文摘gydF4y2Ba
的土传病原gydF4y2Ba疫霉capsicigydF4y2Ba造成严重的破坏gydF4y2Ba辣椒gydF4y2Ba耐。gydF4y2Ba辣椒gydF4y2Ba对gydF4y2Bap . capsicigydF4y2Ba涉及由无数小控制数量性状基因座(QTL)和一个一致的主要QTL在染色体5。分子标记在gydF4y2Ba辣椒gydF4y2Ba5号染色体已经开发识别主要遗传因素的阻力,但取得了小小的成功。在这项研究中,之前报道的分子标记被用来重新分析主要的5号染色体上的QTL区域(6.2 Mbp - 139.2 Mbp)。候选抗性基因类似物(rga)确定的扩展主要QTL区域包括14个核苷酸结合位点富亮氨酸重复3受体激酶,1受体蛋白质。序列比较的候选人rga两之间进行gydF4y2Ba辣椒gydF4y2Ba分别种质抗性和敏感gydF4y2Bap . capsici。gydF4y2Ba11小说RGA-based标记是通过高分辨率融化分析的主要QTL紧密相连gydF4y2Bap . capsicigydF4y2Ba阻力。在标记中,canb - 5480显示cosegregation率最高为86.9%,可应用于基因的种质并非由以前的标记。结合三种标记如canb - 5480、鲤鱼- 5130和canb - 5330型精度增加61gydF4y2Ba辣椒gydF4y2Ba登记入册。这些可能有助于促进高通量种质筛选,进一步描述抗性基因gydF4y2Bap . capsicigydF4y2Ba在胡椒。gydF4y2Ba
1。介绍gydF4y2Ba
辣椒(gydF4y2Ba辣椒gydF4y2Baspp)是属于经济重要的作物gydF4y2Ba茄科gydF4y2Ba家庭以及烟草、马铃薯和番茄。辣椒提供了许多基本的维生素,和辣椒素被用作主要的辛辣调味品在大多数全球美食(gydF4y2Ba1gydF4y2Ba]。2016年,主pepper-producing国家增长3800万吨3.7尼古拉斯(gydF4y2Ba2gydF4y2Ba]。辣椒的全球生产和贸易价值持续增长在过去的十年。gydF4y2Ba
致病真菌,卵菌,细菌和病毒引起的经济损失和作物的损失。胡椒生产的负面影响大约87种不同的病原体和疾病(gydF4y2Ba3gydF4y2Ba]。其中,gydF4y2Ba疫霉capsicigydF4y2Ba是一个具有高度破坏性,broad-host-range卵菌第一次描述了在1922年在新墨西哥胡椒(gydF4y2Ba4gydF4y2Ba]。的宿主范围gydF4y2Bap . capsicigydF4y2Ba包括茄科、葫芦科、青豆和其他植物。gydF4y2Bap . capsicigydF4y2Ba在北美、南美、亚洲、非洲和欧洲。gydF4y2Bap . capsicigydF4y2Ba导致严重疾病的症状,比如叶枯萎病,茎疫病,根、茎、果实,叶腐烂,对经济的影响gydF4y2Bap . capsicigydF4y2Ba对全球蔬菜生产价值超过每年十亿美元(gydF4y2Ba5gydF4y2Ba]。gydF4y2Ba
p . capsicigydF4y2Ba形成合子,长年在土壤和可以通过水和迁移期间风温暖(25 - 28°C)和湿条件如雨季(gydF4y2Ba6gydF4y2Ba]。后gydF4y2Bap . capsicigydF4y2Ba就建立在一个位置,它可以是非常难以控制。没有有效的化学和农业战略。抵抗gydF4y2Bap . capsicigydF4y2Ba据报道在种植辣椒包括品种“AC2258,”“PI201232,”“PI201234,”和“CM334”(gydF4y2Ba7gydF4y2Ba,gydF4y2Ba8gydF4y2Ba]。在抗性品种中,gydF4y2Ba甜椒gydF4y2Ba“CM334”展示了一个很高程度的抵抗的多个种族gydF4y2Bap . capsicigydF4y2Ba并报告抗根腐病,冠腐病,水果腐烂,和叶枯病gydF4y2Ba9gydF4y2Ba- - - - - -gydF4y2Ba11gydF4y2Ba]。gydF4y2Ba
