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分析方法在化学杂志》上
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体积 2013年 |文章的ID 973280年 | https://doi.org/10.1155/2013/973280

Showkat a . Bhawani哈桑·m·Albishri Ziya (Ahmad汗穆罕默德n穆罕默德易卜拉欣,穆罕默德, ”表面活性剂改性/介导薄层色谱系统分析氨基酸”,分析方法在化学杂志》上, 卷。2013年, 文章的ID973280年, 12 页面, 2013年。 https://doi.org/10.1155/2013/973280

表面活性剂改性/介导薄层色谱系统分析氨基酸

Showkat a Bhawani,1,2 哈桑·m·Albishri,3 Ziya (Ahmad汗,1 穆罕默德n穆罕默德易卜拉欣,2 和 答:默罕默德4

1化学系,教员Science-North吉达,阿卜杜拉国王大学,21589年吉达,沙特阿拉伯

2马来西亚理科大学化学科学学院,11800年乌敏岛槟榔,马来西亚

3阿卜杜勒阿齐兹国王大学化学系,理学院,21589年吉达,沙特阿拉伯

4分析研究实验室,应用化学、工程与技术学院,阿里格尔穆斯林大学,202002年阿里格尔,印度

学术编辑器:Sinem Gokturk
收到了 2013年7月12日
接受 2013年10月25日
发表 2013年12月21日

文摘

本文包含了大量的表面活性剂的色谱系统修改。大量的溶剂系统和静止阶段进行了总结。三种不同的表面活性剂(阴离子、阳离子和非离子)被用作固定阶段以及溶剂系统的修饰符。使用表面活性剂在所有三个不同浓度水平(下面,上面,在临界胶束浓度,表面活性剂的行为不同。修改固定阶段和溶剂系统的表面活性剂产生新一代的色谱系统。微乳液溶剂系统也纳入本文。微乳液薄层色谱法是一种新方法领域的色谱法。

1。介绍

这是一个众所周知的事实,氨基酸是蛋白质的基石。氨基酸也是所有生命的饮食的重要成分。氨基酸是重要的生物生化分子常用的营养补充剂如谷氨酸增味剂(1和作为一个低热量人造甜味剂阿斯巴甜2]。因为巨大的氨基酸的应用在许多生物系统色谱研究这些分子是非常重要的。本文回顾处理表面活性剂改性薄层色谱系统用于氨基酸的分析。

表面活性剂是有前途的化合物的色谱数据的修改。不寻常的结果获得通过使用表面活性剂在色谱系统中与其他化合物。表面活性剂是一类化合物完全修改不同阶段参与了色谱法的效率。表面活性剂扩大TLC的潜力解决复杂混合物特别是含有中性和化合物。Sumina et al。3]讨论了TLC的改性表面活性剂在(a)等三种不同的方式使用胶束溶液作为流动相,(b)使用的分子离子表面活性剂临界胶束浓度以下解决方案,和(c)使用的表面活性剂改性表面的浸渍的表面aq. methanolic或表面活性剂ethanolic解决方案。

根据文学表面活性剂提供了重要氨基酸的分离。一些科学的分离是非常独特和重要的。另一方面胶束薄层色谱法(MTLC)有许多优于常规薄层色谱。最令人兴奋的特性MTLC相比传统的薄层色谱法,导致新一代的色谱系统(a)双溶剂中观察到的色谱面前,(b)吸附剂表面的修改和(c)改变洗脱顺序化合物(3]。使用水性胶束移动阶段是免费的从一些缺点如强烈的气味,波动性,易燃性,攻击性,和毒性3)中使用的有机溶剂相比传统的薄层色谱。因为使用表面活性剂在MTLC导致环保色谱系统的生成,MTLC分离科学领域有着巨大的应用。胶束相已被广泛用于各种药品的识别和分离,维生素、胺、金属离子和许多其他密切相关的化合物(4- - - - - -13]。

