分析细胞病理学

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分析细胞病理学/2018/文章

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体积 2018 |文章的ID 8402390 | https://doi.org/10.1155/2018/8402390

张博,李亚丽,于洋,赵金龙,欧扬镇,超宇,杨滨辉,于晓瑞 MicroRNA-378促进BMMSCS中的成骨血管生成偶联,用于潜在的骨再生",分析细胞病理学 卷。2018 文章的ID8402390 9 页面 2018 https://doi.org/10.1155/2018/8402390

MicroRNA-378促进BMMSCS中的成骨血管生成偶联,用于潜在的骨再生

学术编辑:Consuelo Amantini
已收到 2017年7月11日
修改后的 2017年10月2日
接受 2017年11月8日
发表 2018年3月01

摘要

骨组织再生与成骨和血管生成密切相关。成骨生长因子和血管生长因子的协调调节会促进骨再生,而二者的不平衡则会导致外源性输送导致局部骨形成或血管量过大。因此,认为microRNA在基因水平上通过内源性信号通路调控多种代谢进程。在这项研究中,我们同时发现microRNA 378是成骨和血管生成的正调控因子,并且在人骨髓间充质干细胞(hBMMSCs)中,在成骨细胞诱导后,microRNA 378的含量比对照组增加。过表达microRNA 378后,成骨基因和血管生成基因表达同时增加。茜素红、碱性磷酸酶(ALP)染色增强,血管内皮生长因子(VEGF)分泌增多。因此,我们认为miR378是骨再生中成骨-血管生成耦合的理想靶点,为骨再生的基因治疗提供了一个潜在的工具。

1.介绍

移植后血供不足会导致巨大的移植物发生炎症坏死,导致临床使用失败率高[1].因此,血管生成对于骨形成进展是重要的,其中血液供应诱导骨组细胞的迁移和骨组织的矿化[23.].成骨和血管生成的不平衡会导致局部骨组织过度矿化或血管肿大[4].

多种内源性信号通路调控成骨和血管生成。Wnt信号通路正调控BMMSC的成骨,ALP和runt相关转录因子2 (Runx2)是成骨-血管生成下游的代表性因子[5- - - - - -7].丝裂原活化蛋白激酶(MAPK)信号通路通过靶向VEGF表达正调控血管生成[8- - - - - -10].然而,外源性的成骨和血管生成刺激剂会导致骨形成不平衡,导致过度的骨形成或血管渗漏,有发生肿瘤的风险[1112].因此,有必要通过潜在的、内源性的、平衡的刺激来增加骨生成和血管生成。

MicroRNA(miRNA)是一类大类的小型非编码的RNA,其作为基因表达的阻遏物在后颅调节水平上起作用。单一的miRNA通常涉及几个基因调节网络,其作为不同信令途径的检查点的作用[13- - - - - -15].因此,我们试图鉴定一个microRNA作为骨再生的成骨-血管生成耦合。从以前的报道来看,miR378、miR214和miR155在成骨和血管生成过程中都受到很大的影响。通过靶基因预测,选择miR378作为调节成骨和血管生成的关键因子。

2.方法

2.1.人骨髓基质细胞培养

原代人骨髓间充质干细胞如前所述分离[16].样本采集遵循西安交通大学附属3201医院伦理权威机构批准的方案。实验在捐赠者或受试者的理解和同意下进行,并声明负责的伦理委员会已经批准了实验。

首先,收集5例健康骨髓标本,年龄18 ~ 30岁,采用自体髂骨移植修复牙槽骨裂。取1 mL骨髓标本放入10 cm培养皿中,加入20 mLα.-MEM (Gibco BRL, Gaithersburg, MD)添加15% FBS (Gibco, BRL),然后在5% CO中孵育2, 37°C。实验使用3-5代细胞。

其次,使用荧光激活细胞分选(FACS)分析CD45、CD34、CD14、CD29、CD44、CD90和CD106 (R&D Systems, Inc.)。我们的实验使用了2-4代多菌落来源的hMSCs。

2.2.MC3T3文化

取4毫升α.-MEM完全培养基进入离心管,37°C预培养10分钟。从液氮中取出的低温保存的MC3T3细胞(ATCC, USA)在37°C水浴中迅速摇动并迅速重塑。将细胞转移到预热的培养基中,离心上清。适量的α.-MEM在37°C 5% CO下完全培养2孵化器。在第二天,将新鲜培养基更换并在37℃下孵育5%CO2孵化器。细胞用于实验3至5代。