先前的研究表明,抵抗的胡椒gydF4y2Bap . capsicigydF4y2Ba是多基因控制由复杂的数量性状位点(法)gydF4y2Ba12gydF4y2Ba- - - - - -gydF4y2Ba15gydF4y2Ba]。识别和QTL定位的基因赋予部分抵抗gydF4y2Bap . capsicigydF4y2Ba在养殖品种的辣椒是必不可少的gydF4y2Bap . capsicigydF4y2Ba阻力。大多数的经济价值gydF4y2Bap . capsicigydF4y2Ba电阻是守恒的gydF4y2Ba辣椒gydF4y2Ba5号染色体。众多的分子标记开发区域内主要的QTL,但是几乎没有取得任何进展在发展中功能基于基因的标记gydF4y2Bap . capsicigydF4y2Ba电阻,没有gydF4y2Bap . capsicigydF4y2Ba为基因(gydF4y2BaRgydF4y2Ba基因)尚未为特征。最近,高质量gydF4y2Ba新创gydF4y2Ba测序gydF4y2Ba辣椒gydF4y2Ba基因组,包括CM334基因组,据报道(gydF4y2Ba16gydF4y2Ba,gydF4y2Ba17gydF4y2Ba]。这个从辣椒基因组信息可以应用于植物育种和作物的选择与抗病性等具体特征或大型水果大小(gydF4y2Ba16gydF4y2Ba,gydF4y2Ba18gydF4y2Ba,gydF4y2Ba19gydF4y2Ba]。功能的发展基于基因的标记和基因赋予抵抗的进一步描述gydF4y2Bap . capsicigydF4y2Ba努力培育抗病辣椒品种是关键因素。gydF4y2Ba
植物的多层防御病原体的攻击,包括连续的壁垒防御和编程基于识别病原体的免疫反应gydF4y2Ba20.gydF4y2Ba- - - - - -gydF4y2Ba22gydF4y2Ba]。耐药基因类似物(rga)蛋白参与植物免疫反应。rga高度保守的结构,包括核苷酸结合位点富亮氨酸重复(NBS-LRR)蛋白质受体蛋白质(针对)和受体激酶(RLKs) [gydF4y2Ba21gydF4y2Ba,gydF4y2Ba23gydF4y2Ba,gydF4y2Ba24gydF4y2Ba]。rga已经克隆抗性基因在不同植物如小麦(gydF4y2BaLr10对病原体gydF4y2Ba),大麦(gydF4y2BaMla6gydF4y2Ba)、水稻(gydF4y2Ba最后gydF4y2Ba),玉米(gydF4y2BaRp1-DgydF4y2Ba),拟南芥(gydF4y2BaRPM1gydF4y2Ba)gydF4y2Ba,gydF4y2Ba生菜(gydF4y2BaRgc2gydF4y2Ba)、烟草(gydF4y2BaNgydF4y2Ba),番茄(gydF4y2Ba脉冲重复频率gydF4y2Ba)[gydF4y2Ba25gydF4y2Ba- - - - - -gydF4y2Ba32gydF4y2Ba]。rga可以用来识别和描述gydF4y2Ba基因。gydF4y2Ba
在这项研究中,之前开发的标记的序列筛选扩展主要QTL区域gydF4y2Ba辣椒gydF4y2Ba5号染色体和rga在该地区重新分析来确定候选抗性基因。标记开发候选基因是由比较单核苷酸多态性(snp)之间gydF4y2Bap . capsicigydF4y2Ba防品种gydF4y2Bac .建立gydF4y2Ba和“CM334”gydF4y2Bap . capsicigydF4y2Ba易感品种gydF4y2Bac .建立gydF4y2Ba“Daepoongcho”。总共有61gydF4y2Ba辣椒gydF4y2Ba登记入册被用来验证新开发RGA-based标记通过高分辨率融化(人力资源管理)分析。这些标记可能是有用的种质基因分型结果验证,进一步描述抗性基因gydF4y2Bap . capsicigydF4y2Ba。gydF4y2Ba
2。材料和方法gydF4y2Ba
2.1。植物材料gydF4y2Ba
61年gydF4y2Ba辣椒gydF4y2Ba登记入册(耐44、中度和14易感品种;表gydF4y2BaS1gydF4y2Ba)[gydF4y2Ba33gydF4y2Ba- - - - - -gydF4y2Ba38gydF4y2Ba)被用来验证cosegregation分子标记。所有的植物都生长在32-cell托盘装满土壤。植物被保存在一个生长室在25°C 16 h / 8 h(光明/黑暗)光周期。gydF4y2Ba
2.2。病原体准备和植物与p . capsici接种gydF4y2Ba