2。色谱系统

下面的色谱系统(表1和2)所使用的许多研究人员研究流动行为和氨基酸的分离研究。一个广泛的调查进行了的详细信息的本质静止阶段和溶剂的色谱系统用于氨基酸。在所有情况下,作者使用了一个简单的薄层色谱技术,因为这种技术的许多优点,也可以使用修改后的表面和溶剂系统的灵活性。
代码 固定相
年代1 硅胶G
年代2 氧化铝(中性)G
年代3 硅胶与SDS浸渍(0.1米)
年代4 硅胶与SDS浸渍(0.01米)
年代5 硅胶与SDS浸渍(0.008米)
年代6 硅胶与SDS浸渍(0.001米)
年代7 硅胶与SDS浸渍(0.0001米)
年代8 硅胶与钠胆盐浸渍(CMC)以下
年代9 硅胶与共产党浸渍(0.1米)
年代10 硅胶与共产党浸渍(0.00003米)
年代11 硅胶与共产党浸渍(0.0002米)
年代12 硅胶与共产党浸渍(0.00005米)
年代13 硅胶与CTAB浸渍(0.1米)
年代14 硅胶与CTAB浸渍(0.0001米)
年代15 硅胶与溴棕三甲铵浸渍(0.005米)
年代16 硅胶与溴棕三甲铵浸渍(0.002米)
年代17 硅胶与溴棕三甲铵浸渍(CMC)以下
年代18 硅胶浸渍tx - 100(0.01米)
年代19 硅胶浸渍tx - 100(0.0001米)
年代20. 硅胶浸渍Brij-35 (CMC)以下
年代21 氧化铝浸满共产党(0.0002)
年代22 氧化铝浸满共产党(0.00005)
年代23 氧化铝浸满溴棕三甲铵(0.0002)
年代24 氧化铝浸满溴棕三甲铵(0.002)
表1
静止的阶段。
代码 作文
米1 水0.5% SDS
米2 0.5%水溶液tx - 100
米3 0.5%水溶液SDS + 0.5%水tx - 100 (1): 1, v / v)
米4 米3+ 1-butanol (9: 1, v / v)
米5 米3+ 1-butanol + DMSO (1: 9: 2, v / v)
米6 米3+ 1-butanol + DMSO (2: 8: 2, v / v)
米7 米3+ 1-butanol + DMSO (3: 7: 2, v / v)
米8 米3+ 1-butanol + DMSO (4: 6: 2, v / v)
米9 米3+ 1-butanol + DMSO (2: 7: 2, v / v)
米10 米3+ 1-butanol + DMSO (2: 9: 2, v / v)
米11 米3+ 1-butanol + DMSO (2: 10: 2, v / v)
米12 米3+甲醇+ DMSO (2: 8: 2, v / v)
米13 米3+乙醇+ DMSO (2: 8: 2, v / v)
米14 米3+丙醇+ DMSO (2: 8: 2, v / v)
米15 米3+ 1-butanol +二氧六环(2:8:2,v / v)
米16 米3+ 1-butanol +甲酰胺(2:8:2,v / v)
米17 0.0001米水AOT
米18 0.001米水AOT
米19 0.01米水AOT
米20. 米18+ 1-butanol (9.5: 0.5, v / v)
米21 米18+ DMSO + 1-butanol (1: 2: 9, v / v)
米22 米18+ DMSO + 1-butanol (v / v) 2: 2: 8日
米23 米18+ DMSO + 1-butanol (3: 2: 7, v / v)
米24 米18+ DMSO + 1-butanol (4: 2: 6, v / v)
米25 米18+ DMSO + 1-butanol (v / v) 3: 2: 9日
米26 米18+ DMSO + 1-butanol (v / v) 3: 2: 8日
米27 米18+ DMSO + 1-butanol (v / v) 3: 2: 6日
米28 米18+ DMSO +甲醇(3:2:7,v / v)
米29日 米18+ DMSO +乙醇(3:2:7,v / v)
米30. 米18+ DMSO + 1-propanol (3: 2: 7, v / v)
米31日 0.00001 tx - 100
米32 0.00081化学物质
米33 0.00001 tx - 100 +丙酮(1:5,v / v)
米34 0.00081 MSDS +丙酮(1:5,v / v)
米35 0.001 tx - 100 + 0.081 MSDS (1: 1, v / v)
米36 0.00001 tx - 100 + 0.00081 MSDS (1: 1, v / v)
米37 0.00001 tx - 100 + 0.00081 MSDS +丙酮(1:1:1,v / v)
米38 0.00001 tx - 100 + 0.00081 MSDS +丙酮(1:1:2,v / v)
米39 0.00001 tx - 100 + 0.00081 MSDS +丙酮(1:1:3,v / v)
米40 0.00001 tx - 100 + 0.00081 MSDS +丙酮(1:1:5,v / v)
米41 0.00001 tx - 100 + 0.00081 MSDS +丙酮(2:1:1,v / v)
米42 0.00001 tx - 100 + 0.00081 MSDS +丙酮(3:1:1,v / v)
米43 0.00001 tx - 100 + 0.00081 MSDS + butan-2-one (1: 1: 5, v / v)
米44 溴棕三甲铵的水溶液(CMC)以下
米45 胆盐钠水溶液(CMC)以下
米46 下面Brij-35水溶液(CMC)
米47 硼酸+磷酸(50:50,pH值2.3)
米48 40%水葡萄糖
米49 CTAB +水+正丁醇+
n-octane (36.9 g: 10 g: 44 g: 9.1 g)
米50 CTAB +水+正丁醇+
n-octane (36.9 g: 22.5 g: 44 g: 9.1 g)
米51 CTAB +水+正丁醇+
n-octane (36.9 g: 38.6 g: 44 g: 9.1 g)
米52 CTAB +水+正丁醇+
n-octane (36.9 g: 60 g: 44 g: 9.1 g)
米53 CTAB +水+正丁醇+
n-octane (36.9 g: 90 g: 44 g: 9.1 g)
米54 CTAB +水+正丁醇+
n-octane (36.9 g: 135 g: 44 g: 9.1 g)
米55 CTAB +水+正丁醇+
n-octane (36.9 g: 210 g: 44 g: 9.1 g)
米56 CTAB +水+正丁醇+
n-octane (36.9 g: 360 g: 44 g: 9.1 g)
米57 CTAB +水+正丁醇+
n-octane (36.9 g: 810 g: 44 g: 9.1 g)
米58 CTAB +水+庚烷+ n-pentanol (8 g: 8毫升:160毫升:25毫升)
米59 AOT +水+庚烷+ l (8 g: 8毫升:160毫升:25毫升)
米60 SDS +水+庚烷+ n-pentanol (8 g: 8毫升:160毫升:25毫升)
表2
溶剂系统。
2.1。制备浸渍静止阶段

