在一些野生动物和牛在包奇州，尼日利亚口蹄疫病毒感染的血清

摘要

口蹄疫（FMD）是具有高发病率与牲畜全球毁灭性的后果既家养和野生的偶蹄动物的一种重要跨界病毒病。尽管口蹄疫尼日利亚的流行本质，鲜为人知的是，这种疾病在野生动物，家畜接口级的流行病学研究。为了弥补这一差距，2013年和2015年间采集血样一些野生动物和牛，分别为内和周围的Yankari禁猎区和苏木野生动物园在包奇州，尼日利亚。Wild animals were immobilized using a combination of etorphine hydrochloride (M99® Krüger-Med South Africa) at 0.5–2 mg/kg and azaperone (Stresnil®, Janssen Pharmaceuticals (Pty.) Ltd., South Africa) at 0.1 mg/kg using a Dan-Inject® rifle (Dan-Inject APS, Sellerup Skovvej, Denmark) fitted with a 3 ml dart syringe and for reversal, naltrexone (Trexonil® Kruger-Med South Africa) at 1.5 mg IM was used, and cattle were restrained by the owners for blood collection. Harvested sera from blood were screened for presence of antibodies against the foot and mouth disease virus (FMDV) using the PrioCHECK® 3ABC NSP ELISA kit, and positive samples were serotyped using solid-phase competitive ELISA, (IZSLER Brescia, Italy). Out of the 353 sera collected from cattle and wildlife 197 (65.7%) and 13 (24.5%) ( ）分别由FMDV-NS阻断ELISA抗体测试了正面对FMDV的高度保守的非结构蛋白3ABC。牛成品种和性别的分类显示，以FMDV检测抗体较高（ )在白色富拉尼157种牛(72.8%)中，红色Bororo 23种(39.7%)和Sokoto Gudali 17种牛(33.3%)中检测到的FMDV抗体高于雌性( )150人(72.8%)比男性47人(50.0%)。在野生动物中，在waterbucks 2(28.6%)、elephant 1(25.0%)、角马4(33.3%)和elands 6(25.0%)中检测到FMDV抗体。在水鹿、大象、牛羚和羚羊的3ABC阳性反应器中检测到四种FMDV血清型:O、A、sat1和sat2。结果显示，在一些野生动物和牛中存在FMDV抗体，并表明野生动物在尼日利亚口蹄疫的总体流行病学中同样发挥了重要作用。研究区应加强口蹄疫监测体系、控制和预防方案。

1.简介

口蹄疫(FMD)是世界上最重要的经济跨界动物疾病之一，由口蹄疫病毒(FMDV)引起，它是该属的一种口蹄疫属于小核糖核酸病毒家庭(1]。FMDV是一种小型的无包膜病毒，其基因组为8.5 kb，可编码结构蛋白(VP1、VP2、VP3和VP4)和非结构蛋白(NSPs) [2,3.]。结构蛋白产生抗体FMDV在接种疫苗的动物，而被感染的动物产生抗体既结构和非结构蛋白质[3.，并试验证明抗非结构蛋白抗体有可能将感染的动物与接种的动物区分开来[4- - - - - -7]。已知FMDV的7种免疫上不同的血清型:O、A、C、Asia-1和南非领土(SAT) 1、2和3，包括65种以上的亚型[8]。

FMDV在撒哈拉以南非洲地区的传播主要由两个流行病学周期驱动:一个是野生动物在维持疾病并将其传播给其他易感野生和/或家养反刍动物方面发挥了重要作用[9,10]。同时与所述第二周期中，所述病毒仅国内种群内发送，因此是独立的野生动物[11]。口蹄疫是目前还在非洲，中东，亚洲和欧洲的和有限的区域（小口袋/地区）发现，并已在野生动物和家畜的人口显著下跌在这些地区[贡献12- - - - - -15]。尼日利亚报告的第一例口蹄疫爆发是在1924年，被认为是O型病毒[16]。随后，其它血清型（A，SAT 1，和SAT 2）的报道[17- - - - - -22]和最近SAT 3血清型[23]。