的准备gydF4y2Bap . capsicigydF4y2Ba培养液前面研究[gydF4y2Ba11gydF4y2Ba]。gydF4y2Bap . capsicigydF4y2Ba增长了7天在马铃薯葡萄糖琼脂培养基27°C和菌丝体的插头(直径6毫米)转移在V8琼脂培养基对游动孢子产量。5天后,V8琼脂培养基上菌丝生长受损荧光灯下使用撒布机和孵化2天。zoosporangia震惊酝酿在4°C与无菌水1小时30分钟开始释放游动,紧随其后的是30分钟28°C平衡。游动孢子收集和浓度调整到1×10gydF4y2Ba5gydF4y2Ba延长·毫升gydF4y2Ba−1gydF4y2Ba统计的血细胞计数器和2毫升的悬架是湿透的根源每个six-true-leaf胡椒植物阶段。接种胡椒植物被保存在25°C 16小时光的光周期条件。评估疾病症状评估使用疾病指数0到3范围(0 =没有症状;1 =叶萎蔫但没有坏死或不到30%的叶子枯萎;2 =叶萎蔫和略坏死或不到60%的叶子枯萎;3 =植物死了)gydF4y2Ba37gydF4y2Ba]。胡椒的分类线耐,适度耐药或敏感,是基于每一行的平均病情指数,如果规模是< 1,胡椒线被认为是抗(R),疾病指数< 1≤2赋予适度耐(先生),如果规模和易感(S) < 3。表型结果对应于那些如金所示gydF4y2Ba等gydF4y2Ba,2017 (gydF4y2Ba38gydF4y2Ba]。gydF4y2Ba
2.3。基因组DNA提取gydF4y2Ba
基因组DNA提取自植物的嫩叶样品使用稍微修改cetyltrimethylammonium溴铵(CTAB)方法(gydF4y2Ba39gydF4y2Ba]。首先,叶子用杵磨,混合CTAB缓冲区,聚乙烯吡咯烷酮,gydF4y2BaβgydF4y2Ba巯基乙醇。样本在65°C的环境1 h,加入氯仿与异戊醇(24:1),并在4°C 15814离心机gydF4y2BaggydF4y2Ba15分钟。上层清液被转移到一个新的1.5毫升管和孵化为30分钟−20°C与异丙醇。使用70%的乙醇沉淀基因组DNA被15814离心机在4°CgydF4y2BaggydF4y2Ba10分钟。DNA颗粒溶解在去离子水和治疗与核糖核酸酶a基因组DNA的浓度是衡量NanoDrop™分光光度计(nd - 2000, ThermoFisher科学、沃尔瑟姆,妈,美国),然后稀释样品最后20 ng·DNA的浓度gydF4y2BaμgydF4y2BalgydF4y2Ba−1gydF4y2Ba。gydF4y2Ba
2.4。主要QTL-Related标记分析gydF4y2Ba
5简单序列重复的DNA序列(SSR), 8裂解放大多态序列(帽),和18 SNP标记的地图出版胡椒5号染色体并与使用gydF4y2Bac .建立gydF4y2Ba“CM334”基因组(1.55版本gydF4y2Bahttp://genome.pepper.snu.ac.kr/gydF4y2Ba使用BLASTn)。5号染色体上的QTL区域主要是扩展包括所有先前确定的分子标记,然后从扩展的主要候选抗性基因QTL区域被选中。gydF4y2Ba
2.5。候选基因选择和高分辨率分析融化gydF4y2Ba
rga被确定根据域的结构基因QTL扩展的主要地区。使用智能领域进行了结构分析(gydF4y2Bahttp://smart.embl-heidelberg.de/gydF4y2Ba)和包含了(gydF4y2Bahttp://pfam.xfam.org/gydF4y2Ba)。RGA序列扩展包括一个额外的1 kb的两端序列使用一个内部管道。多序列比对工具肌肉(gydF4y2Bahttp://www.ebi.ac.uk/gydF4y2Ba)是用来确定之间的单核苷酸多态性gydF4y2Bac .建立gydF4y2Ba“CM334”和gydF4y2Bac .建立gydF4y2Ba“Daepoongcho”发展RGA-based标记。候选基因的选择是基于位置的单核苷酸多态性在QTL区域扩大。gydF4y2Ba