(1)(一)TLC板是由硅胶混合“G”或氧化铝和双重蒸馏水1:3体积比率不断摇晃5分钟直到均匀浆。合成浆涂布在玻璃盘子。第一板块在室温下风干,然后被加热在100°C激活1 h。所需的活化硅胶板然后浸渍浓度的表面活性剂通过开发板在浸渍剂的水溶液,紧随其后的是干燥盘在100°C的电控制烤箱1 h [17,18]。(b)预镀板浸渍通过直接的发展在水溶液中表面活性剂在烤箱开发板被激活后1小时的100°C。(2)浸渍TLC板也由直接混合硅胶“G”或氧化铝与表面活性剂的水溶液1:3体积比率不断摇晃5分钟直到均匀浆。合成浆涂布在玻璃盘子。第一板块在室温下风干,然后被加热在100°C激活1 h。

2.2。表面活性剂改性层

一些吸附剂层已被用于识别、分离和量化的氨基酸。最常用的材料是硅胶。包含二氧化硅表面硅醇(颗粒)组织活动的中心。这些团体活跃在表面化学转换,并提供一些独特的性质。

单体的吸附胶束表面发生的两种不同的方式,也就是说,疏水性吸附和silanophilic吸附。烷基尾单体的疏水性吸附是吸附固定相的烷基,虽然silanophilic吸附涉及吸附的离子头组到免费的硅醇组在硅胶(14]。

有必要提供一个想法关于吸附本质的不同种类的表面活性剂在不同的表面。一个众所周知的事实是,大多数的自然表面带负电荷。因此,如果一个色析法需要一个疏水的表面,应该使用阳离子型表面活性剂。由定向带正电的阳离子表面活性剂吸附于表面亲水性基团对带负电荷的表面和疏水基的远离表面,而亲水表面是由使用一个表面带负电荷的阴离子型表面活性剂。带正电的表面应该用于生成一个阴离子型表面活性剂疏水表面,而应该使用阳离子表面活性剂亲水表面。这可以解释的基础上形成的广告上的表面活性剂胶束和hemimicelles同位语带电表面。这些总成表面上形成的带电的离子表面活性剂与表面相反的电荷(含铌的部队)和表面活性剂链链相互作用(noncolumbic)。

但是,如果我们把非离子表面活性剂的情况下,很明显,这些材料可以吸附到表面由亲水或亲水基团面向表面。这些吸附可以预测的本质的基础上使用的表面吸附的类型。相比,阳离子和阴离子表面活性剂、两性离子表面活性剂具有正面和负面的指控,因此没有明显改变表面的电荷(19]。

