文摘

被确认为一个sponge-associated细菌Psychrobactersp.在这项研究中,发现高活动对底栖硅藻生物膜的形成,包括双耳瓶sp。Nitzschia梭形藻属,Nitzschia斋期早餐,Stauroneissp。活动对硅藻生物膜形成的应变测试证实主要是在文化上层清液和可以使用有机溶剂提取。治疗以其浮在表面的粗提取液的细胞明显减少Stauroneissp.形成生物膜,稍微增加了细胞漂浮在培养基,导致生物膜细胞/漂浮细胞改变的比率从0.736到0.414(控制治疗。使用浮在表面的粗提取液导致增加生产由硅藻细胞外高分子物质(系统)Stauroneissp.从16.66到41.59 (g / g细胞干重)。EPS生产的增加主要是由可溶性EPS (SL-EPS),紧随其后的是每股收益紧密地绑定到生物膜细胞(BF-TB-EPS)。此外,浮在表面的粗提取液造成重大的EPS的单糖组成的变化Stauroneissp。具体来说,葡萄糖醛酸(Glc-A)和N-acetyl-D-glucosamine (Glc-NAc) BF-TB-EPS褶皱增加褶皱减少55%和1219%,分别。根据我们的研究结果,我们建议这些单糖组成的变化可能导致生物膜的形成硅藻的效率下降。

1。介绍

船舶船体藻类和细菌生物膜的生物淤积和较大的生物,例如,藤壶、贻贝(macrofouling),在世界范围内造成巨大的经济损失(1]。除了增加阻力和减少船舶速度8 - 21%,生物膜在船体也为诱导后续macrofouling贡献(2]。每个表面都是沉浸在海水迅速成为不可避免的生物膜覆盖着。然而,生物膜的形成是一个复杂的多级过程和尚未彻底调查3]。生物膜的微生物群落通常主要由硅藻在透光海洋栖息地(4- - - - - -6]。底栖硅藻,形成生物膜的能力即使在最耐污垢表面,起到关键作用的生物膜发展(7]。因此,中断的硅藻生物膜的形成是一个重要的和具有挑战性的一步解决生物淤积问题8,9]。

能光合自养的生物膜是由细胞内嵌在细胞外的高分子物质(系统)10]。海洋底栖硅藻分泌大量的系统到周围环境中,约30 - 60%的photoassimilated碳(11,12]。这些系统主要是由碳水化合物和蛋白质和硅藻的生命中扮演不同的角色。每股收益可以作为对化学物质扩散障碍,物理压力,脱水,食肉动物吃草。每股收益也会导致保留的胞外酶或细胞代谢和营养封存从水生环境。每股收益也促进了化合物的吸附,细胞间的沟通,形成一个个独立王国11,13,14]。此外,EPS作为一种粘合剂,主要是利用底栖硅藻聚合和扣人心弦的基质,也是参与运动性系统和下层粘附的硅藻(15- - - - - -17]。因此,提出EPS硅藻细胞生物膜形成的一个关键组件下面的下层水(16]。

在海洋环境中,海绵一般fouling-free由于其化学防御污损生物(18,19]。许多天然化合物被分离从海绵和发现类似微生物。此外,其中一些被证实sponge-associated微生物产生的微生物(20.]。强大的抗菌和防污活动,包括对生物膜的形成和抑制幼虫结算等典型的污损生物水螅虫线虫或Amphibalanus安菲特律特,被发现在sponge-associated细菌的代谢产物(9,18,19,21- - - - - -28]。然而,很少有研究代谢产物的活性菌株如何影响硅藻生物膜形成和治疗是否与这些代谢物引起硅藻报告每股收益的变化。目前,活性天然产物对硅藻sponge-associated细菌生物膜的形成尚未充分研究[29日]。

