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萨拉Ajdari Afshin Ebrahimpour、Musaalbakri Abdul Manan Muhajir哈米德,Rosfarizan穆罕默德,Arbakariya b公司, ”营养需求的改进几个菌株的生长和孢子形成红紫色在固体培养”,生物医学研究的国际, 卷。2011年, 文章的ID487329年, 9 页面, 2011年。 https://doi.org/10.1155/2011/487329
营养需求的改进几个菌株的生长和孢子形成红紫色在固体培养
文摘
介绍了改进的营养需求增长和孢子形成的几株红紫色在固体培养。研究结果显示,葡萄糖加强增长的m .紫色压力测试,但抑制孢子形成率。另一方面,蔗糖诱导孢子形成但抑制细胞的生产质量。葡萄糖和蔗糖的结合极大地增强了孢子形成和细胞的大规模生产m .紫色。尽管增长和孢子形成率是相关的碳氮比(C / N比值),碳和氮源的类型和浓度也大大影响了生长动力学。在媒体测试,Hiroi-PDA媒介是最首选的媒介m .紫色菌株检测径向生长速率的增强,孢子形成,细胞生产。因此,Hiroi-PDA可能提出的通用基础培养基的培养m .紫色。然而,个人所需培养基优化每个菌株的生长和孢子形成的显著增强m .紫色。
1。介绍
属的最重要的特征红曲霉,这属于子囊菌类和Monascaceae家庭,是能够产生次生代谢产物酮化合物结构(1,2]。这个模具一直在培养水稻和作为几千年来中国食物的一部分,通常被称为红模具大米。最著名的次生代谢产物,从这些真菌分离和鉴定,包括monacolins, GABA, dimerumic酸与医疗效果,色素作为天然色素和桔霉素作为抗菌剂(3- - - - - -5]。
许多丝状子囊菌花大部分的生命周期作为迄今,多种形式的无性孢子(分生孢子)作为营养繁殖体或男(施肥)父母在性跨越。无性孢子形成是一种常见的生殖模式红曲霉物种(6]。在有利的环境条件下,每个分生孢子可以产生一个年轻的菌丝体。的大小和形状的丝状真菌孢子和殖民地在真菌鉴定的重要因素。在真菌发酵,接种可以执行使用一种文化形式的营养细胞或孢子悬液。改进的径向生长速率时将考虑营养细胞需要在发酵过程作为接种体。培养液的孢子的形式有许多优点相比,营养细胞,缓解等处理,高生存能力,长期与稳定的存储、维护和保存。然而,随着孢子形成的速度红曲霉spp低是由于它的asc特性,营养细胞的培养液的形式广泛应用于发酵使用红曲霉spp。孢子形成的速度红曲霉spp可能通过培养基成分的优化改进。自红曲霉spp无毒的真菌,红曲霉发酵产品可以直接食用的食物或营养补充剂与多个疗效。工业的发展过程中,营养生长和孢子形成的改进要求红曲霉spp将确定。首选的增长的特点红曲霉spp高级生产所需的二次代谢产物也会被识别。
一般来说,真菌的生长媒体包含碳(C)和氮(N)的来源,和大多数真菌生长和繁殖需要几个特定的元素(7- - - - - -9]。此外,各种类型的C和N来源可以利用真菌因其能力分泌的各种酶聚合物的降解成小分子(10]。这意味着C和N源的类型和浓度、C / N比,和维生素的重要因素中配方是真菌生长和孢子形成的增强。虽然马铃薯葡萄糖琼脂(PDA)和麦芽提取琼脂(MEA)通常被称为最常见的媒体增长和真菌的孢子形成4],它们只适用于实验室的规模和可能不是在大规模生产的经济。王妃et al。11]声称Abrus蔗糖琼脂是真菌的首选媒介增长相比Czapek的阿霉素琼脂和PDA。此外,C / N比的重要性对真菌生长和形成孢子的能力已经被几位研究人员报告7,12,13]。例如,李et al。14)显示,低浓度的矿物质补充剂(锌2 +、锰2 +、铜2 +,菲2 +)增长的必要条件红曲霉spp。,而高浓度毒性引起的。
由于真菌可以适应生长在固体基质,所涉及的机制与控制菌丝的生长在水下研究固体媒体比文化。信息增强营养需求的增长和孢子形成的速度红曲霉spp对固态培养缺乏。因此,本研究的主要目的是研究介质成分对经济增长的影响和孢子形成率的几个红紫色在固态栽培菌株。产生的信息将用于制定的工业媒体大规模种植这些真菌菌株,具有潜力的生产等各种工业应用红曲霉用作保健食品及医药等发酵产品。
2。材料和方法
2.1。材料
酵母提取物、麦芽提取物,酪蛋白水解物,琼脂,标准czapek介质,意味着,PDA,蛋白胨是购自Difco(美国底特律,MI)。其他化学物质用于本研究从默克公司购买(达姆施塔特,德国)。