肽和DNA序列从辣椒基因组平台(下载gydF4y2Bahttp://genome.pepper.snu.ac.kr/gydF4y2Ba使用primer3plus)和设计引物(gydF4y2Bahttp://www.bioinformatics.nl/cgi-bin/primer3plus/gydF4y2Baprimer3plus.cgigydF4y2Ba;表gydF4y2Ba1gydF4y2Ba)人力资源管理分析分子标记。人力资源管理分析来验证新开发的cosegregation RGA-based标记61人之上gydF4y2Ba辣椒gydF4y2Ba到达使用LightCycler®实时PCR(罗氏、巴塞尔、瑞士)。反应溶液的总体积20gydF4y2BaμgydF4y2BaL和包含40 ng基因组DNA, 1gydF4y2BaμgydF4y2Ba两个引物在10 pmol·LgydF4y2BaμgydF4y2BalgydF4y2Ba−1gydF4y2Ba,0.1gydF4y2BaμgydF4y2BaL EasyTaq®DNA聚合酶(转基因生物技术,北京),2gydF4y2BaμgydF4y2BaL 10×EasyTaq®缓冲区(转基因生物技术,北京),1gydF4y2BaμgydF4y2BaL 2.5毫米核苷酸(转基因生物技术,北京),1gydF4y2BaμgydF4y2BaL SYTO®9绿色荧光核酸染色(美国生活技术,卡尔斯巴德,CA),和无菌水。PCR条件5分钟变性在95°C其次是10 s在95°C和退火与延伸20 s 60°C 40周期。融化曲线是95°C的发展阶段为1分钟,1分钟40°C, 65°C的1 s荧光估计每隔0.2°C。通过高分辨率的pcr分子标记分析了熔体软件1.1版本(罗氏、基底、瑞士)。gydF4y2Ba
3所示。结果与讨论gydF4y2Ba
3.1。候选人RGA标记与集成的基因和基因组数据辣椒染色体5gydF4y2Ba
基因和基因组数据胡椒5号染色体是确定一个主要的扩展区域综合抗性QTL。下面的DNA序列和QTL信息被用于这项研究:帽子标记映射到gydF4y2BaPc.5.2, Pc.5.3gydF4y2Ba地区的H3×瓦尼亚(高压),和“Perenial”×Yolo想知道意思的(PY) [gydF4y2Ba40gydF4y2Ba];SNP标记在gydF4y2BaPc5.1gydF4y2Ba地区的gydF4y2Ba”gydF4y2Ba早期的墨西哥胡椒gydF4y2Ba”gydF4y2Ba×CM334 (EC),gydF4y2BaPhyto5gydF4y2Ba地区的“YCM334”×Tean,和gydF4y2BaPc5.2gydF4y2Ba地区的“CM334”×Chilsungcho (CC)和“NB1”ד印度鬼椒”(gydF4y2Ba41gydF4y2Ba- - - - - -gydF4y2Ba44gydF4y2Ba];和SSR标记映射到gydF4y2BaPc5.1gydF4y2Ba地区的“Manganji”דCM334”(gydF4y2Ba45gydF4y2Ba]。以前开发的基因位点标记使用BLASTn与被识别gydF4y2Bac .建立gydF4y2BaCM334基因组。几个代表性的引物序列和基因的位置标记如表所示gydF4y2Ba1gydF4y2Ba。gydF4y2Ba
5号染色体的物理图谱绘制包括标记的位置和获得的扩展主要QTL区域选择候选抗性基因。扩展的QTL区域跨越从6.2 Mbp (U196349) 139.2 Mbp (P5-SNAP-CM)和包含10个主要从56个支架(表845个基因gydF4y2Ba1gydF4y2Ba和图gydF4y2Ba1gydF4y2Ba)。的基因包括NB-ARC域包含蛋白质、肝家族转录因子,细胞色素P450和未知功能的蛋白质。gydF4y2Ba
使用域分析工具,18 rga在扩展的QTL区域包括14 NBS-LRR蛋白质,3 RLKs, 1 RLP被确定(表gydF4y2BaS2gydF4y2Ba)。此前,RehriggydF4y2Ba等gydF4y2Ba附近,2014,报道一些rga高峰期QTL在染色体5使用CM334基因组(ver.1.5),但是他们没有开发RGA-based标记来评估gydF4y2Bap . capsicigydF4y2Ba为资源。在这项研究中,额外的五rga确定从CM334基因组(版本更新。1.55)如表所示gydF4y2BaS2gydF4y2Ba。14 NBS-LRR蛋白质由七部分类型NBS-LRRs和七个完整NBS-LRRs类型。所有三个RLKs kinase-TM-kinase域。RLP peptide-LRR域信号。大多数的候选基因被克隆gydF4y2Barga基因在植物物种。到目前为止,超过314的功能gydF4y2Ba植物的基因已经被鉴定(gydF4y2Ba46gydF4y2Ba]。