我们以往的研究强调了强烈活动对生物膜的形成一些硅藻种类的粗提取物的整个文化sponge-associated细菌(29日,30.]。其中测试硅藻、底栖硅藻Stauroneissp.被用作生物模型在这项研究中,因为它滑翔机制和单糖组成的EPS非常清晰31日,32]。在目前的研究中,我们发现另一个活跃sponge-associated应变和想澄清几个问题:(1)部分粗提取物活性细菌培养负责活动对硅藻生物膜的形成,(2)是否积极应变抑制硅藻生物膜的形成通过改变细胞分布在生物膜和浮游阶段而不是通过减少细胞总生物量在整个文化,和(3)关联响应是否与穷人EPS生产或成分发生生物膜的形成硅藻治疗积极应变时的效率。

2。材料和方法

2.1。细菌培养

Sponge-associated细菌最初收集的圣胡安岛,华盛顿。收集、分离和纯化菌株是由沿海海洋实验室在香港科技大学(科大)如前所述33]。ust050418 - 708菌株之一是为本研究选择因为我们发现它可以主动对硅藻生物膜的形成29日]。

股票文化应变ust050418 - 708是存储在海洋科学和技术研究所,扬州大学。股票的解决方案(1毫升)接种10毫升peptone-yeast提取介质(py介质,含有0.3%蛋白胨酵母提取物和0.5%在人工海水(ASW)和孵化大约两天指数期23°C用颤抖的120 rpm。对数生长期的细菌培养接种在500毫升的py介质和孵化了三天的固定相在相同条件下,用于提取制备(29日]。

2.2。菌株鉴定

应变ust050418 - 708的基因组DNA提取,及其16 s rDNA被Sangon放大和测序生物科技(上海)有限公司,有限公司,被金等。29日]。获得的序列提交基因库。压力被确定通过对比提交序列与基因库中可用的数据库。相似的序列对齐使用多个大型序列比对程序。差距和带有歧义的位置被排除在系统发育分析。系统发育分析使用neighbour-joining方法被李et al。34]。

2.3。从细菌中提取制备的文化

原油从细菌中提取收集文化被金等。29日]。详细的提取溶剂乙酸乙酯(EA):丙酮= 95:5 (v / v)添加比例的提取溶剂:细菌培养= 1:1 (v / v)和1 h大力动摇了。地位和分层后,有机相分离和干在旋转蒸发器(37°C)获得整个文化粗提取液。上层清液制备的粗提取液,细菌细胞被离心分离培养基(5880×g 20分钟15°C),然后上层清液是用相同的提取溶剂和提取过程如上所述。每个粗提物溶解在二甲亚砜(DMSO)随后的生物。

2.4。硅藻文化

四个底栖硅藻,双耳瓶sp。Nitzschia梭形藻属,Nitzschia斋期早餐,Stauroneissp,得到从海水养殖的重点实验室,教育部,中国海洋大学。

硅藻是培养金等的方法。29日]。在细节,ASW-based Guillardf/ 2培养基(35),和文化条件23°C, 100μ摩尔光子米⁻²·年代⁻¹照明,光:黑暗= 12 h: 12 h周期了。硅藻电影收集前化验停牌和反潜战洗两次,调整到1×10左右⁵细胞·毫升⁻¹在反潜战,硅藻生物膜形成后化验使用。

2.5。使用原油提取硅藻生物膜形成化验

硅藻生物膜形成的粗提取物进行化验24-well聚苯乙烯板(353047年,实验室的器具正欲)描述的方法由金et al。29日]。藻悬挂在反潜战(1毫升)和粗提物溶解在DMSO (50μl)被添加到每个盘子里要达到100年的最终浓度μg·毫升⁻¹的粗提物。控制井1毫升的藻类悬挂在反潜战μl DMSO被包括在内。24 h后孵化在上述硅藻文化条件,漂浮的细胞被移液和生物膜细胞然后计算使用一个倒置显微镜(尼康ECLIPSE TS 100)。一式三份都是为每一个治疗和控制。抑制率(R)表示为每个样本的百分比:R(%)= 1−(生物膜细胞治疗的数量)/(平均生物膜细胞数量的控制)(29日,36]。