2.2。微生物
七个红紫色菌株被用于这项研究。三个m .紫色菌株(DSM1379 DSM1604, DSM1603)从德国获得微生物和细胞培养的集合(DSMZ),而其他四个m .紫色菌株(FTC5391 FTC5400、FTC5354 FTC5357)被孤立的当地来源和维护文化集合的马来西亚农业研究和发展研究所(狂欢节)。常规接种和培养的菌株是守恒的PDA在30°C为7天,其次是存储在4°C,和每月的亚文化。
2.3。生长和孢子形成实验
小块的营养细胞(2毫米2)从7-day-old获得PDA偏被引用在培养皿的中心包含不同琼脂媒体(表1)。孢子接种后12天在30°C用无菌盐水含有2% (v / v)二层80。所有的实验进行了一式三份。
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2.4。分析方法
的增长m .紫色菌株估计细胞干重的测定和径向增长。干电池体重的测定,整个的琼脂培养板和100毫升蒸馏水混合,煮溶解琼脂。琼脂溶液含有真菌生物量是透过绘画纸干燥滤纸5号,和留存的滤纸真菌细胞干在烤箱在90°C 24 h,直到一个常数达到干重。径向增长估计通过测量每个殖民地的统治者的半径培养皿的中心沿两垂直轴(每道菜四个测量)的间隔48 h。使用血球计孢子的数量计算。
2.5。统计分析
不同菌株之间的平均值的差异和媒体表达的意思+SD。单向方差分析(方差分析),LSD(最小平方差异)事后测试(值< 0.05),二元关系被用来测试不同菌株生长和孢子形成率的差异在不同的媒体使用PASW统计软件(版本18)。
3所示。结果
3.1。培养基组成对径向生长速率的影响
介质成分对经济增长的影响(径向生长和细胞大规模生产)和孢子形成不同的菌株m .紫色在各种媒体经过12天的孵化总结表2。的径向增长7株m .紫色在各种媒体经过12天的孵化图所示1。菌株,径向生长速率显著增加培养使用Hiroi和PDA媒体的混合物。径向生长速率在PDA和改进媒介(IM)明显低于其他媒体,而径向Hiroi增长率是最高的菌株,除了DSM1603应变,IM径向生长速率最高。单向方差分析测试显示显著差异的径向生长速率在不同菌株在每个媒介,如下:Hiroi (和值= 0.00),我(和值= 0.00),是(和值= 0.005),Hiroi-PDA (和值= 0.032)和点(和值= 0.005)。然而,所有菌株的径向生长速率在PDA测试没有明显不同(和值= 0.34)。LSD事后测试表明,确切点之间的差异是DSM1603应变和其他菌株。最低的径向生长速率约为1.67毫米/天DSM1379 PDA,而最高约为3.03毫米/天m .紫色FTC5391意味着。
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| PDA(葡萄糖(4 g / L),马铃薯淀粉(20 g / L),琼脂(15 g / L)];意味着(葡萄糖(20 g / L),麦芽提取物(20 g / L),蛋白胨(10 g / L),琼脂(15 g / L)];IM(葡萄糖(8 g / L), MgSO4h·72O (2.5 g / L), KH2阿宝4(2.7 g / L),蛋白胨(2.4 g / L),酵母提取物(2 g / L),琼脂(15 g / L)];Hiroi(蔗糖(100 g / L),酵母提取物(3 g / L),酪蛋白水解物(5 g / L), NaNO3(2 g / L), KH2阿宝4(1 g / L), MgSO4h·72O (0.5 g / L),氯化钾(0.5 g / L), FeSO4(0.01 g / L),琼脂(15 g / L)],[下午蔗糖(30 g / L),细菌蛋白胨(5 g / L),乳糖(3 g / L),玉米陡峭(0.5 g / L), NaNO3(3 g / L), K2HPO4(1 g / L), MgSO4h·72O (0.5 g / L),氯化钠(4 g / L), FeSO4(0.01 g / L),氯化钾(0.5 g / L),琼脂(15 g / L), CuSO4h·72FeCl O (0.001 g / L)3h·62O (0.003 g / L)];Hiroi-PDA(蔗糖(100 g / L),酵母提取物(3 g / L),酪蛋白水解物(5 g / L), NaNO3(2 g / L), KH2阿宝4(1 g / L), MgSO4h·72O (0.5 g / L),氯化钾(0.5 g / L), FeSO4(0.01 g / L),马铃薯淀粉(4 g / L)、葡萄糖(20 g / L),琼脂(15 g / L)]。数据意味着±SD。平均值在每一行有不同的标(a, b,…)明显不同(),在每一列有不同的标(1、2、…)明显不同()。 |