为了实现一些独特的氨基酸的分离,各种不同类型的表面活性剂如阳离子、阴离子、非离子被用作表面修饰符(15,16,20.- - - - - -23]。表面活性剂被证明是非常潜在的材料表面改性的各种成分(24- - - - - -27]。表面活性剂也更少有毒相比其他化学物质作为溶剂使用。数据表中列出3表明表面活性剂在色谱领域的重要性。准备了无数层材料使用不同种类的阴离子、阳离子和非离子表面活性剂。这些生成的方法修改为很多新的混合表面材料。
氨基酸 值与色谱系统
组氨酸 = 0.93 (8,米44), = 0.92 (17,米44), = 0.88 (20.,米44),
= 0.97 (8,米45), = 0.94 (17,米45), = 0.89 (20.,米45),
= 0.95 (8,米46), = 0.90 (17,米46), = 0.88 (20.,米46),
= 0.67 (3,米47), = 0.68 (4,米47), = 0.62 (5,米47),
= 0.60 (6,米47), = 0.67 (7,米47), = 0.64 (9,米47),
= 0.72 (10,米47), = 0.65 (13,米47), = 0.71 (14,米47),
= 0.63 (18,米47), = 0.66 (19,米47), = 0.94 (11,米48),
= 0.96 (12,米48), = 0.95 (15,米48), = 0.95 (16,米48),
= 0.55 (21,米48), = 0.56 (22,米48), = 0.63 (23,米48),
= 0.66 (24,米48)
DL-Phenylalanine = 0.68 (3,米47), = 0.82 (4,米47), = 0.82 (5,米47),
= 0.82 (6,米47), = 0.76 (7,米47), = 0.64 (9,米47),
= 0.75 (10,米47), = 0.74 (13,米47), = 0.80 (14,米47),
= 0.84 (18,米47), = 0.85 (19,米47)
L-Phenylalanine = 0.77 (8,米44), = 0.80 (17,米44), = 0.74 (20.,米44),
= 0.96 (8,米45), = 0.85 (17,米45), = 0.78 (20.,米45),
= 0.82 (8,米46), = 0.82 (17,米46), = 0.75 (20.,米46),
= 0.76 (11,米48), = 0.77 (12,米48), = 0.72 (15,米48),
= 0.78 (16,米48), = 0.53 (21,米48), = 0.69 (22,米48),
= 0.56 (23,米48), = 0.61 (24,米48)
DL-Tryptophan = 0.80 (T)3,米47), = 0.90 (4,米47), = 0.90 (5,米47),
= 0.90 (6,米47), = 0.89 (7,米47), = 0.75 (9,米47),
= 0.87 (10,米47), = 0.71 (13,米47), = 0.88 (14,米47),
= 0.89 (18,米47), = 0.89 (19,米47)
左旋色氨酸 = 0.86 (11,米48), = 0.87 (12,米48), = 0.88 (15,米48),
= 0.90 (16,米48), = 0.54 (21,米48), = 0.65 (22,米48),
= 0.38 (23,米48), = 0.57 (24,米48)
DL-Methionine = 0.78 (T)3,米47), = 0.86 (4,米47), = 0.86 (5,米47),
= 0.86 (6,米47), = 0.91 (7,米47), = 0.83 (9,米47),
= 0.79 (10,米47), = 0.78 (13,米47), = 0.81 (14,米47),
= 0.84 (18,米47), = 0.85 (19,米47)
赖氨酸 = 0.92 (8,米44), = 0.91 (17,米44), = 0.96 (20.,米44),
= 0.96 (8,米45), = 0.94 (17,米45), = 0.95 (20.,米45),
= 0.96 (8,米46), = 0.92 (17,米46), = 0.95 (20.,米46),
= 0.60 (3,米47), = 0.77 (4,米47), = 0.56 (5,米47),
= 0.55 (6,米47), = 0.67 (7,米47), = 0.63 (9,米47),
= 0.71 (10,米47), = 0.58 (13,米47), = 0.69 (14,米47),
= 0.59 (18,米47), = 0.60 (19,米47), = 0.95 (11,米48),
= 0.89 (12,米48), = 0.70 (15,米48), = 0.84 (16,米48),
= 0.64 (21,米48), = 0.63 (22,米48), = 0.65 (23,米48),
= 0.66 (24,米48)
DL-Threonine = 0.90 (3,米47), = 0.92 (4,米47), = 0.86 (5,米47),
= 0.86 (6,米47), = 0.97 (7,米47), = 0.81 (9,米47),
= 0.94 (10,米47), = 0.86 (13,米47), = 0.94 (14,米47),
= 0.90 (18,米47), = 0.88 (19,米47)