2.6。硅藻生物膜的形成分析使用不同的部分细菌培养

检查可能的营养活细菌细胞之间的竞争和硅藻、底栖硅藻Stauroneissp.被用在这个实验。硅藻Stauroneissp.在光学和电子显微镜图所示1。生物前,暂停的密度Stauroneissp.调整使用血细胞计数器1×10⁵细胞·毫升⁻¹。细菌分离收集从固定相在py媒介文化72 h后孵化项目23°C和120 rpm。收集到的细菌培养是离心机(20分钟、5880×g和15°C)。上层清液的收集和用作生物测定的“上层清液”。颗粒是resuspended同样体积的新鲜py介质和作为生物测定的“细胞”。

进行了化验24-well聚苯乙烯板(353047年,正欲实验室的器具)使用两个体积比率(细菌:硅藻体积比率3:7和5:5)。比时3:7,每个包含0.7毫升的藻悬挂f/ 2介质和0.3毫升的上层清液或细胞的细菌能整除。比率时5:5,混合物在每个由0.5毫升的藻类悬挂和0.5毫升的细菌能整除。的总量的比率是1毫升,和控制包含0.3或0.5毫升的消毒py媒介而不是细菌整除。盘子被孵化24小时在同一硅藻上面提到的文化条件。井中的内容被轻轻移液,洗了藻细胞仍然附在底部的井数,和抑制率(R)计算后上面描述的方法(29日,36]。

2.7。治疗使用细菌上层清液原油提取硅藻生长

的底栖硅藻Stauroneissp.被用在这个实验。硅藻是培养在2 l锥形烧瓶。每个包含1500毫升瓶刚接种的Stauroneissp.细胞密度为1×10⁵细胞·毫升⁻¹在消毒f/ 2的媒介。细菌浮在表面的粗提物溶解在DMSO溶液在150年添加到最终的浓度μg·毫升⁻¹在DMSO含量0.5% (v / v)。控制包括0.5% (v / v) DMSO溶液。一式三份的玻璃瓶的治疗和控制孵化了39天23°C, 100μ摩尔光子米⁻²·年代⁻¹和一个12 h: 12 h:暗周期。

2.8。EPS准备从硅藻生长在细菌的存在浮在表面的粗提物

EPS分离程序暂停分数(细胞漂浮在媒体)和生物膜分数(细胞内生物膜附着在烧瓶底部)进行描述的徐et al。37]。完成孵化后,所有的玻璃瓶都摇动了瓶在70转10分钟。暂停部分是仔细倾析,摇晃后收集。然后,反潜战被添加到烧瓶,硅藻细胞生物膜挠下来很仔细,暂停。EPS分馏的详细方法,细胞密度检测和细胞干重测量如下。

硅藻的悬挂分数文化震动后细胞密度计算使用血细胞计数器在显微镜下然后在1707 g×20分钟离心机分离硅藻细胞和上层清液。悬架部分的上层清液收集测量可溶性EPS (SL-EPS),也就是说,EPS分数可以被柔软的扰动。丸resuspended在反潜战一夜之间和加热40°C紧随其后三洗反潜战,在1707×g离心20分钟。的反潜战洗收集测量EPS紧密地绑定到漂浮细胞(F-TB-EPS),最后一个球被放置在一个烤箱和加热到100°C恒重测量悬浮细胞的质量。

硅藻生物膜分数的文化、细胞悬浮在同样体积的反潜战与原始文化的剧烈颤抖,和显微镜下细胞密度使用血细胞计数器。在1707×g离心20分钟后,上层清液收集测量EPS松散绑定到生物膜细胞(BF-LB-EPS)。和颗粒治疗一样,F-TB-EPS和上层清液收集测量EPS紧密地绑定到生物膜细胞(BF-TB-EPS)。最后一个球被加热在100°C,直至恒重测量细胞生物膜的重量。

