文摘
化学成分、抗氧化和抗菌活动和防腐剂的效果胸腺性精油对单核细胞增多性李斯特氏菌接种在牛肉肉末。提取的精油是由气相色谱-光谱化学分析。19组件被确定,其中香荆芥酚(88.89%)为代表的石油。抗氧化活性的评估在体外通过DPPH和abt化验。研究结果表明,精油表现出较高的抗氧化活性,这是与参考标准与IC(二叔丁基对甲酚和抗坏血酸)5044.16和0.463的值μg / mL由自由基清除DPPH abt化验,分别。此外,精油是评估其抗菌活性使用光盘琼脂扩散和采用的方法。结果表明,抑制区不同从温和到强(15 - 80毫米)和最低抑制浓度值范围从0.32到20毫克/毫升。此外,精油评估在活的有机体内对单核细胞增多性李斯特氏菌显示清晰而强烈的抑制作用。的应用0.25或1% (v / w)精油t .性免治牛肉明显减少了l . monocytogenes相比人口的控制样品(价值 )。
1。介绍
腐败和食物中毒的问题,主要是由微生物氧化过程或活动,在生产和存储仍担忧食品工业和消费者,尽管合成化学添加剂的使用和各种保存方法1- - - - - -3]。然而,副作用的合成抗氧化剂应用于食品加工,如丁羟甲苯(二叔丁基对甲酚)和叔丁基羟基茴香醚(BHA),已经被记录。他们表现出致癌效应在生物4,5]。因此,越来越浓的兴趣开发新类型的有效的和无毒的天然抗氧化剂,抗菌化合物,防止食物——承担和破坏微生物的生长,延长食物的保质期6,7]。在这种背景下,药用和芳香植物已成为另一种合成产品,不仅在传统医学,也用于食品和医药产品,由于其高含量的酚类化合物,他们的营养特性,生物活性(8]。
胸腺性是一种唇形科家族的地中海草本植物,主要生长在突尼斯北部[9]。这个物种是一种芳香植物,主要用于(新鲜或干)作为香料,一些突尼斯传统的肉菜,防腐剂的品质和味道鲜美。在突尼斯民间医药,胸腺物种是众所周知的药用植物,因为它们的生物和药理特性,包括平喘药、杀菌、抗霉菌的,解痉药,抗炎,抗菌,抗氧化活动9- - - - - -12]。最近,胸腺种精油(EOs)及其组件得到了越来越多的重要性,因为它们被消费者广泛接受和其他功能开发和潜在的多用途使用(9]。
一般来说,芳香精油(EOs),从植物中提取的挥发性液体材料,如鲜花、根、树皮、叶、种子、皮、水果,木材,和整个工厂。他们被认为是植物次生代谢产物,在植物防御中发挥重要作用,他们往往具有抗菌和抗氧化性能13- - - - - -15]。由于这些原因,EOs主要使用,在食品工业中,在食品调味剂系统,可以作为天然抗菌剂在食品保存(延长保质期)15,16对范围广泛的食品变质的微生物。
以前属的植物化学的研究胸腺EOs报道存在许多具有生物活性的化合物,包括香荆芥酚、麝香草酚,p -甲基异丙基苯,γ萜品烯,据报道,许多生物活性(3,9,11]。Figueiredo等人(2008年11]证明了EOs的葡萄牙语t .性提出了巨大的化学均匀性相对较高的香芹酚的特征。
此外,据我们所知,没有发表的研究评估的防腐效果t .性光电对抗l . monocytogenes在肉末,李氏杆菌病的病原体,其中最致命的食源性疾病。人类感染主要发生由于偶尔即食和原始污染食品,尤其是肉类产品(17,18]。李氏杆菌病与死亡率有关高达30 - 40% (19]。无处不在的流行的病原体,其增殖能力在0°C附近的温度,和它的抵抗某些防腐剂导致了一个广泛的努力开发流程来控制其增长的食物(20.]。
今天,应用不同的策略来控制病原体的肉,和兴趣都集中在EOs的应用作为一个安全有效的替代化学防腐剂。他们的应用程序在控制病原体可能会减少食源性疾病暴发的风险,保证消费者安全的肉类产品。EOs的化学成分和抗菌特性从不同植物中提取已经演示了使用各种实验方法(21,22]。
当前工作的目的是(我)评估突尼斯的化学成分t .性用气相色谱-质谱和EOs相比以前发表的作品,(ii)确认在体外EO的抗氧化活性,(iii)来评估在体外其抗菌活动选择组的细菌菌株。除此之外,本研究也设计确定的功效t .性EO的抑制l . monocytogenes增长模型在冷藏牛肉肉末。
2。材料和方法