2.3.内皮祖细胞的文化

取8毫升EGM-2MV(瑞士龙沙)培养基,在37°C水浴中加热。从液氮罐中取出rEPC (ATCC, USA),快速摇入37°C水浴中,快速摇匀细胞。取弃上清离心,加入适量新鲜培养基,37℃,5% CO2培养箱继续培养后每3天更换一次培养基。细胞用于实验3至5代。

2.4.转染

使用siPORT NeoFX转染剂(Ambion, Applied Biosystems, USA)转染miR-378模拟物、miR-378抑制剂或阴性对照(广东瑞博,中国),并遵循制造商的说明。简单地说,转染试剂被稀释α.-MEM (Gibco BRL),并与50 nM miR-378 mimic、100 nM miR-378 inhibitor或相同浓度的mir -阴性对照混合。室温孵育10 min后,分装到6孔板(Nunc)中。将BMMSC悬浮液以1 × 10的密度加入每个烧瓶中6细胞/ ml并在正常条件下培养。6小时转染后培养基被替换。在转染后在不同时间点(第2,7和14天)收获细胞,通过定量RT-PCR(QRT-PCR)分析RNA水平。将所有反应重复3次。

2.5。成骨分化

为了诱导成骨细胞分化,在达到80%汇合后,培养BMMSC和MC3T3细胞α.-mem补充了5%的FBS,100nm地塞米松,50 μ.g/mL抗坏血酸β-甘油磷酸14天。媒体每三天更换一次。钙累积通过2%茜素红染色检测,并通过1%茜素红溶解 毫升十二烷基硫酸钠溶液。十二烷基硫酸钠溶液与茜素红的光吸收读数为570 纳米,带微孔板读取器(Bio-TEK Instruments,威努斯基,VT,美国)。在7天和14天的成骨诱导后,细胞在4%多聚甲醛中固定20天后,在磷酸盐缓冲盐水(PBS)中洗涤两次 使用BCIP/NBT碱性磷酸酶显色试剂盒(Beyotime Co.,上海,中国)测定最小ALP染色。通过PCR检测成骨基因Runx2、ALP、骨钙素(OCN)、I型胶原(Col I)和骨唾液蛋白(BSP)的表达。

2.6。基底膜基质™血管造影术

BMMSC和EPC悬液培养至第三代,用于后续的Matrigel实验。将BMMSCs培养至第三代,然后通过miR-378模拟物、miR-378抑制剂或阴性对照转染BMRCs进行后续实验。

Matrigel [growth factor-reduced (GFR) Matrigel Matrix, BD, USA]置于冰箱中,在4°C冰箱中解冻过夜。在实验中,基质总是被放在冰箱里。加10μ.将基质凝胶滴入载玻片的每孔,盖上盖子,静置约30分钟后等待凝胶化。糊化后加入50μ.细胞悬液浓度为1 × 106细胞/mL至载玻片、盖子和支架的每一列,一段时间后,所有细胞将沉入基质凝胶表面。分析了分支数、分支长度、节点数、网格数和网格面积。

2.7。定量RT-PCR

BMMSCs在成骨培养基中培养并在14天的诱导中收获。通过BMMSCs中的QRT-PCR检查骨ucoperic标记基因(Runx2,AlP,BMP2和骨钙素)。用MiR-378模拟物转染BMMSCs,MiR-378抑制剂或阴性对照,MiR-378水平,Runx2,BMP2,OCN,VEGF,血管血素1(Ang1)和COL I后被BMMSCs均进行检查用miR-378模拟物,miR-378抑制剂或阴性对照转染。用Trizol试剂(Invitrogen,Carlsbad,Ca)分离出总细胞RNA。然后,将分离的RNA用作cDNA合成的模板,使用制备的上标II第一链cDNA合成试剂盒(Inverten Life Technologies,Carlsbad,CA)。根据制造商的协议进行实时PCR。引物列于表中1.每种样品重复三次QRT-PCR试验。