所有的EPS分数样本与三倍数量的乙醇沉淀。解决了冰箱里过夜(4°C) [38]。最终沉淀被离心收集,清洗三次2倍量的丙酮和二氯甲烷随后获取原油每股收益。原油EPS在氮气流干,称重,并存储在−20°C。deproteination后使用Sevag方法并使用透析脱盐(3.5 kDa),纯化每股收益是通过旋转蒸发和冷冻干燥法测定单糖成分(39]。

2.9。在EPS测定单糖成分

单糖组成的系统使用高效液相色谱法(HPLC)测定与1-phenyl-3-methyl-5-pyrazolone衍生化后(PMP) [40]。作为标准,使用11个单糖:甘露糖(人),葡萄糖醛酸(Glc-A),N-acetyl-D-glucosamine (Glc-NAc)、木糖(Xyl),半乳糖(加)、树胶醛醣(Ara),海藻糖(Fuc)、葡萄糖(相关),半乳糖醛酸(Gal-A),鼠李糖(Rha)和氨基葡萄糖盐酸盐(GlcN)。高效液相色谱系统(L2000、日立、日本)配备了二极管阵列检测器(爸爸,l - 2455、日立、日本)安装在串联的出口列(LaChrom, ODS C₁₈,5µ米,4.6毫米×250毫米,日立、日本)和安装一个ODS precolumn。使用的溶剂是甲醇和83% 17%的氢氧化phosphate-sodium二氢钾缓冲溶液(0.1米,pH值8.6)以固定流量0.7毫升·敏⁻¹在25°C。10卷µl的样本注入列使用autosampler (l - 2200、日立、日本)和紫外吸收λ= 245海里被检测到。高效液相色谱法分析每个样本至少进行两次。

数据分析方法的杨et al。41)来确定每个样本的单糖比例。修正因素(f_1/2)和摩尔比率(R_1/2每两个单糖(之间)1)和(2))计算使用以下方程,分别为: 在哪里和和和是两个单糖成分的峰面积和重量的标准解决方案,分别和和峰值区域的组件单糖测试样品(41]。

的内容的一个确定单糖(X)设置为1,和其他单糖的摩尔含量计算的基础上f_1/2和R_1/2X和每个人之间。每个单糖的摩尔百分比计算的摩尔含量除以摩尔含量之和确定单糖。

硅藻被上层清液的粗提物的活性菌株,为每个单糖的振幅变化(%)的每股收益计算分数之间的变异(摩尔百分比)的治疗和控制除以摩尔百分比的控制。

2.10。统计分析

所有计算都是执行至少一式三份样品。统计分析进行了使用IBM SPSS统计22。处理间的差异在每个实验中使用独立的比较t以及或单向方差分析(方差分析)其次是迷幻药测试,阈值为0.01的意义。

3所示。结果

3.1。识别积极应变

提取基因组DNA的应变ust050418 - 708,和16 s rDNA PCR扩增和测序。接近完成16 s rRNA基因序列的应变ust050418 - 708(1431个基点),报基因库中获得加入数量(MF179520)。比较分析16 s rRNA的基因序列与序列存入基因库使用爆炸表明,菌株属于属Psychrobacter和具有极高的相似度(100%)Psychrobacter glacincola(图2)。因此,被确认为Psychrobacter基于16 s rDNA sp.序列。

3.2。活动对硅藻生物膜形成的粗提取液细菌培养

整个文化的粗提取液中使用的应变测试准备和硅藻附件化验。在100年的浓度μg·毫升⁻¹,粗提物从整个文化都很高的活动对硅藻生物膜的形成和抑制四个硅藻物种从附加到24-well盘子的底部与抑制率(R(图)高于90%3)。为n .梭形藻属和Stauroneissp,抑制率都超过了98%。