2.1。材料和化学物质
化学品:2,2-diphenyl-2-picrylhydrazyl水合物(DPPH), 2, 6-di-tert-butyl-4-methylphenol(二叔丁基对甲酚),2,2′-azinobis (3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic酸)(abt)、抗坏血酸,二甲亚砜(DMSO),过硫酸钾,和所有试剂购自σ(圣路易斯,密苏里州,美国),丙烯酰胺化学(书、瑞士),和默克(英国诺丁汉)。
2.2。植物材料
天线的部分t .性收集从Zaghouan地区(北突尼斯)2010年6月。样品的物种被植物学专家识别和确认。刚剪的植物被解决在环境温度和干在树荫下了两个星期。干停飞成粉末样品,用纸袋包装,并存储在黑暗中在一个干燥的地方。
2.3。精油的制备
植物的干粉末天线部分提交给hydrodistillation进程clevenger-type器3小时根据推荐的方法在当前的2008年欧洲药典6.0 (23]。收集到的EO当时干过无水硫酸钠(Na2所以4)、过滤和储存在4°C在黑暗中进一步使用。
2.4。精油的化学成分
2.4.1。装置
进行了GC - MS分析精油与惠普7890 A GC配备5975质量选择检测器和一个女士HP-5毛细管柱(30米×0.25毫米id、膜厚度0.25μ米),GC / MS检测离子源是设置为230°C的电子电离能70 eV。扫描范围是不同的相对原子质量从40到550 (12)。氦是作为载气的流量0.8 mL / min。一个μL在己烷稀释油(1/100,v / v)在离注入手动模式。烤箱温度程序编程从60°C到250°C和4°C /分钟的速度为5分钟,然后保持不变。
2.4.2。EO的定性和定量分析
EO的化学化合物的识别是基于质谱库(威利275。L,第8版)和/或可用的标准和确认的比较他们的GC保留指数与真实的标准在相同的色谱条件下注射或文献中公布的数据,所述亚当斯于2007年(24]。
2.5。总抗氧化活性的量化
文学概述了不同方法测定的植物提取物的抗氧化活动。因此,通常不同的方法论的方法导致分散的结果,几乎没有可比性,有时相互矛盾的(25,26]。出于这个原因,我们两个互补的技术相结合,基于DPPH和abt免费自由基清除活性。
2.5.1。DPPH自由基清除实验
自由基清除活性(RSA)用分光光度法测定植物提取物对DPPH稳定。EOs提取物不同浓度(0.1;0.25;0.5;1;5;10;50;100;200年μg / mL)涨跌互现同样体积的0.2毫米methanolic DPPH的解决方案。样品被蒙在鼓里30分钟在室温下,absorption-decrease测量。吸收负控制包含相同数量的甲醇和DPPH溶液制备和测量在同一时间。实验进行了一式三份。RSA的提取测定Brand-Williams等人在1995年描述的方法(27),但稍微修改如下所示: 在哪里是空白样品的吸收最小值和测试样品吸收在哪里分钟。
抗氧化活性也表示为IC50,它被定义为有效浓度(在示例μg / mL) 50%的DPPH自由基是回收。二叔丁基对甲酚和抗坏血酸作为积极的控制。每个实验重复3次。平均和标准偏差报告结果。
2.5.2。abt活动
abt自由基清除活性的EOs决心根据再保险等人(1999年28]。abt的解决方案与甲醇稀释,吸光度0.7在734海里。之后的950年μ50 L稀释abt的解决方案μL植物EOs混合是在37°C的环境中10分钟,然后吸光度测量在734海里。测试进行了一式三份。丁羟甲苯(二叔丁基对甲酚)和抗坏血酸()被用作积极控制。
abt的自由基清除活性的样本计算由以下方程: Abs控制是abt激进+甲醇和Abs的吸光度样品的吸光度abt激进+示例(EO /标准)。
样品提供50%抑制浓度(IC50)获得了策划对样品浓度抑制百分比。
2.6。抗菌药物筛选
2.6.1。微生物生长条件