尽管在尼日利亚每年FMD负担，口蹄疫感染血清流行病学和血清分型研究是不够的。口蹄疫发生在尼日利亚目前的趋势显示，目前经常爆发，可怜的控制措施，缺乏立法执法的指导疫情报告到兽医局[24,25]。抗体的口蹄疫病毒在几个野生物种的存在已被记录在不同的国家主要是非洲东部和南部地区的[进行的研究26- - - - - -28]。尼日利亚对野生动物的口蹄疫等传染病的监测有限。在尼日利亚包奇州的YGR和SWP，家畜有时确实与野生动物共享同一范围[29，而且人们担心野生动物可能会形成FMDV的宿主。因此，有必要了解野生动物作为FMDV蓄水池的潜在作用，以帮助设计和实施疾病管理项目。这项研究的目的是确定FMDV在野生动物和牛中的血清亲和力，并确定在尼日利亚Bauchi州的YGR和SWP野生动物中流行的FMDV血清型。

2。材料和方法

2.1。研究范围

研究地点是YGR和SWP在包奇州，尼日利亚（图1和2）。该YGR占地面积约2244平方公里的面积，这是超过50种哺乳动物和超过350种鸟类的重要避难所，这里是野生动物的自然栖息地保护在尼日利亚[剩下的几个领域之一三十,31]，野生动物，40平方公里的区域和港口的物种，包括黑斑羚，而SWP盖（Aepyceros melampus)、跳羚(Antidorcas marsupialis)、大羚羊(羚羊瞪羚），伊兰羚羊（旋角大羚羊属羚羊），斑马（雅科仕斑驴crawshayi），大于捻（Tragelaphus strepsiceros），蓝角马（Connochaetes taurinus)和长颈鹿(长颈鹿)和is located about 60 km north of the state capital, Bauchi [29]。

2.2。取样动物

野生动物样品包括象（非洲象)、非洲大羚羊(Kobus ellipsiprymus），和麋（Alcelaphus buselaphus caama)，由青社暨eland (旋角大羚羊属羚羊)、捻角羚(Tragelaphus strepsiceros)和蓝角马(Connochaetes taurinus）从SWP。牛是从位于YGR和SWP的边缘牛群采样。

2.3。样品采集

使用0.5-2 mg/kg的盐酸埃托芬(M99®kruinger - med南非)和azaperone (Stresnil®，Janssen Pharmaceuticals (Pty))将野生动物固定起来采集样本。使用Dan-Inject®步枪(丹麦Dan-Inject APS公司，Sellerup Skovvej)，从地面约25米远的地方将0.1 mg/kg的注射器注射到肌肉注射(IM)中。牛由牛主控制以采集样本。从每只动物的颈内静脉采集10毫升血液样本，并分发到空白真空瓶中。所有的样本都被装在一个带有冰袋的冷箱中运往包奇的国家兽医研究所实验室。血清标本从血液中提取，在1200 g的温度下旋转10分钟后放入低温瓶中，分成样品，标记，保存在- 20℃直到使用。

2.4。抗FMDV非结构蛋白的抗体检测（NSP的）通过ELISA

的ELISA按照制造商的说明（PRIOCHECK®FMD-3ABC NS蛋白ELISA）用于检测血清抗体FMDV非结构多肽3ABC的，其检测被感染的动物，不论其疫苗接种状态以及造成感染的FMDV血清型[执行32]。简单地说，80 μl的ELISA缓冲液和20μ测试血清的升加入到包被的抗原3ABC试验板。Negative, weak positive, and strong positive control sera were added to designated wells on each test plate, gently shaken, and incubated overnight (18 h) at 22°C. The plates were then emptied and washed six times with 200 μl洗涤液，100μ稀释的缀合物的升加入到所有孔中。试验板密封并在22℃温育一小时。然后将板用200洗涤六次 μl洗涤液，100μl的显色原(四甲基联苯胺)底物分配到板的所有孔中，在22℃下孵育20分钟，随后孵育100分钟μ将停止液加入所有孔中，轻轻混合。在分光光度计读数被Multiskan®ELISA读者(美国热科学)在450 nm,和所有样本的OD值450表示为抑制百分比(PI)相对于OD使用以下公式π= 100−450 max (OD 450测试样本/ OD450 max)×100。PI =≥50%的样本为FMD抗体阳性，而PI <50%的样本为FMD抗体阴性。由于3ABC ELISA检测FMD的特异性= 100%，>的敏感性为99%，因此以百分比患病率为真实患病率。