3.3。活动对硅藻生物膜的形成通过细菌培养的各个部分

因为整个文化提取测试压力抑制硅藻生物膜的形成与效率很高,细菌培养的上清液和细胞(不含开采)被用于硅藻生物膜的形成化验。不管使用的细菌和硅藻之间的比率是3:7、5:5,两个分数的细菌对硅藻生物膜的形成(图文化展示活动4)。在所有治疗,浮层显示最高的活动对硅藻生物膜的形成R= 95%,细菌和藻类之间的比率是3:7(图4)。比例时调整到5:5,浮在表面的分数高活动与维护R= 93%。因此,浮在表面的应变测试拥有更高的活动对硅藻比细胞生物膜的形成。统计分析表明,浮层显示活动显著高于细胞,这比率(细菌:硅藻)的变化显著影响细胞的活动,而不是浮在表面的。

3.4。影响细菌浮在表面的粗提物对硅藻的生长和生物膜的形成

自上层清液细菌培养最有效的部分,一个浮在表面的粗提物制备和用于治疗日益增长的硅藻Stauroneissp。干细胞的总重量和细胞密度对整个文化对待硅藻显示轻微减少从0.578克到0.504 g(比例12.8%)和从9.557×10⁵毫升⁻¹8.409×10⁵毫升⁻¹(比例为12.0%),分别为(表1)。重要的是,生物膜的干电池重量分数显著减少0.245克(控制)0.147克(治疗)的比例减少40.0%。同时,悬挂的干电池重量分数略有增加7.2%(从0.333克到0.357 g)无显著差异。

在细胞密度的情况下,类似的观察趋势的干电池的重量。生物膜的细胞密度(被resuspending)从4.091×10减少37.0%⁵毫升⁻¹在控制2.577×10⁵毫升⁻¹治疗,而文化悬浮的细胞密度增加了6.7%从5.466×10⁵毫升⁻¹5.833×10⁵毫升⁻¹没有显著差异。的减少和细胞干重和细胞密度的治疗细菌浮在表面的粗提取液被显著减少了生物膜分数。

在整个文化的硅藻,42%的硅藻细胞(细胞干重)的形成的生物膜控制。治疗浮在表面的粗提取液的测试压力显著降低生物膜细胞的比例为29%,而悬浮细胞的比例从58%上升到71%。因此,生物膜细胞/浮动的比率从0.736下降到0.414。数据描述的细胞密度、一致的结果发生。由于干电池重量和细胞密度之间的相关性好,随后的结果表达的干电池重量。

3.5。影响细菌浮在表面的粗提物对每股收益增长的硅藻的生产

硅藻的每股收益Stauroneissp.生长在上层清液的存在原油提取测试菌株的分离和测量。治疗浮在表面的粗提物导致了EPS干重显著增加(表2)与总生物量(表中轻微的减少1)。在不同的EPS分数,治疗导致了更高比例的SL-EPS(从74.00%到91.29%)每股收益分布。考虑到生物质能的轻微差异,生产EPS /硅藻细胞干重是16.66 (g / g细胞干重)的控制和增加到41.59 (g / g细胞干重)治疗(表(2.49倍)2)。上层清液原油提取了EPS生产每硅藻生物量增加,特别是对于SL-EPS(3.08倍高于控制)。BF-TB-EPS /生物量的生产也显著增加到2.71 (g / g细胞干重),也就是1.76倍高于1.54 (g / g细胞干重)的控制。

3.6。影响细菌浮在表面的粗提物的单糖成分硅藻EPS分数

的EPS分数Stauroneissp.水解并进行高效液相色谱分析。控制和治疗的结果(生长在上层清液的粗提取液的测试应变)如表所示3和图5,分别。

如表所示3,未经处理的每股收益Stauroneissp.包括九个单糖的男人,GlcN Rha, Glc-A, Glc-NAc,相关,女孩,Xyl,和Fuc被比较的标准。可溶性EPS分数和其他分数显示定性相似的单糖组成。的主要单糖SL-EPS分数Xyl,水平显著的女孩,男人,Glc-A, GlcN和轻微的Fuc水平,相关,Glc-NAc。在每个分数变化:主要的单糖F-TB-EPS和BF-TB-EPS相关是主要的单糖,与摩尔百分比分别为37.9%和61.0%。Xyl SL-EPS最丰富的单体,摩尔比例的37.0%,而人是最丰富的在BF-LB-EPS摩尔比例的23.2%。