光电测试对一家大型面板的微生物。细菌获得来自国际文化集合写明ATCC和当地文化的集合巴斯德研究所的突尼斯。其中包括8革兰氏阳性细菌和革兰氏阴性细菌(表161)。菌株培养在Luria Bertani介质(磅)(Oxoid有限公司、英国)37°C除外芽孢杆菌物种,孵化30°C。工作文化是由细菌接种铂环量的每个测试在5毫升Luria Bertani介质(磅)(英国Oxoid有限公司)和孵化在37°C 18个小时。
2.6.2。纸片扩散法
摘要纸片扩散法测定EO抗菌活性的29日]。短暂,悬挂在微生物检测(0.1磅10毫升7-10年8细胞每毫升)是固体磅媒体传播盘子。论文光盘(直径9毫米)单独浸满12μL的石油,然后放置在接种盘子。我们没有使用DMSO在LB-Agar促进EO的溶解。然而,为了加速扩散的精油,盘子被放置在4°C 2小时在37°C,然后被孵化24小时。抑制区域的直径以毫米。所有测试都是在重复,重复三次。链霉素B (15μg / mL)和氯霉素(30μg / mL)被用作积极控制。
2.6.3。确定的最低抑制浓度
EO的最小抑制浓度(麦克风)对微生物测试是由汤采用方法(30.]。所有的测试被执行在磅,补充了DMSO(最终浓度最高的0.1%)。一夜之间,微生物菌株被培养在37°C和悬浮在LB培养基给最后一个密度5×105CFU /毫升,这证实了可行的计算。几何稀释从0.039毫克/毫升到20毫克/毫升的EOs是准备在96年以及微量滴定板(磐品牌、朝日电子玻璃、日本),包括一个增长控制(磅+ DMSO),和一个不育控制(磅+ DMSO +测试油)。盘子随后在正常大气条件下孵化24小时37°C和剧烈搅动。井被检查为增长的证据表明存在白色的“球”在底部。麦克风值测定的EO最低浓度抑制可见测试微生物的增长。负控制设置在DMSO溶液数量对应的最高数量的测试解决方案(0.1%)。的测试进行了三次。
2.7。EO的抑制作用对李斯特菌接种在牛肉肉末
的原位EO的疗效评价l . monocytogenes在牛肉肉末模型根据Careaga等人所描述的过程在2003年(31日但是只要稍微修改。
2.7.1。准备的肉牛肉
新鲜postrigor瘦牛肉肌肉从屠宰场获得在突尼斯,突尼斯。每一块在沸水中浸泡5分钟,为了减少微生物附着在牛肉肌肉表面。肌肉的煮面与无菌刀在无菌条件下消除。
2.7.2。治疗绞碎的牛肉
免治牛肉之前污染单核细胞增多性李斯特氏菌和EO,牛肉的肌肉也检查任何(有氧psychrotrophic植物)和受细菌污染检测病原体(结果未显示)。为了评估的抗菌活性t .性EO在肉牛肉样本,上面有碎的肉准备无菌磨床,和部分g是高密度聚乙烯袋。肉样本接种l . monocytogenes浓度105CFU / g的肉和在室温下混合均匀3分钟,以确保适当的病原体的分布。均质化后,t .性EO溶解在10% DMSO,随后添加不同浓度(0.02;0.06;0.1;1;1.5;2和3% (v / w))接种样本。获得均匀分布的添加成分,治疗肉样本均质通过三角胸衣400西沃德(英国伦敦)以正常的速度用于5分钟。包包含这些样本的肉都是储存在7°C和检查(0)3、6、9、12、15天的存储l . monocytogenes枚举。未经处理的样品(控制)被添加到无菌水(而不是EO),接种测试细菌,并存储在相同的条件下测试样品。三个复制的每个实验在所有情况下进行。
2.7.3。细菌枚举
肉的微生物分析,目的是评估定量和定性背景微生物区系。l . monocytogenes数是250毫升Muller-Hinton肉汤添加到聚乙烯袋25克。样本均质一分钟和孵化为6小时37°C。从这个预富集,l . monocytogenes是由平板菌落计数技术。与生理盐水溶液,连续10倍稀释后100年μL每个样本的扩散到表面的穆勒-辛顿琼脂培养基在37°C其次是孵化24小时。无菌生理盐水水被添加到未经处理的控制,接种测试细菌代替t .性EO存储在相同条件下的其他样本。
2.8。统计分析