2.5。固相竞争性酶联免疫吸附法检测fmdv特异性抗体

使用固相竞争性ELISA (SPCE)对3ABC ELISA阳性血清样本进行分析，以检测血清型O、a、SAT 1和SAT 2的fmd特异性抗体[32,33]。使用抗体FMDV的ELISA试剂盒对血清型O，A，SAT 1和SAT 2由IZSLER生物技术实验室（意大利）生产的进行了测定。与FMDV预涂简言之，96个孔通过抗原血清型FMD O，A，SAT 1和SAT 2特异性MAb平底板用于捕获。在1/10，1/30，1/90和1/270血清四倍进行稀释。Without washing, the conjugate (horse-radish peroxidase) was added and incubated at room temperature for 1 h. The plate was washed, and the substrate/chromogen solution (tetramethylbenzidine) was added and kept in the dark for 20 min. The reaction was stopped by the addition of a stop solution, and the plates were read on a MultiSkan® spectrophotometer ELISA plate reader (Thermo Scientific, USA) at 450 nm wavelength. Serum endpoint titre was expressed as the highest dilution producing 50% inhibition, with serum having endpoint titre ≥50% being classified as positive for the specific FMD antibody.

获得的数据使用Graphpad Prism版本7.结果列于表，以百分比表示和积极性，性别，品种和年龄之间的关联的水平，并采用卡方推导动物物种进行了分析。值认为差异有统计学意义。

3.结果

在野生动物FMDV的总体血清阳性率为24.5％（表1）。在沃特伯克28.6％，观察到可检测的FMDV抗体，大象25.00％，角马33.3％，和羚羊25.0％

FMDV的在野生动物牛界面整体血清流行率的比较（表2）显示到FMDV可检测的抗体是显著更高（ )在牛比的野生动物24.0％，65.67％。

雌性牛的FMDV抗体明显高于雄性牛(P<0.05)，与其他检验牛品种相比，布那吉品种暴露FMDV的高风险因素(优势比>5)3.）。

到FMD血清型的可检测的抗体，羚羊，羚羊是对血清型O，A，SAT 1，和SAT 2，和羚羊，而抗体对血清型A和SAT 2在大象进行检测。每个A和SAT 1显示具有的18.87％最高反应器中的血清型的，而O型具有13.21％的至少反应器中（表4）。

4。讨论

这项研究的结果表明，抗体FMDV存在于牛（65.7％）和野生动物（24.5％）。这是与其中的75.11％一的血清阳性率据报道，牛在夸拉州[进行的一项研究在尼日利亚口蹄疫病毒抗体上一次调查的结果是一致的34]。此外，64.3％和70.98％血清流行率，分别报在高原州[开展的研究35,36而在尼日利亚边境州进行的一项研究中，这一比例为64.7%。21,37]。与以往的研究本研究的结果的相似性表明，口蹄疫仍然是在尼日利亚的地方性疾病，这可能归因于尼日利亚[缺乏FMD疫苗接种21,37]。牛群的流动性不受限制，不断的接触，不同的牛群在饮水点、公共放牧区和多孔的边界进行混合。

在本研究中，母牛FMDV的血清亲和力较高，这与其他研究者的研究结果一致[34,37在尼日利亚克拉州和高原州分别进行的FMDV研究中，报告了与性相关的风险差异。同样，有报道称，埃塞俄比亚西北部女性FMDV发病率较高[38]。然而，大多数研究过程中采样的牛人，而不是男性的女性。随性的血清阳性率的显著协会可以由女性保持一段较长的时间，从而有暴露的比男性[风险较高的游牧民族为生殖目的和产奶量，因此归属于偏爱女性对男性8,34,37]。在布那吉品种的牛中观察到显著的血清阳性关联，这可能是由于取样的其他品种(Sokoto Gudali和Red Bororo)数量较少。然而，所有品种的牛都面临同样的风险。

从研究结果已经表明，抗体FMDV存在于大羚羊，角马，水羚，和大象。这一发现是首开先河的研究区显示，口蹄疫可能是在尼日利亚的野生动物的问题。这并不奇怪，因为口蹄疫是在尼日利亚[流行18,20,23,39]。沿着Borgu，尼日尔州，尼日利亚，偶蹄类物种进来接触牲畜国家公园的野生动物种群的存在被证明是可能的暴露因素是促成该地区观察到的牲畜口蹄疫高血清阳性[37]。这项研究的结果与在南非、津巴布韦、赞比亚、博茨瓦纳、纳米比亚、印度、乍得和伊朗进行的野生动物中显示出FMDV抗体的其他研究相一致[10,11,28,40- - - - - -45]。在这项研究中观察到的水羚高FMDV流行反映了他们的生态和生活的生态系统是在东非和津巴布韦[其他的研究结果一致27,41,46]。这项研究迄今在包奇州，尼日利亚，经观察在很大程度上充分研究提供FMDV分布的图像野生动物[44]。