如图5、治疗与上层清液的粗提取液测试应变导致改变所有单糖的含量。在四个分数、治疗与浮在表面的粗提取液引起的最大SL-EPS BF-TB-EPS和最小的变化。在九个单体检测到,只有四个单体改变方向相同在所有四个EPS分数:Glc-A加一直下降,Xyl和Fuc增加每股收益分数。Glc-NAc展出BF-TB-EPS最大的增加(1219%),紧随其后的是人在F-TB-EPS (667%)。其他单体的变化小于200%。

4所示。讨论

在我们之前的研究中,一些菌株以惊人的活动对硅藻生物膜的形成双耳瓶sp。Nitzschia梭形藻属,Sellaphorasp。Stauroneis从sponge-associated sp.筛选细菌银行(29日]。在扩展筛查,ust050418 - 708菌株被发现和识别Psychrobactersp.在这项研究中(图2)。其活动对硅藻生物膜的形成被证实是高于大多数菌株在前面研究[29日),抑制率> 90%的所有四个硅藻种类的测试双耳瓶sp。Nitzschia梭形藻属,Nitzschia斋期早餐,Stauroneissp.在图3。

在自然栖息地,microphytobenthic(产甲烷生物膜广泛,主要由硅藻和细菌(5]。生物膜内,多个交互之间存在产甲烷细菌,包括营养途径和其他潜在的相互作用,包括营养竞争和消极的细胞/细胞相互作用[4]。了解营养细菌和硅藻之间的竞争是否重要活动对硅藻生物膜形成、文化测试菌株分为细胞和上层清液分别研究它们对硅藻生物膜形成的影响。结果在图4表明,上层清液明显比细胞对硅藻生物膜的形成,更有效,对营养物质的竞争没有显著贡献的抑制效应测试应变对生物膜的形成Stauroneissp。我们的结果类似于许多报道的浮在表面的游离,上层清液等荧光假单胞菌包含群体感应信号影响增长,生物膜发展,腐败的潜力Shewanella baltica(42),海洋细菌的浮在表面的游离Pseudoalteromonas haloplanktis包含一个信号分子识别作为一个长链脂肪酸活跃的反对葡萄球菌epidermidis(43,44),花了媒介coisolated细菌诱导硅藻Achnanthidium minutissimum胶囊和生物膜的形成10]。因此,我们建议代谢物检测菌株的浮层负责活动。

结果在表1表明,从文化的上层清液中提取测试应变显著减少的硅藻生物量形成生物膜的文化和浮动生物量显著改变不了。稳定的生物质在浮动阶段表明粗提物的致死效果不显著。在生物膜生物量下降阶段证明细胞难以形成生物膜的提取和种植密度高。治疗并显著改变浮游的分布与生物膜细胞。细胞分布的显著变化证明测试应变的上层清液具有高活动对硅藻生物膜的形成,而不是致命的效果(18,19]。

我们感兴趣的是如何浮在表面的粗提取液导致每股收益的变化分数。硅藻细胞产甲烷生物膜分泌一种广泛的每股收益,这是生物膜的主要成分矩阵(4- - - - - -6]。这些EPS被描述为监管机构的细菌发展(5,45]。因此,每股收益是绝对必要的生物膜的形成和发挥重要作用的相互作用产甲烷和细菌。藻EPS生产被认为是受环境因素(11,12,46]。EPS生产的反应被认为是企图硅藻适应环境变化的47- - - - - -49]。在目前的研究中,治疗浮在表面的粗提取液的测试应变导致硅藻Stauroneissp.产生2倍总EPS,无论是总EPS的重量和细胞配额,如表所示2。每股收益的增加生产表明,浮在表面的粗提取液的测试压力使硅藻难以形成生物膜,并对硅藻是努力生产更多的EPS总量完成生物膜的形成。