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3.2。培养基组成对孢子形成的影响
数据2和3显示介质组成的孢子形成的影响7株m .紫色。孢子形成非常不同的在不同菌株在不同媒体进行这项研究。单向方差分析测试表明,差异显著,如下:Hiroi (和值= 0.00),我(和值= 0.00),是(和值= 0.005),Hiroi-PDA (和值= 0.00),点(和值= 0.000)和PDA (和值= 0.00)。最高的孢子形成Hiroi-PDA介质引起的,而最低的孢子形成了PDA培养基。一般来说,Hiroi和IM媒体对孢子产量最高m .紫色FTC5357和m .紫色FTC1379。
(一)
(b)
3.3。大规模生产介质成分对细胞的影响
介质成分对经济增长的影响的7株m .紫色,测量干电池重量,如图4。从Hiroi-PDA获得最高的细胞生产介质,特别是m .紫色DSM 1603,而从Hiroi获得最低的是媒体。观察细微差别,细胞生产在所有菌株对增长意味着,IM和点。单向方差分析测试的结果不同菌株在不同介质中表现出显著差异只在Hiroi-PDA介质(和值= 0.03)。尽管Hiroi-PDA媒介是最首选的媒介,在一般情况下,在所有的压力测试,LSD测试(数据未显示)表明,细胞生产的复合介质应变依赖。
3.4。培养基配方对菌落形态的影响
不同的培养基配方诱导不同形态的殖民地的m .紫色压力测试在这个研究。的形态m .紫色压力Hiroi-PDA明显改变了与其他媒体相比,特别是在DSM1603(图5)。
(一)
(b)
3.5。影响碳氮比(C / N)径向生长速率、孢子形成,细胞生产
不同媒体的C / N比值在这项研究中的应用是阐明在桌子上3,范围从1.5到12.3。C / N比的影响在径向生长、孢子形成和细胞生产数据所示6,7,8。虽然重要的C / N比和径向生长之间的关系并不是观察(图6),C / N比的影响在径向应变增长依赖。m .紫色DSM1603没有完全遵循C / N比的策略对径向增长,最高的径向增长了1.8 C / N的比例而获得了最低的C / N比值为10.03。相反,m .紫色FTC5357应变径向生长在C / N比率最高为10.03,而最低的是观察到C / N比值为1.8。
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数据7和8显示,孢子形成和细胞生产直接关系到C / N比值在一定程度上。然而,C和N源的类型也极大地影响了孢子形成和细胞生产的所有m .紫色压力测试在这个研究。图6清楚地表明,C / N比的影响在孢子形成应变依赖的m .紫色DSM1379和m .紫色FTC5357菌株没有完全遵循C / N比值在孢子形成的轨道。孢子形成的m .紫色DSM1379首次从媒介没有增加N源中C / N比值为1.8,与C / N的增加大幅下降比率从1.8到8.6。然而,孢子形成增强在高C / N比率(10.3到12.3)。最高的孢子形成m .紫色观察FTC5357在中C / N比值为10.3。孢子形成和C / N的增加急剧增长比率从8.6到10.03,在抑制观察孢子形成较高的C / N比率(> 10.03)。图7显示所有菌株的细胞生产不断增加而提高C / N比8.6。略微减少细胞生产观察到更高的C / N比(< 10.3)。然而,增强细胞生产再次观察到C / N比率非常高(> 12.3)。
3.6。相关性径向生长、孢子形成和细胞生产
表4显示径向增长之间的关联、孢子形成和细胞的大规模生产。结果显示之间的显著相关性径向增长和大规模生产菌株,而没有显著相关性孢子形成和细胞大规模生产以及孢子形成和径向生长速率。
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4所示。讨论