50%抑制浓度(IC50值)为抗氧化活动是由非线性回归分析计算使用Graphpad Prism 5.0版。获得的剂量反应曲线绘制抑制与浓度的百分比。抑制活性和EO浓度之间的相关性进行评估使用枪兵的相关测试(32]。统计学意义的治疗和控制样本均值之间的差异被韦尔奇2-sample评估以及。重复方差分析测试(33)是用来检查总体差异活动趋势和EO浓度效应。一个价值被认为是暗示意义;然而,在必要时为多个测试进行了修正。所有计算都使用R软件2.11版本(执行http://www.r-project.org/)。
3所示。结果与讨论
3.1。提取的精油的化学成分
表2显示了化学成分,它们的相对比例的总色谱面积和Kovats指数t .性EO。
EO的挥发性成分允许的gc - ms分析鉴定19个化合物占总额的98.97%的石油。香芹酚主要有88.98%。确定的其他组件是次要的。这些结果与报道的那不勒斯et al。34]。EO的化学成分表明,富含氧气含有单萜(94.98%)。单萜烃或两倍半萜烯和氧气含倍半萜烯的代表在2%左右。这些财富的含氧单萜(OM),尤其是香荆芥酚,可以增强这个EO的值作为一个活跃的自然产物。主要产品香荆芥酚被形容为一个强大的抗菌分子(9,11),现在考虑的产品挑出他们的药理作用。这些结果符合先前的研究[35,36),这表明,香芹酚的主要化合物t .性油为75%和65.8%,分别。
另一方面,有许多其他油的化学成分报告孤立于植物的属胸腺。塔美诺等人(2005年37)报道,百里香的主要成分EO香芹酚,麝香草酚,p -甲基异丙基苯,他们可以达到以下的百分比:48.9%,45.3%,和26.19%,分别,而Jaafari等人(2007年38)发现这些相同成分的主要组件是百里香EO从摩洛哥和可以达到以下比例:85%,42%,和23%,分别。这些变化在EO的构成可能是由于年龄因素,如工厂,工厂部分,发展阶段、地理定位、收获时期,温度,和环境因素主要在地中海地区和主要由chemotype因为他们影响植物的生物合成途径,因此,主要特征化合物的相对比例(39]。
3.2。抗氧化活性
两个互补的比色方法,即DPPH和abt化验对比参考标准丁基羟基甲苯(二叔丁基对甲酚)和抗坏血酸(AA)和结果呈现在图1。abt和DPPH自由基是两个最广泛使用的和稳定的发色体化合物的抗氧化活性生物材料(40]。此外,模型的DPPH自由基清除和abt激进的阳离子脱色试验可用于评价抗氧化活动在一个相对短的时间与其他方法相比(41,42]。在目前的研究中,EO来清除DPPH自由基的能力•和abt+•和他们的还原能力测定的基础上,提供50%抑制浓度(IC50)和较低的集成电路50值反映了高自由基清除活性(43]。
(一)
(b)
3.2.1之上。免费DPPH自由基清除活性
抗氧化的效果对DPPH自由基清除构思hydrogen-donating能力(44]。DPPH是一个稳定的自由基,接受电子或氢自由基成为一个稳定的抗磁性分子(43]。
从图的分析1(一),我们可以得出结论,EO的自由基清除活性和积极控制浓度(斯皮尔曼相关系数的增加而增加与值)。此外,这一研究获得的结果表明,t .性EO表现出较高的DPPH自由基清除活性和抑制百分比达到了% 200的浓度μ克/毫升。图(图1(一))表明,自由基清除活性t .性EO是μg / mL,出现低于合成抗氧化剂二叔丁基对甲酚和抗坏血酸,的值μ克/毫升,μ分别g / mL。
3.2.2。abt免费自由基清除活性
类似于DPPH,脱色的abt激进的物种反映了一种抗氧化剂的能力捐赠电子或氢原子灭活这个激进的阳离子(45]。abt的结果是在良好的协议与清除DPPH方法EO的活动是随着浓度增加(斯皮尔曼相关系数与值)。从图的分析1 (b),我们可以得出这样的结论t .性EO表现出更高的abt自由基清除活动(%),与二叔丁基对甲酚(%)和抗坏血酸(200年%)的浓度μ克/毫升。这些研究结果证实了计算IC50的值t .性EO (μg / mL),明显被发现比二叔丁基对甲酚(μg / mL)和抗坏血酸(μg / mL)。这些结果与之前的研究协议(46,47),这表明更大的抗氧化潜力的几个胸腺物种EOs可能与酚类化合物的性质及其氢能力。此外,这可以归因于含氧类化合物,如香芹酚和百里香酚(26,48]。此外,EOs的活动胸腺物种依赖几个分子的结构特点和主要归因于高反应活性的羟基取代基(49]。
