较多的小花。同样，Charoenwattana [58.]研究CHT对植物植物生长的影响石斛属兰花并报告说，最佳叶片数量以100mg·l的浓度达到-1移植后10周内。植株生长的增加据称是受光合作用的影响。根据Barka等人[92.]，加入CHT衍生物，即Chitogel，改善了CO21.5倍和O形固定2产生2倍，表明CHT衍生物具有增加光合作用的可能性，从而增加了植物生长。根据Uthairatanakij等。[93.]，其有利作用可能是诱导信号合成植物激素、生长素和赤霉素。

9.番茄汁

TJ显著影响兰花种子的萌发和随后的原球茎发育1）.David等人。[59.]研究不同复合添加剂（TJ，CW，P和YE）在各种浓度的种子萌发中的作用万达helvola试管．在他们的研究中，KC培养基中添加15% (v/v) TJ最适合促进萌发。Muthukrishnan等人[60.还检查了各种有机补充剂（TJ，CW和pH）对不同浓度的种子萌发的影响赤花地霉并且表明，补充有5％（v / v）Tj的½ms培养基导致种子萌发率最高和质子凋亡。同样地，GNASEKARAN等人。[61.[报道，20和30％（v / v）tj改善了PLB增殖万达Kasem 's Delight不仅仅是添加了木瓜提取物(PE)或PH。

番茄汁含有碳水化合物，维生素和矿物质[94.]，葡萄糖和果糖[95.]，益处细胞分裂和支持系统。西红柿还含有番茄红素，一种剧烈的抗氧化剂，具有消除自由基的形成，修复受伤细胞的能力，抑制DNA氧化[96.］.西红柿还含有其他抗氧化剂，如α-胡萝卜素，β-胡萝卜素和抗坏血酸[97.-100.］.根据Gnasekaran等。[61.]，糖和抗氧化剂在细胞增殖和健康血小板的产生中起着重要作用。

10.酵母提取物

YE也是氨基酸和维生素，特别是肌醇和硫胺素的重要来源，并有效地用于增加许多兰花种类的种子萌发和再生[101.］.大量研究表明，在培养培养基中，叶影响兰花种子萌发和原球茎再生(表)1）.Gansau等。[62.]研究了不同YE浓度(0、0.1、0.2和0.3%;W /v)对原球茎增殖和生长的影响Dimorphorchis Rossii.．在他们的研究中，MS培养基中添加0.2%的YE可以提高原球茎的再生。早些时候，Jualang等人[63.研究了不同浓度的有机补充剂(YE、P、BH、CW和TJ)对种子萌发的影响万达迪雷发现0.5％（w / v）叶增强种子萌发。

11.结论

通过文献调查，我们得出结论:在兰花种子萌发培养基中添加CW、P、BH、PH、CHT、TJ、YE等有机添加剂，有利于兰花种子萌发、沉淀成苗、生长旺盛。在温室条件下，它们还能有效增加PLBs的数量，诱导多芽形成，促进植株的生长发育。这些有机补充剂代表了氨基酸、维生素、矿物质、有机酸、糖、蛋白质和天然生长调节剂的天然来源，通过刺激兰花在非共生种子培养中的发育和形态发生来帮助兰花繁殖。许多兰花品种受到土地转换和栖息地管理不善的威胁。摘要在兰科植物种子萌发过程中添加有机添加剂是一种有效的人工繁殖和驯化技术，可促进濒危兰科植物的保护。

数据可用性

用于支持本研究结果的数据包括在文章中。

利益冲突

作者宣称没有利益冲突。

作者的贡献

两位作者都参与了文献检索，参与了手稿的撰写，并阅读并批准了最终的手稿。

致谢

作者感谢Universitas Airlangga的文章审查项目提供的财政支持，no。955 / UN3.14 / LT / 2019。

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