基因 序列

RUNX2 向前 5 -cccgtggccttcaaggt-3
反向 5 -CGTTACCCGCCATGACAGTA-3

OCN 向前 5 -CCCAGGCGCTACCTGTATCAA-3
反向 5 -GGTCAGCCAACTCGTCACAGTC-3

上校,我 向前 5 -CCAGAACTGGTACAGCAA-3
反向 5 -CGCCATACTCGAACTGGAATC-3

alp. 向前 5 -taaggacatcgcctaccagctc-3
反向 5 -TCTTCCAGGTGTCAACGAGGT-3

BSP 向前 5 -GATTTCCAGTTCAGGGCAGTAG-3
反向 5 -CCCAGTGTTGTAGCAGAAAGTG-3

VEGF. 向前 5 -TCGAGTCCGAGGGGGCCCAA-3
反向 5 -GAGCCAGGTCTCCCCGGCGTT-3

Ang1. 向前 5 -gatggtgatattgctggggct-3
反向 5 -GAGGAGCCTTTGTTGGAAG-3

Ang2. 向前 5 -TGGAACCATCTCCCGTTGA-3
反向 5 -AGACCAACAACAAAACGCCC-3

β-Actin. 向前 5 -tggcacccagcacaatgaa-3
反向 5 -CTAAGTCATAGTCCGCCTAGAGCA-3

2.8. 酶联免疫吸附试验(ELISA)

转染miR-378模拟物、miR-378抑制剂或阴性对照后,分析VEGF的分泌情况。骨髓间充质干细胞与α.-MEM (Gibco)培养6 h后,用添加5.0%血清替代品nu-Serum# (NuS, BD)的新鲜生长培养基替代培养基。分别在6 h、12 h、24 h、36 h、48 h和60 h采集样本。根据制造商说明书(R&D Corp.),采用ELISA法检测培养基中VEGF蛋白水平。用酶标仪(MTP-800Lab,日冕电晕公司,日本)在450 nm处测定吸光度。绘制标准曲线测定VEGF浓度。每个样品的所有测试都重复三次。这些值表示为ng/mL。

2.9。免疫印迹

在转染miR-378模拟物、miR-378抑制剂或阴性对照后,分析VEGF的表达。从三组细胞中提取总蛋白;采用WB法检测VEGF的表达水平。

2.10.统计分析

所有实验至少进行了三次。结果以平均值和标准偏差表示。统计分析(学生的t- 最低)已作为两个样本进行t测试。

3.结果

3.1.miR378参与骨髓间充质干细胞成骨

将bmmsc培养至P3,流式细胞仪分析细胞标记物。结果显示,bmmsc阳性表达CD29、CD44、CD90、CD106,阴性表达CD14、CD34、CD45(图)1).通过靶基因预测分析,预测miR378为Wnt和MAPK信号通路的交集。因此,我们选择miR378作为同时促进成骨和血管生成的调控因子。诱导14天后进行茜素红染色。与MC3T3相比,经成骨诱导的BMMSCs染色增强了3倍(图)2(一个)).在诱导成骨7 d和14 d后,采用qRTPCR分析成骨基因。结果表明,诱导7 d后,BMMSCs的ALP和Runx2表达增加到3 ~ 4倍,14 d后增加到2 ~ 3倍。此外,OCN表达在诱导7天后增强90倍,在诱导14天后增强140倍(图)2 (b)).同时,我们还测试了miR378水平。结果显示,诱导7 d和14 d后,miR378的表达量显著高于对照组(图3)2 (c)).

3.2.骨形成增加与miR378呈正相关

为了测试miR378对成骨的影响,我们用miR378模拟物转染bmmsc。miR378模拟物转染2天、7天和14天后,qRTPCR检测的miR378水平至少比对照增加了90倍(图)3(一个)).同时,采用qRTPCR检测成骨基因Runx2、BMP-2、ColI和OCN的表达。结果显示,与对照组相比,所有成骨基因表达均显著增加(图)3 (b)),特别是OCN的表达是对照组的60倍(图3 (b)).相反,转染miR378抑制剂2天、7天和14天后,miR378水平下降了4- 6倍(图)3(一个)).与对照组相比,成骨基因表达均下降2 - 5倍3 (b)).

在bmmsc中转染miR-378模拟物14天后,ALP和茜素红染色明显强于对照组。相反,在bmmsc中转染miR-378抑制剂14天后,ALP和茜素红染色明显弱于对照组(图)3 (c)).