这项研究证实抗体的存在口蹄疫病毒血清型O，A，SAT 1和SAT 2的野生动物，这一发现是首次在包奇州，尼日利亚。影响西非的牲畜从2000年起疫情报告是由口蹄疫病毒类型O，A，和SAT 2引起的44]。同样，2010年至2016年，FMDV血清型O、A和sat2是尼日利亚报告的大多数家畜暴发的原因[22,34,39]。这里的结果表明，在野生动物中观察到的FMDV血清型在家畜中同样存在。野生动物FMDV血清型感染的可能来源可能是受感染的牲畜与同一环境中的野生动物相互作用。野生动物与牲畜之间传播FMDV，即使在偏远地区，也可能是由风媒感染或通过污染物传播[47,48]。野生动物经常在YGR [天然的“盐碱地”端点集合31]。同样，人工盐舔点也可在SWP。因此，在野生动物活动FMDV的传播在盐舔点是可能的。以前的研究已经表明，口蹄疫病毒可以很容易地在土壤中传播，并且可以在环境中持久存在很长一段时间[28]。

在野生动物口蹄疫病毒抗体和牛在这项研究中的存在可能通过野生动物，家畜界面直接接触，通过共享其观察到在包奇州，尼日利亚[在YGR共同活动和SWP水源和草场资源驱动29,31]。在旱季，研究区域的野生动物和牲畜确实会在饲料和水源密集聚集，从而增加了口蹄疫等水相关感染的传播可能性[13,41,44]。在埃塞俄比亚和津巴布韦进行的研究发现，接触过FMDV的牛与它们与野生动物的接触史有显著联系[11,48,49]。不幸的是，由于口蹄疫的尼日利亚特有本性爆发没有被调查，以确定的主要来源，因此，该病仍然是一个祸害畜牧生产的国家。

5.结论

观察到两个牛和一些野生动物口蹄疫病毒抗体的存在。另外，FMDV的四种血清型：观察到在研究区域一些野生物种中的第一时间以前在尼日利亚牛检测O，A，SAT 1，和SAT 2。该研究强调FMD的不断蔓延的含义，由于获取资源像水和研究区的野生动物和家畜放牧共享领域。这是畜牧生产和野生动物保护目标的威胁，因此有必要进行调整牲畜和野生动物或管理实践，这将减少在野生动物和家畜接触疾病传播的频率。进一步的研究还需要隔离，并从研究区的野生和家养动物表征口蹄疫流行的病毒。