其中,80%的编码NBS-LRR蛋白质(191/314)或针对/ RLKs (60/314)。在gydF4y2Ba茄科gydF4y2Ba,所有的克隆gydF4y2Ba基因对gydF4y2Ba5种gydF4y2Ba确定了rga如gydF4y2BaRpi-blb1gydF4y2Ba,gydF4y2BaRpi-blb2gydF4y2Ba,gydF4y2BaR2gydF4y2Ba,gydF4y2BaR3a,gydF4y2Ba和gydF4y2BaELRgydF4y2Ba(gydF4y2Ba47gydF4y2Ba- - - - - -gydF4y2Ba51gydF4y2Ba]。因此,RGA-based标记的识别rga和发展进一步描述可能是有用的gydF4y2Bap . capsicigydF4y2Ba为基因。gydF4y2Ba
3.2。SNP标记的发展gydF4y2Ba
十八rga重新分析辨认snp抗性和敏感gydF4y2Bap . capsicigydF4y2Ba由多个序列比对种质。在18 rga, 11个snp,被选为候选基因分子标记的发展(表gydF4y2Ba2gydF4y2Ba和表gydF4y2BaS2gydF4y2Ba)。RGA-based标记有四个SNP类型(A / C, A / G, T / C,和T / G),从一到三个SNP抗性和敏感种质之间(表gydF4y2Ba2gydF4y2Ba)。使用人力资源管理分析、九NBS-LRR-based标记(canb canb canb - 5390 - 5410 - 5440, canb - 5480, canb - 5550, canb - 5720, canb - 5330, canb - 5530和canb - 5170),一个RLK-based标记(烦恼- 5470),1 RLP-based标记(鲤鱼- 5130)。人力资源管理曲线明显区分三个基因型之间的每个标记:耐纯合子,抗杂合的,纯合子(图和敏感gydF4y2Ba2gydF4y2Ba)。gydF4y2Ba
RGA-based SNP标记的基因分型结果应用于61年gydF4y2Ba辣椒gydF4y2Ba到达之前开发的标记,如142964 (gydF4y2Ba42gydF4y2Ba]和Phyto5SAR [gydF4y2Ba43gydF4y2Ba]。在之前的报告中,该地区跨越从20.2到29.29 (Mbp) Mbp 5号染色体上被报道为主要核心QTL区域(gydF4y2Ba43gydF4y2Ba]。Phyto5SAR主要核心QTL紧密相连,并被用来评估新开发的标记的基因分型结果准确性。新开发的标记的pcr结果显示在表中gydF4y2Ba3gydF4y2Ba和表gydF4y2BaS3gydF4y2Ba被分成四组,基因分型结果准确性品种。品种的表型属于1组和2组由六个标记基因分型结果与结果(表gydF4y2Ba3gydF4y2Ba)。cosegregation利率从37.7%变化到86.9%(图gydF4y2Ba3(一个)gydF4y2Ba)。几个标记毗邻Phyto5SAR趋势显示cosegregation率高,这是鲤鱼- 5130 (82%)、canb - 5330(83.6%)、烦恼- 5470(72.1%),和canb - 5530 (82%)。虽然远离Phyto5SAR物理图谱,canb - 5480显示cosegregation率最高(86.9%),除了八个品种(13.1%)。canb - 5480型可以适用于不服从的种质基因分型(R31-33;使用Phyto5SAR R35-37)。在先前的研究中,分子标记的组合增加基因分型的准确性gydF4y2BaCf-9gydF4y2Ba轨迹在番茄品种(gydF4y2Ba52gydF4y2Ba]。在我们的研究中,通过结合两个或三个标记、基因分型结果精度提高相比,在单一RGA制造商(图gydF4y2Ba3gydF4y2Ba)。组合的三个标记如canb - 5480、鲤鱼- 5130和canb - 5330 cosegregated阻力和敏感的表型在本研究中使用胡椒登记入册(图gydF4y2Ba3 (b)gydF4y2Ba)。基因分型的结果canb - 5480和Phyto5SAR基因分型结果显示,98.4%的准确性除了一个品种(R43)和canb - 5130可以适用于R43品种的基因分型。结合两个或三个标记的基因分型结果精度范围从78.6%到100%(图gydF4y2Ba3 (b)gydF4y2Ba)。综上所述,结合高度相关的标记可以有效地用于辣椒品种进一步辣椒育种的基因分型。gydF4y2Ba