清除的abt激进t .性EO被发现比这高得多的DPPH自由基。这些差异可以解释的机制参与反应。abt激进反应涉及电子转移和以更快的速度发生DPPH自由基(相比50]。此外,各种因素,例如立体选择性的激进分子或溶解度不同的测试系统和测试样品的官能团在生物活性化合物已报告影响样本的容量和淬火不同的自由基反应(51]。王等人(1998年52)表明,一些有abt的化合物+清除活动可能不会显示DPPH清除活动。
3.3。抗菌活性
在目前的研究中,在体外抗菌素的活动t .性EO对研究微生物是定性和定量评估存在与否的抑制区和麦克风值,分别为(表3)。从阀瓣-扩散法获得的结果表明,EO施加强大的抗菌活性菌株对所有测试。结果可比性的抗生素(氯霉素、链霉素),作为积极的控制。的抑菌圈的大小t .性EO不同从15到80毫米,而抑制区氯霉素、链霉素范围从18-27毫米毫米至12日至22日,分别。
指的是大抑制disk-diffusion方法观察到的区域t .性EO,麦克风值测定采用微量肉汤试验(表3)。测试麦克风的结果值对革兰氏阳性和革兰氏阴性细菌变化从0.32到5毫克/毫升,从0.63到20毫克/毫升,分别。我们发现,EO取决于其浓度的抗菌活性和细菌菌株进行了测试。有趣的是,我们发现金黄色葡萄球菌写明ATCC 6538是最敏感的微生物测试,最低的MIC值(0.32毫克/毫升),紧随其后蜡样芽胞杆菌写明ATCC 11768。这种抗菌谱的EO获得t .性可比在大多数情况下是一个由Bounatirou等人(2007年9]。此外,霍乱弧菌(临床分离)是最敏感的革兰氏阴性菌MIC值最低的(0.63毫克/毫升)。我们的研究结果证实,革兰氏阳性细菌更容易比革兰氏阴性的EO的抗菌性能。这些差异可以部分归结于伟大的复杂性双membrane-containing细胞被膜相比,革兰氏阴性菌对单一膜结构的积极的53,54]。这些差异可能是由于还存在的革兰氏阴性细菌外膜的脂多糖,使他们天生抵抗外部代理,如亲水性染料、抗生素、洗涤剂、亲脂性的化合物(14,55]。然而,EOs的破坏细胞膜的渗透性屏障结构和化学渗透假说的控制的附带损失最可能的原因是其致命的行动56]。EOs可以凝结细胞质和损伤脂质和蛋白质(3]。他们的作用机制类似于其他酚醛塑料,也就是说,质子动力扰动的电子流,主动运输,细胞内容的凝固。相反,atp酶等酶已知位于细胞质膜和脂质分子[接壤3,13]。
一般来说,EOs的抗菌活动很难与一个特定的化合物由于其复杂性和可变性;然而,一些研究人员报道说,有一个关系的化学成分最丰富的组件在EO和抗菌活性(57,58]。在目前的研究中,香芹酚的主要成分t .性EO。据报道是杀生的,导致细菌膜扰动导致细胞内ATP和钾离子泄漏,最终细胞死亡(59,60]。先前的研究[61年)提到香荆芥酚浓度0.5%和1%的抗菌活性志贺氏杆菌sonnei和弗氏志贺菌。此外,据报道,香芹酚可能导致细菌膜扰动,从而可以在细胞内发挥抗菌活性也网站(60,62年]。这些结果按照早期的发现(12,54)表明,胸腺物种的精油富含香芹酚被证明是有效的抗菌素在体外。
然而,其他成分,如萜品烯和p -甲基异丙基苯已被证明显示相对较好的活动由于其潜在的协同或拮抗作用[10,63年]。
3.4。EOs的影响l . monocytogenes在牛肉肉末接种
在这一部分我们的工作,我们的研究在活的有机体内反李斯特菌不同浓度的活动t .性EO在牛肉肉末接种时,以及光电效应延长保质期和保存新鲜的肉类。众所周知,并不是所有的微生物学家证明去污的肉是必需的,甚至是可取的。它在1996年被杰认为[64年],高水平的本土不致病的微生物可能有保护作用在肉类及其制品,体型的病原体。尽管如此,我们的样品净化为了减少因素的数量等食品的微生物的生长模型,避免干扰镀琼脂的殖民地。相关的细菌计数,生存时间l . monocytogenes在我们的加工食品模型治疗各种浓度(0.01;0.05;0.25,1.25% (v / w))t .性EO,呈现在图2。