数据可用性

所有相关数据均包括在表格内，如有需要，将会提供相应的额外数据。

利益冲突

作者声明没有利益冲突。

致谢

笔者想感谢野生动物捕获队和流浪者的比赛从Yankari禁猎区和苏木野生动物园在包奇州，尼日利亚，他们的样本采集过程中的合作与支持。

参考

1. C. C.布朗和B. D.斯朗宁，《外来动物疾病的影响和风险》，杂志美国兽医协会第208卷，no。1996年，第1038-1040页。视图:谷歌学术搜索
2. e·e·弗莱，d·i·斯图亚特，d·j·罗兰兹，《口蹄疫病毒的结构》，微生物学和免疫学的当前主题卷。288，没有。288，第71-101，2005年。视图:出版商网站|谷歌学术搜索
3. M.优素福，K. Mazloum和H. AlNakhli，“骆驼野骆驼单峰骆驼自然接触到手足口病病毒的血清学证据。”兽医世界第5卷，no。4，第197-200页，2012。视图:出版商网站|谷歌学术搜索
4. H.-G。，“用非结构性病毒蛋白的抗体鉴别接种牛的口蹄疫病毒复制，”疫苗，第8卷，no。1990年，第213-216页。视图:出版商网站|谷歌学术搜索
5. A. Rodriguez, J. Dopazo, J. C. Saiz, F. Sobrino，“口蹄疫病毒非结构蛋白的免疫原性;感染猪和接种疫苗猪的区别"存档的病毒学卷。136，没有。1-2，第123-131，1994。视图:出版商网站|谷歌学术搜索
6. M. De Diego, E. Brocchi, D. Mackay, F. De Simone，“作为ELISA诊断抗原的口蹄疫病毒的非结构多蛋白3ABC，从接种的牛中区分感染档案病毒学卷。142，没有。10，第2021至2033年，1997。视图:出版商网站|谷歌学术搜索
7. A. Clavijo的，P. Wright和P. Kitching，“在对手足口病接种疫苗感染鉴别诊断技术的发展，”兽医杂志卷。167，没有。1，第9-22，2004年。视图:出版商网站|谷歌学术搜索
8. N. Longjam，R.德布，A. Sarmah，T.大冶，五Awachat和V. Saxena先生，“牲畜的手足口病的诊断简要回顾：传统的分子工具。”兽医国际，第12卷，第123-129页，2011年。视图:谷歌学术搜索
9. P.达维，F.那根，R. Madekurozwa等人，“从非洲水牛手足口病病毒的自然传播（Syncerus caf)在津巴布韦野生动物保护区的牛，"兽医记录第134卷第2期1994年，230 - 232,10页。视图:出版商网站|谷歌学术搜索
10. A. D. S.巴斯托斯，C. I. Boshoff，D. F. Keet，R. G. Bengis和G. R.汤姆森，“非洲水牛（Syncerus caffer）和黑斑羚之间的手足口病病毒的自然传播（Aepyceros melampus)在南非克鲁格国家公园，”流行病学和感染卷。124，没有。3，第591-598，2000。视图:出版商网站|谷歌学术搜索
11. E. Miguel, V. Grosbois, A. Caron等，"非洲野生牛与家牛的接触和口蹄疫传播"生态圈卷。4，没有。4，第1-32，2013。视图:出版商网站|谷歌学术搜索
12. P. Daszak, A. A. Cunningham, A. D. Hyatt，《新兴的野生动物传染病对生物多样性和人类健康的威胁》，科学卷。287，没有。5452，第443-449，2000。视图:出版商网站|谷歌学术搜索
13. R. G. Bengis, F. A. Leighton, J. R. Fischer, M. Artois, T. Morner, C. M. Tate，“野生动物在出现和再次出现的人兽共患病中的作用，”科学技术办公室-国际卫生办公室第23卷，no。2，第497-511页，2004。视图:谷歌学术搜索
14. A. B. Pedersen, K. E. Jones, C. L. Nunn, S. Altizer，“野生哺乳动物的传染病与灭绝风险”，保护生物学第21卷，no。2007年，第1269-1279页。视图:出版商网站|谷歌学术搜索
15. m.j. Smith, S. Telfer, E. R. Kallio等，“野生动物中宿主-病原体时间序列数据支持密度和频率依赖之间的传播函数，”美国国家科学院院刊第106卷，no。19，第7905-7909页，2009。视图:出版商网站|谷歌学术搜索
16. J. Libeau，《撒哈拉以南非洲的口蹄疫现状》，在非洲兽疫的公告，第8卷，第90-104页，1960年。视图:谷歌学术搜索
17. D. R. Nawathe和M.天鹅，“脚在尼日利亚口病，”动物卫生和生产在非洲的公告卷。24，没有。24，第1-4页，1976年。视图:谷歌学术搜索