除了反应治疗的EPS总产量硅藻被观察到,进一步的调查反应的不同分数的每股收益也进行了。硅藻的EPS可分为两个主要部分:其中一个是胶体EPS溶于盐水和附近的分泌细胞,和其他的绑定EPS紧密附着在藻细胞壁。绑定EPS的信息交流可能参与bacteria-diatom财团除了秉承性质;这样的沟通将有助于表面生物膜的发展和殖民(5]。在先前的研究中,硅藻Achnanthidium minutissimum,一般不形成生物膜和细胞生长的完全暂停,是诱导形成生物膜的细菌coisolated [10]。实验后的变化不同分数的硅藻EPS发现稳定的总量减少溶解并增加不溶性EPS (10]。在我们调查的反应在不同的EPS(表的分数2),每股收益的增加产量(g / g细胞干重)主要是由SL-EPS BF-TB-EPS治疗。SL-EPS是由细胞生物膜和悬浮细胞的文化。BF-TB-EPS应该为生物膜的形成(关键部分10]。看来,对待硅藻细胞必须生产更多BF-TB-EPS完成比未经处理的细胞生物膜的形成。此外,增加生产BF-TB-EPS表明每股收益表现出低效率嵌入硅藻细胞治疗在衬底表面形成生物膜控制硅藻相比。

理解效率低生物膜的形成对EPS的EPS的单体的组成进行了研究。治疗浮在表面的粗提取液的测试压力影响显著的变化对硅藻的EPS单体的组成Stauroneissp,如图5,对硅藻的EPS中的Glc-A加Xyl和Fuc在所有的EPS分数比控制。的内容Glc-NAc最大振幅的变化增加了1219%在BF-TB-EPS。有报道提出,表面活性的多糖,如酸性糖,包括糖羰酸和磺酸糖,与混凝效率(50]。也报道称,超过90%的每股收益部分是由不同的酸性多糖导致强力胶的性质双耳瓶sp。38]。因此,减少酸性糖含量,如Glc-A和碱性糖含量增加,如Glc-NAC、EPS的硅藻Stauroneissp.可能是重要的治疗效率低的每股收益和上层清液的活动从测试菌株对原油提取硅藻生物膜的形成。

被确认为活动的压力Psychrobactersp,属有许多特点,包括冷和盐的宽容,和一种独特的细胞脂肪酸含量(51,52]。活动对硅藻生物膜的形成Psychrobacter物种是首次报道。进一步研究孤立产生的活性代谢物这株应该导致新活性化合物的发现对硅藻生物膜的形成。

总之,sponge-associated细菌菌株ust050418 - 708,确认为Psychrobactersp.,发现分享16 s rDNA序列相似性很高Psychrobacter glacincola在这项研究中,具有非凡的活动对生物膜的形成不同种类的底栖硅藻。这个紧张的活动被发现在上层的文化。上层清液的粗提物改变细胞的硅藻分布Stauroneissp.这样更少的细胞形成生物膜。重要的是,浮在表面的粗提取液的测试Psychrobacter应变引起重大变化的作品不仅BF-TB-EPS和SL-EPS而且在硅藻的单糖组成Stauroneissp,特别是减少Glc-A EPS的分数和BF-TB-EPS Glc-NAC增加。代谢物的应变作为有前途的来源提出了对硅藻生物膜的形成新的活性化合物。

的利益冲突

作者宣称没有利益冲突有关的出版。

确认

这项研究得到了国家自然科学基金(号。41776156,41106113,41271521),中国教育部(没有关键项目。211065),江苏省自然科学基金(没有。BK2010322),扬州大学的科技创新基金会(2016 cxj049)。作者承认Likui Zhang博士英语修正。