3.3.计量分析

使用Matrigel进行BMMSC和EPC血管生成的计量分析。BMMSC对照组和EPC对照组无明显血管分支、淋巴结、网片。而BMMSC组和EPC血管组有明显的血管分支、节点和网片,且BMMSC血管组的分支、节点和网片数量明显高于EPC(图)4(a)).

为了检测miR-378对血管的影响,我们分别用miR-378模拟物、miR-378抑制剂和阴性对照转染BMMSC细胞。转染14天后,用基质凝胶检测分枝数、分枝数、节点数、网孔数和网孔面积。结果显示,转染miR-378 mimics后,分枝数量和分枝长度均显著高于阴性对照。节点数、网格数、网格面积均高于阴性对照组。相反,转染miR-378 inhibitor后,分支、分支、节点、网孔数、网孔面积均小于阴性对照组(图3)4(b)).

3.4.与miR378呈正相关的血管生成增加

与对照组相比,转染miR-378模拟物后2天、7天、14天,除成骨基因外,血管生成基因VEGF和ANG-1的表达也显著增加。在转染miR-378抑制剂2天、7天、14天后,VEGF和ANG-1的表达几乎下降了2倍(图)5(a)).

在BMMSCs中6小时,12小时,24小时,48小时和60小时转染MiR378 Mimics或抑制剂,ELISA测定VEGF分泌。结果表明,MiR378模拟转染后VEGF分泌显着大于对照。特别是在24小时模拟转染后,VEGF分泌达到峰值,比对照达到6倍。在BMMSCs中转染miR378抑制剂后,VEGF分泌显着低于对照(图5(b)).

转染miR-378模拟物、miR-378抑制剂或阴性对照后,用Western blot分析VEGF的表达。结果显示,miR-378 mimic组的表达水平明显高于阴性对照组,miR-378 inhibitor组的表达水平低于阴性对照组(图)6).

我们在体外通过miRNA378的过度表达促进BMMSCs中的成骨-血管生成偶联,并为骨再生提供了潜在的基因工具选择。

4。讨论

mirna被证明参与了几乎所有的代谢过程[14].因此,MiRNA被研究为靶向基因治疗部位。我们将MiR378鉴定为本文中的血管生成 - 成骨偶联。体外实验,血管生成和成骨发生在BMMSCs中MiR378正面调节。MiR378被认为是通过同时增加血管生成和骨质发生来促进骨骼的预期因素。

最近,越来越多的实验将重点放在骨开发/血管生成和miRNA功能上。据报道,MiR214抑制了osterix和毒病症中涉及的不同下游途径的骨质发生和血管生成分化[17- - - - - -20.].然而,负调控在促进组织再生方面的应用较少。一些研究人员发现miR566可以通过靶向Von Hippel-Lindau肿瘤抑制因子来调节血管生成[21]在体外,miR-29b被证明通过靶向几种骨形成抑制剂促进成骨细胞分化[2223].MiR17被认为负调控骨组织形成的成骨[2425]此外,miR26a被鉴定为调节骨生成和血管生成以促进骨再生[2627].在这项工作中,我们试图确定miR378作为骨再生的成骨-血管生成耦合的选择。

MiR378已被报告为各种细胞和有机代谢过程所涉及的关键因素。李发现miR378可以通过靶向sufu和fus-1表达来促进细胞存活,肿瘤生长和血管生成[28].据报道,通过靶向CASP3和激活PI3K / AKT信号传导途径,据报道MIR-378过表达衰减高葡萄糖抑制的成骨分化[29].为了验证miR378作为成骨-血管生成偶联,我们检测了成骨基因在成骨和骨形成中发挥重要作用的Runx2、OCN、ALP和BMP2等成骨基因标志物[561130.].转染miR378后,成骨标志物显著升高,表明过表达miR378的bmmsc具有更强的成骨能力。ALP和茜素红染色也证实了这一结论。

血管生成与血管生成生长因子的功能密切相关。VEGF被认为是促进血管内皮细胞增殖和成管最重要的因子[81112].血管紧张素对血管生成也是必要的。VEGF和ANG1/2 mRNA水平升高,表明过表达miRNA378的bmscs血管生成能力增强。

我们通过体外过表达miRNA378促进骨胳间充质干细胞的成骨和血管生成,为骨再生提供了一种潜在的基因工具。并确定进一步的体外给药系统和潜在的骨再生。

利益冲突

作者声明他们没有利益冲突。

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