18. B. Owolodun，“在尼日利亚手足口病和病毒类型分布，”非洲兽疫的公告，第12卷第1-9页，1971年。视图:谷歌学术搜索
19. A. Durojaiye， " 1967-1981年尼日利亚奥约州口蹄疫发病率，"尼日利亚兽医杂志卷。10，第7-13，1981。视图:谷歌学术搜索
20. “最近从尼日利亚分离出的口腔病病毒与来自非洲地区的标准疫苗病毒株之间的关系”，国立卫生研究院在非洲动物的病毒病，O.威廉姆斯和W. N. Masiga编，非统组织/ STRC，拉各斯，尼日利亚，1988年。视图:谷歌学术搜索
21. D. D.拉撒路，W. J. G. Schielen，Y. S. Wungak，D. Y. Kwange和F. O. Fasina，“在尼日利亚的一些边境各州手足口病的血清流行病学”非洲中华微生物学研究第6卷，no。8，第1756至1761年，2012。视图:出版商网站|谷歌学术搜索
22. H. G. Ularamu, J. O. Ibu, B. A. Wood等，" 2007年至2014年在尼日利亚收集的口蹄疫病毒特征:西非和东非之间流行病学联系的证据，"跨界和新出现的疾病卷。64，没有。6，第1867至1876年，2017年。视图:出版商网站|谷歌学术搜索
23. D. O. Ehizibolo, A. Haegeman, A. R. De Vleeschauwer等人，" 2013-2015年尼日利亚北部一些州暴发口口病病毒的检测和分子表征，"跨界和新出现的疾病卷。64，没有。6，第1979年至1990年，2017年。视图:出版商网站|谷歌学术搜索
24. D. D. Lazarus, Y. S. Wungak, M. I. Adah等人，“尼日利亚商业奶牛对灭活口蹄疫疫苗(o & A型)的血清学反应，”亚洲医学和生物研究，第1卷，no。2，第163-168，2015。视图:出版商网站|谷歌学术搜索
25. F. Vandenbussche, E. Mathijs, H. G. Ularamu等，“2013年至2015年从尼日利亚牛分离出的五种甲型血清型口蹄疫病毒的全基因组序列，”基因组公告第6卷，no。7、文章ID e00039-18, 2018。视图:出版商网站|谷歌学术搜索
26. E. S. Williams, T. Yuill, M. Artois, J. Fischer, S. A. Haigh，《野生动物的新发传染病》，科学和技术第21卷，no。1，第139-157，2002。视图:出版商网站|谷歌学术搜索
27. B. M. D. C. Bronsvoort，S. Parida，I.亨德尔等人，“用于在野生动物手足口病病毒在东非和的非结构蛋白的酶联免疫吸附测定法对水牛的测试参数估计血清学调查，”临床和疫苗免疫学第15卷第2期6，第1003-1011，2008。视图:出版商网站|谷歌学术搜索
28. W.沃斯卢，P. N.汤普森B.博塔，R. G. Bengis和G. R.汤姆森，“纵向研究，调查黑斑羚的作用（Aepyceros melampus)在南非克鲁格国家公园的口蹄疫防治工作中，跨界和新出现的疾病第56卷，no。1-2，第18-30页，2009年。视图:出版商网站|谷歌学术搜索
29. Y. Atuman, Y. Adawa, A. Solomon, P. Mshelbwala, A. Ogunkoya，“在尼日利亚的Bauchi州，狂犬病从明显健康的狗蔓延到野生动物的潜在风险，”兽医进展杂志卷。4，没有。4，第493-498，2014。视图:出版商网站|谷歌学术搜索
30. S. S. Odunlami和B.湖，“扬卡里国家公园的生态旅游潜力的评估，尼日利亚，”生态俱乐部。通讯用纸系列Nr国际生态旅游俱乐部，华盛顿特区，美国，2003年。视图:谷歌学术搜索
31. P. Omondi, R. Mayienda, J. H. Mshelbwala, M. S. Massalatchi，“尼日利亚Yankari生态系统中大象、水牛、罗安羚羊和其他野生动物的空中总数”，科技代表，第78-102页，2006年，技术报告，引用肯尼亚内罗毕的MIKE。视图:谷歌学术搜索
32. H. G. Ularamu, J. O. Ibu, J. N. Abenga等，"提高尼日利亚口蹄疫诊断和控制的实验室能力，促进可持续牲畜生产，"兽医科学杂志卷。12，第1-10页，2017年。视图:谷歌学术搜索
33. G.Chénard，K. Miedema，P. Moonen，R. S.斯赫雷弗，和A.德克尔，“A固相阻断ELISA检测适合于大量血清学O型手足口病病毒的抗体，”病毒学方法杂志，第107卷，no。1，第89-98页，2003。视图:出版商网站|谷歌学术搜索
34. O. Olabode，H. Kazeem，M的Raji和N.易卜拉欣，“在贸易牛口蹄疫病毒抗体血清阳性率的（Bos indicus）在尼日利亚夸拉的状态，”兽医世界第6卷，no。10，第1-9，2013。视图:出版商网站|谷歌学术搜索