真菌营养需求不仅是重要的成功在实验室培养也为工业发酵过程的优化9]。众所周知,碳和氮源的类型和浓度以及C / N比真菌生长和孢子形成上扮演重要角色7,18,19]。操纵的营养需求是最简单、最有效的方法提高种植的性能,考虑经济增长,生产目标代谢物的产量和生产力。选择的第一步基础培养基的优化中。在这项研究中,六个媒体为了达到测试的改善有利的基础培养基生长和孢子形成的几个m .紫色菌株。这项研究的结果表明,径向生长速率、孢子形成,细胞大规模生产,几株的菌落形态m .紫色由不同成分的固体介质影响很大。的能力m .紫色生长和形成孢子是极大地增强了PDA和Hiroi媒体使用。这意味着营养物质在两种媒体的交互需要改进的生长和孢子形成m .紫色。尽管Hiroi-PDA媒介倾向于提高孢子形成,径向增长,在培养细胞生产m .紫色在稳固的媒体,这些不同菌株的生长参数之间的显著相关性在不同的媒体没有被观察到。真菌的生长和孢子形成合成媒体通常是相关的物种和介质成分(20.]。对比PDA (nonfavourable介质径向生长速率)和Hiroi(有利的介质径向生长速率)与其他媒体表明,径向生长速率的变化与不同的碳源中使用不同的媒体。一般来说,径向的增长m .紫色时提高蔗糖培养基中碳源。在径向增长、分支和尖端增长的利率与细胞质体积(9),这可能是刺激由于蔗糖作为本研究中观察到的存在。能够利用硝酸盐、氨或有机氮源确定营养生长的程度,因此,真菌的繁殖能力。没有证据表明孢子形成不必要的增长需要一个元素(8]。李等人。14)报道,无机离子和生长因子被要求刺激经济增长紫色。
营养因素对真菌孢子形成的影响,研究了由几个研究人员。硫酸铵和硝酸钠抑制分生孢子生产青霉菌camemberti在固体培养基,硝酸钾的存在引起的分生孢子生产21]。类似的结果也被报道曲霉属真菌spp [22,23),红曲霉spp [24]。值得注意的是,有利的媒体(Hiroi-PDA和Hiroi)增强的孢子形成的m .紫色压力测试在这项研究中含有硝酸盐和铵。蔗糖被报道为抑制剂m .紫色细胞生产(17]。另一方面,葡萄糖被确认为生产的诱导物m .紫色细胞(25,26]。众所周知,细菌和真菌孢子形成应对不利的条件。氮饥饿和钙供应产生孢子形成率高于碳饥饿(21]。Hiroi-PDA介质应用于本研究提高孢子形成的m .紫色包含了大量的糖(葡萄糖和蔗糖)和少量的氮源。相比之下,Rajderkar [8)声称,低糖浓度给孢子形成率高于高糖浓度。真菌孢子生殖的能力与积极的和消极的基因的一个复杂的系统规定,受环境和营养因素影响。时间和空间规定基因表达、细胞专业化、和细胞间的沟通可能会影响在真菌分生孢子生产系统(6,27]。遗传机制控制分生孢子生产过程中描述的两个子囊菌系统,曲霉属真菌nidulans和粗糙脉孢菌(27]。关心的只有少数的遗传机制红曲霉spp已报告(6]。在红曲霉spp细胞系统,无性或有性孢子的形成似乎是细胞增殖的有效方法。虽然一般的机制管理真菌的孢子形成相似,当然,也有一些重要的区别。变化的能力不同红曲霉菌株在同一物种形成孢子与不同介质成分的遗传差异有关细节。然而,进一步的研究是必要识别遗传机制之间的关系控制孢子形成和营养需求。
从这个研究结果还显示,C / N比的影响在径向生长、孢子形成,细胞生产期间的培养m .紫色在固体介质应变依赖。孢子形成C / N比的增加而增加了一定的水平依赖于菌株,大幅降低孢子形成在哪里发生。从增长率和孢子产量之间的相关性,这是显示的首选媒介增长率可能不是一定适合提高孢子产量。例如,增长m .紫色使用Hiroi FTC5391是加强培养,MEA,权力,和Hiroi-PDA媒体,但孢子产量只有增强使用Hiroi-PDA栽培介质。很明显,需要特定的培养基配方的增强生长和孢子形成特定的m .紫色压力。换句话说,一个通用的培养基配方不能申请m .紫色菌株。来自本研究的发现是重要信息的发展生产的发酵过程红曲霉发酵产品,发现许多应用程序作为保健食品和医药。这意味着个人应进行培养基的优化m .紫色应变过程中使用。然而,Hiroi-PDA可以作为一个通用的基础培养基的培养m .紫色菌株。
5。结论
生长参数(径向生长、孢子形成和细胞大规模生产)的几个m .紫色菌株固体培养基上培养被极大地影响了培养基成分和被发现应变依赖。使用多糖、二糖和单糖作为碳源和氮源贡献的因素涉及的径向生长和分生孢子生产以及增强细胞生产和菌落形态的变化。蔗糖诱导孢子形成和抑制细胞的生产质量。葡萄糖不产生孢子形成。葡萄糖和蔗糖的结合极大地增强了孢子形成,和细胞的大规模生产m .紫色。在媒体测试,Hiroi-PDA介质是最有利的介质径向生长增强,孢子形成和细胞的大规模生产m .紫色压力测试在这个研究。因此,Hiroi-PDA可能提出的通用基础培养基的培养m .紫色提高次生代谢物生产或生产红曲霉发酵产品。