(一)gydF4y2Ba
(b)gydF4y2Ba
cosegregation率的变化(37.7%对86.9%)建议之间的转换主要的QTL区域遗传和物理地图。金和同事(gydF4y2Ba17gydF4y2Ba]构造pseudomolecules使用高密度地图有6281标记来自gydF4y2Bac .建立gydF4y2Ba“长期”和gydF4y2Bac .建立gydF4y2Ba邓普西。脚手架锚定是基因地图之间的交叉进行的gydF4y2Bac .建立gydF4y2Ba“NuMexRNAKY”和gydF4y2Bac . frutescensgydF4y2Baacc。2814 - 6 (gydF4y2Ba53gydF4y2Ba]。之前的研究都不使用“CM334”有关的人口。基因组变异“CM334”和其他辣椒种质之间可以代表cosegregation差异(gydF4y2Ba54gydF4y2Ba]。进一步的辣椒基因组结构的重新分析可以揭示reanchoring或内或在染色体重排。gydF4y2Ba
迄今为止,几个标记与胡椒的主要抗性QTL开发包括限制片段长度多态性(rflp),随机扩增多态性DNA (RAPD)扩增片段长度多态性(妊娠),和单核苷酸多态性,这可能导致分子标记辅助选择育种gydF4y2Bap . capsicigydF4y2Ba多重线(gydF4y2Ba55gydF4y2Ba,gydF4y2Ba56gydF4y2Ba]。小王和同事(gydF4y2Ba57gydF4y2Ba还开发了SSR标记,胡椒的耐药基因紧密相连线“PI201234”。然而,之前开发的标记的不同基因映射可能不足以确定QTL区域包含一个QTL,不同试验点之间的是守恒的。gydF4y2Bap . capsicigydF4y2Ba隔离不同毒力因子和/或接种浓度也有变量疾病表型,这导致cosegregation变异的分子标记(gydF4y2Ba43gydF4y2Ba,gydF4y2Ba57gydF4y2Ba]。Rehrig和同事(gydF4y2Ba44gydF4y2Ba]报道cosegregatedgydF4y2BaCaDMR1gydF4y2Ba与QTLgydF4y2BaPc5.1gydF4y2Ba作为抵抗的候选人gydF4y2Bap . capsicigydF4y2Ba胡椒,但其功能尚未确定。在这里,新RGA-based密切相关的标记gydF4y2Bap . capsicigydF4y2Ba电阻是发达,可用于基因型育种资源和进一步描述gydF4y2Ba基因。我们标记可用于结合其他指标如canb - 5480,鲤鱼- 5130和canb - 5330高效地确定辣椒种质的表型。这些数据还不足以确定电阻5号染色体上的基因谱的QTL区域。gydF4y2Ba
4所示。结论gydF4y2Ba
在这项研究中,11个小说RGA-based标记开发与主要的QTLgydF4y2Bap . capsicigydF4y2Ba阻力。在标记中,canb - 5480显示最主要标志QTL紧密相连。结合canb - 5480,鲤鱼- 5130和canb - 5330提供61型的最精确的评估gydF4y2Ba辣椒gydF4y2Ba登记入册。在一起,结合其他标记,它可以更有效的表现型的辣椒种质和进一步描述抗性基因gydF4y2Bap . capsici。gydF4y2Ba
数据可用性gydF4y2Ba
使用的数据来支持本研究的结果中包括文章和补充材料。gydF4y2Ba
的利益冲突gydF4y2Ba
作者宣称没有利益冲突。gydF4y2Ba
确认gydF4y2Ba
这项工作是支持由韩国国家研究基金会(NRF)韩国政府(科技部ICT) (NRF - 2017 r1e1a1a01072843)和合作研究项目(项目号PJ010939062018)农村发展农业科技发展的韩国政府。Nayoung金正日的奖学金支持BK21 +项目从教育部。gydF4y2Ba
补充材料gydF4y2Ba
增刊。表S1:植物材料的分子标记用于验证研究。增刊。表S2:信息的重新分析rga在这项研究中。增刊。表S3:序列变异(SNPs)辣椒品种的抗性和敏感植物之间。gydF4y2Ba(gydF4y2Ba补充材料gydF4y2Ba)gydF4y2Ba