结果表明,最初记录的人口单核细胞增多性李斯特氏菌在未经处理的样品(控制)大约从5增加日志CFU / 7.13 g日志CFU / g在15天的存储。然而,四种准备的数据显示细菌数的增加逐渐减少EO浓度。看起来,浓度高于申请使用在体外测试。这不能被误导,因为它是内在因素,如良好的成分(如蛋白质、脂肪)以及外在因素(温度、氧的限制)的食物影响细菌的行为生态系统和可能协同作用等防腐剂抗菌药物(32]。事实上,食品成分,如蛋白质和脂肪,已知和/或可溶性酚类化合物结合,减少他们对抗菌活性的可用性。此外,据报道,许多作者抗菌活性微生物的香料在食品系统是低于媒体(65年]。
事实上,减少4日志/ g的水平l . monocytogenes在3天的存储浓度为0.25或1.25% (v / w)t .性EO,而控制(没有)治疗,这些治疗浓度为0.01或0.05% (v / w)t .性EO。价值观的差异具有统计学意义(值)。因此,实验结束时(15天的存储),细菌数在绞碎的牛肉处理浓度为0.25和1.25% (v / w)t .性EO降低,达到1.45和1.13分别记录CFU / g。然而,我们没有注意到立即致命(杀菌)的影响l . monocytogenes当t .性EO应用所描述的其他研究[66年,67年),但我们观察到一个强大的抑制活性l . monocytogenes。这些差异我们的结果和其他人,发现完整的致命的影响可以用这一事实来解释活动取决于类型、EO的成分和浓度,压力,目标微生物接种剂量的肉。在这项研究中,我们使用高培养液(105CFU / g)之前把切碎的牛肉相比,低培养液(103CFU / g) Hsouna等人所使用的2011年(67年]。综上所述,这些研究结果表明,EOs来自t .性有巨大潜力的测试压力的活动l . monocytogenes。因此,剂量抑制活动建议使用本产品作为肉类防腐剂的可能性。同意我们的发现,Djenane等人(2011年14)显示高的细菌减少负载时绞碎的牛肉是处理黄连木乳香树和Satureja蒙大拿EOs反对单核细胞增多性李斯特氏菌935年摄影。
这些结果按照先前的研究陶醉,百里香EO显著减少可行的项单核细胞增多性李斯特氏菌在Russian-type沙拉一周存储10°C时结合Enterocin 48 (30 - 60μg / g) (68年),表现出减少约0.25%的初始种群l . monocytogenes免治猪肉的2和2.3日志CFU / g后8天的存储在4°C和8°C (69年]。事实上,有效的抗菌活动t .性EO在这项研究中观察到可以归因于高浓度的香芹酚的存在,有证据确凿的抗菌潜力(14]。
4所示。结论
总之,本研究关注的化学浓度之间的相关性和有效性t .性EO作为抗氧化和抗菌。结果表明,工作t .性EO可以表现出很强的抗氧化和抗菌活性,可能由于其特殊的化学成分,主要是大量的香芹酚。在第二部分,l . monocytogenes人口绞碎的牛肉用精油治疗明显低于控制样品在整个贮藏期。的应用0.25或1% EOs (v / w)t .性EO免治牛肉加上低温存储可以降低的潜力l . monocytogenes污染。所以,这EO可用于保存肉类l . monocytogenes和增加他们的保质期。所有结果均表明t .性EO展出bioprotector效应,因此可以使用它在许多生物技术领域作为天然食品防腐剂成分和/或制药行业。
缩写
| EOs: | 精油 |
| t .性: | 胸腺性 |
| 气相: | 气相色谱质谱仪。 |
利益冲突
作者宣称没有利益冲突有关的出版。
确认
这项工作是支持的资助Ministere de l 'Enseignement特级de la任职et de la Technologie(突尼斯)。作者非常感谢博士Ghrabi-Gammar Zeineb (INAT)标识在这项研究中使用的收获植物和博士Chokri Messaoud (INSAT)他的帮助在GC和GC - ms分析。作者同样感谢博士Nazek加拉(巴斯德研究所de突尼斯首都突尼斯市)为其提供细菌。