确认
由马来西亚Putra大学和马来西亚金融支持农业研究与发展研究所(狂欢节)感激地承认。
引用
- p . Juzlova l . Martinkova,诉Kren“真菌红曲霉的次级代谢产物:复习一下,”工业微生物学杂志,16卷,不。3、163 - 170年,1996页。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
- o . Edogrul和美国Azirak审查研究红曲米(红紫色),“土耳其电子生物技术杂志》上,卷2,37-49,2004页。视图:谷歌学术搜索
- t . t . y . c . Su j。j Wang Lin和t·m·潘”生产次生代谢产物γ氨基丁酸酸和红曲霉monacolin K。”工业微生物学和生物技术杂志》上,30卷,不。1,41-46,2003页。视图:谷歌学术搜索
- j·c·卡瓦略et al .,“从红曲霉Biopigments:菌株的选择,橘霉素生产和颜色稳定,”巴西Achives生物学和技术48卷,第894 - 885页,2005年。视图:谷歌学术搜索
- y l .林·t·h·王,m·h·李和n w·苏,“生物活性成分和营养物质Monascus-fermented赖斯:复习一下,”应用微生物学和生物技术,卷77,不。5,965 - 973年,2008页。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
- j . h . Suh c . s . Shin,“红曲霉sp的形态学变化分析。J101与酿酒酵母细胞cocultured,”《微生物学字母,卷193,不。1,第147 - 143页,2000。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
- l高,m . h .太阳x z . Liu和y s切,“碳浓度和碳氮比的影响在几个生物电控制真菌的生长和孢子形成,”真菌学的研究,卷111,不。1,第92 - 87页,2007。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
- n . r . Rajderkar”某些化学要求增长和孢子形成链格孢属的物种,”Mycopathologia et Mycologia Applicata,30卷,不。2、172 - 176年,1966页。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
- g·m·沃克和n . a .白色“真菌生理、概论”真菌:生物学和应用程序、k·卡文纳艾德。威利,2005。视图:谷歌学术搜索
- c·l·李·h·K .挂j . j . Wang和t . m .锅,“改善monacolin K比橘霉素的生产红曲霉紫竹南大568薯蓣属媒介中介的pH值和乙醇,”农业与食品化学杂志》上,55卷,不。16,6493 - 6502年,2007页。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
- 王妃,m . Sohail s洪德、和h .爱宝”Abrus蔗糖琼脂为真菌的生长,新媒体”巴基斯坦植物学杂志》,39卷,不。5,1883 - 1885年,2007页。视图:谷歌学术搜索
- p . j . z . Wu c·k·张,k h . Wong和n . l .黄”研究的深层发酵侧耳属tuber-regium (Fr) Singer-part 1:物理和化学因素影响菌丝体生长和生物转化效率,”食品化学,卷81,不。3、389 - 393年,2003页。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
- p . j . z . Wu c·k·张,k h . Wong和n . l .黄”研究的深层发酵侧耳属tuber-regium (Fr)歌手。第2部分:carbon-to-nitrogen效果比培养基的内容和菌丝体的膳食纤维的组成,”食品化学,卷85,不。1,第105 - 101页,2004。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