35. D. O. Ehizibolo，一Ajogi，J. U. Umoh等人，“手足口病的血清学调查使用（FMD）的3D非结构蛋白从高原州，尼日利亚相关（VIA）抗原测定在家畜病毒感染，”在尼日利亚兽医医学会第47届年度大会的会议记录，第75页，贝努埃，尼日利亚，2010年。视图:谷歌学术搜索
36. Y. S. Wungak，一O. Olabisi，B. O. Olugasa，D. D.拉撒路，和H. G. Ularamu，“口蹄疫（FMD）在北部高原，尼日利亚久坐牛中的感染率，”亚洲医学和生物研究，第1卷，no。2，第169-174页，2015年。视图:出版商网站|谷歌学术搜索
37. Y. S. Wungak，B. O. Olugasa，O. O. Ishola，D.D。拉扎勒斯，和G. H. Ularamu“与牛血清阳性的在北部和中部相关联足口病（FMD）的患病率和暴露因素，尼日利亚，”非洲生物技术杂志第15卷第2期24，第1224-1232页，2016。视图:出版商网站|谷歌学术搜索
38. H. Mazengia, M. Taye, H. Negussie, S. Alemu和A. Tassew， "埃塞俄比亚西北部Andassa奶牛场口蹄疫的发病率及其对奶牛产奶量的影响，"农业与生物期刊北美，第1卷，no。5，第969-973页，2010。视图:出版商网站|谷歌学术搜索
39. A. Chukwuedo和L. Nimzing，“口蹄疫（FMD）病毒感染在尼日利亚北部各州牛的实地调查，”尼日利亚生物工程杂志，第24卷，2012年第22-31页。视图:谷歌学术搜索
40. J. J. Esterhuysen, G. R. Thomson, J. R.易燃物和R. G. Bengis， "在Natal游戏公园的水牛没有显示出感染口蹄疫病毒的血清学证据，"兽医研究杂志卷。52，没有。2，第63-66，1985。视图:谷歌学术搜索
41. P. Sutmoller，G. R.汤姆森，S. K.哈格里夫斯，C. M. Foggin和E. C.安德森，“野生动物保留地给养牛业津巴布韦内的非洲水牛带来的手足口病的风险，”预防兽医学卷。44，没有。1-2，第43-60，2000。视图:出版商网站|谷歌学术搜索
42. G. R.汤姆森，W.沃斯卢和A. D. S.巴斯托斯，“脚和野生动物口病，”病毒的研究第91卷第1期1, 145-161页，2003年。视图:出版商网站|谷歌学术搜索
43. w·Vosloo L.-M。De Klerk, C. I. Boshoff等人，"圈养非洲水牛的SAT-1口蹄疫爆发的特征(Syncerus caf):疫情分离株的临床症状、遗传特征和系统发育比较"兽医微生物学卷。120，没有。3-4，第226-240，2007。视图:出版商网站|谷歌学术搜索
44. A.迪纳尔多，G. Libeau，B. Chardonnet等人，“在西部和中部非洲的野生动物种群特别提到Syncerus caffer亚种手足口病的血清学概况”兽医研究第46卷，no。1，第77-93页，2015。视图:出版商网站|谷歌学术搜索
45. F. Hemmatzadeh，W.博德曼，答Alinejad，A Hematzade和M. K. Moghadam先生，“分子和在伊朗自由放养的野生反刍动物选择病毒血清学调查，”公共科学图书馆·一第11卷，no。12，文章ID e0168756, 2016。视图:出版商网站|谷歌学术搜索
46. G.五韦弗，J.多梅内克，A. R. Thiermann和W. B. Karesh，“手足口病：从狂野的一面看，”野生动物疾病杂志卷。49，没有。4，第759-785，2013。视图:出版商网站|谷歌学术搜索
47. S. Alexandersen, Z. Zhang, A. I. Donaldson，“口蹄疫病毒在动物中持续存在的方面——带菌者问题，”微生物与感染卷。4，没有。10，第1099至1110年，2002年。视图:出版商网站|谷歌学术搜索
48. S. Bolortsetseg, S. Enkhtuvshin, D. Nyamsuren等，"蒙古瞪羚口蹄疫血清检测(Procapra gutturosa）和蒙古东部草原畜牧业”野生动物疾病杂志卷。48，没有。1期，第33-38，2012。视图:出版商网站|谷歌学术搜索
49. B.莫拉，G. Ayelet，Y.阿斯富，Y.贾布里勒，G甘加和E. Gelaye，“在牛手足口病的流行病学研究：在南奥莫地区，南 - 血清阳性率和风险因素评估西方埃塞俄比亚，”跨界和新出现的疾病卷。57，没有。5，第340-347，2010。视图:出版商网站|谷歌学术搜索

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