- b·k·李,h . y .朴,w . j .钟”生产的红色颜料红紫色在水下文化中,“生物技术和生物过程工程卷。7日,21 - 25日,2002页。视图:谷歌学术搜索
- m·j·h·j·c·s . Shin Kim Kim和j.y. Ju,“红曲霉的形态变化和增强色素生产cocultured酿酒酵母或米曲霉,”生物技术和生物工程卷,59号5,576 - 581年,1998页。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
- f . Fierro大肠黑山,s·古铁雷斯和j·f·马丁,“青霉素生物合成突变体屏蔽显示一个删除整个青霉素基因簇在特定网站内守恒hexanucleotide序列,”应用微生物学和生物技术,44卷,不。5,597 - 604年,1996页。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
- y y曾,m·t·陈,c·f·林”增长,色素生产和蛋白酶的活性受盐红紫色,亚硝酸钠,多磷酸盐和各种糖,”应用微生物学杂志,卷88,不。1,31-37,2000页。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
- m·a·杰克逊和d . a . Schisler“炭疽菌的组成和属性truncatum孢子受营养环境的影响而改变。”应用与环境微生物学,卷。58岁的没有。7,2260 - 2265年,1992页。视图:谷歌学术搜索
- m·a·杰克逊和p . j . Slininger“水下文化分生孢子的萌发和分生孢子生产bioherbicide刺盘孢属truncatum影响的氨基酸组成中,“工业微生物学杂志,12卷,不。6,417 - 422年,1993页。视图:谷歌学术搜索
- j.p. Latge和j·j·野猪”,优化de la croissance et de la孢子形成de Conidiobolus obscurus环境defini,”加拿大植物学杂志》卷,63年,第85 - 68页,1985年。视图:谷歌学术搜索
- Krasniewski, p . Molimard g . Feron et al .,“固体培养基成分的影响在青霉菌孢子发育camemberti,”生物化学过程第41卷。。6,1318 - 1324年,2006页。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
- 即Skromne、o·桑切斯和j . Aguirre”饥饿压力调节的表达曲霉菌nidulans brlA调节基因,”微生物学,卷141,不。1,第21至28,1995页。视图:谷歌学术搜索
- a . m .卡尔沃r·a·威尔逊·j·w·博克和n p·凯勒,“次生代谢和真菌之间的关系发展,”微生物学和分子生物学的评论,卷66,不。3、447 - 459年,2002页。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
- m·卡尔和d牧羊人”,不同氮源对色素的影响生产和红曲霉孢子形成的物种在水下,动摇了文化,”加拿大《微生物学,23卷,不。10日,1360 - 1372年,1977页。视图:谷歌学术搜索
- t·f·林和a . l .明天”效应的营养红曲霉sp.形成的红色颜料,”应用微生物学和生物技术,36卷,不。1,第75 - 70页,1991。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
- t·f·林和a . l .明天,”静息细胞研究形成水溶性红红曲霉色素sp,”印度的微生物学杂志卷,162年,第119 - 114页,1993年。视图:谷歌学术搜索
- t·h·亚当斯,j·k·维塞尔和j . h . Yu”在曲霉nidulans无性孢子形成,”微生物学和分子生物学的评论,卷62,不。1,35至54岁,要高许多1998页。视图:谷歌学术搜索
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