苏氨酸 = 0.89 (11,米48), = 0.93 (12,米48), = 0.88 (15,米48),
= 0.91 (16,米48), = 0.30 (21,米48), = 0.35 (22,米48),
= 0.34 (23,米48), = 0.38 (24,米48)
L-Leucine = 0.84 (8,米44), = 0.82 (17,米44), = 0.79 (20.,米44),
= 0.82 (8,米45), = 0.80 (17,米45), = 0.74 (20.,米45),
= 0.83 (8,米46), = 0.84 (17,米46), = 0.81 (20.,米46),
= 0.80 (3,米47), = 0.77 (4,米47), = 0.84 (5,米47),
= 0.83 (6,米47), = 0.85 (7,米47), = 0.80 (9,米47),
= 0.87 (10,米47), = 0.75 (13,米47), = 0.85 (14,米47),
= 0.79 (18,米47), = 0.85 (19,米47), = 0.71 (11,米48),
= 0.75 (12,米48), = 0.70 (15,米48), = 0.76 (16,米48),
= 0.69 (21,米48), = 0.64 (22,米48), = 0.63 (23,米48),
= 0.72 (24,米48)
D-Leucine = 0.84 (T)3,米47), = 0.84 (4,米47), = 0.81 (5,米47),
= 0.81 (6,米47), = 0.83 (7,米47), = 0.81 (9,米47),
= 0.84 (10,米47), = 0.76 (13,米47), = 0.83 (14,米47),
= 0.79 (18,米47), = 0.83 (19,米47)
DL-Isoleucine = 0.79 (T)3,米47), = 0.79 (4,米47), = 0.78 (5,米47),
= 0.78 (6,米47), = 0.87 (7,米47), = 0.79 (9,米47),
= 0.79 (10,米47), = 0.73 (13,米47), = 0.80 (14,米47),
= 0.68 t (S18,米47), = 0.80 (19,米47)
L-Isoleucine = 0.67 (11,米48), = 0.70 (12,米48), = 0.72 (15,米48),
= 0.69 (16,米48), = 0.74 (21,米48), = 0.76 (22,米48),
= 0.76 (23,米48), = 0.77 (24,米48),
L-Norleucine = 0.77 (8,米44), = 0.71 (17,米44), = 0.77 (20.,米44),
= 0.80 (8,米45), = 0.75 (17,米45), = 0.81 (20.,米45),
= 0.77 (8,米46), = 0.77 (17,米46), = 0.79 (20.,米46),
= 0.73 (11,米48), = 0.75 (12,米48), = 0.73 (15,米48),
= 0.73 (16,米48), = 0.71 (21,米48), = 0.76 (22,米48),
= 0.74 (23,米48), = 0.76 (24,米48)
DL-Valine = 0.76 (3,米47), = 0.90 (4,米47), = 0.75 (5,米47),
= 0.74 (6,米47), = 0.85 (7,米47), = 0.89 (9,米47),
= 0.85 (10,米47), = 0.78 (13,米47), = 0.84 (14,米47),
= 0.83 (18,米47), = 0.83 (19,米47)
L-Valine = 0.82 (11,米48), = 0.80 (12,米48), = 0.85 (15,米48),
= 0.80 (16,米48), = 0.75 (21,米48), = 0.66 (22,米48),
= 0.62 (23,米48), = 0.79 (24,米48)
L-Proline = 0.84 (8,米44), = 0.77 (17,米44), = 0.80 (20.,米44),
= 0.75 (8,米45), = 0.76 (17,米45), = 0.81 (20.,米45),
= 0.76 (8,米46), = 0.74 (17,米46), = 0.77 (20.,米46),
= 0.72 (11,米48), = 0.77 (12,米48), = 0.73 (15,米48),
= 0.75 (16,米48), = 0.75 (21,米48), = 0.70 (22,米48),
= 0.69 (23,米48), = 0.66 (24,米48)
谷氨酸 = 0.95 (8,米44), = 0.96 (17,米44), = 0.95 (20.,米44),
= 0.95 (8,米45), = 0.96 (17,米45), = 0.94 (20.,米45),
= 0.92 (8,米46), = 0.95 (17,米46), = 0.96 (20.,米46),
= 0.93 (11,米48), = 0.97 (12,米48), = 0.88 (15,米48),
= 0.94 (16,米48), = 0.25 (21,米48), = 0.24 (22,米48),
= 0.30 (23,米48), = 0.17 (24,米48)
L-Serine = 0.91 (8,米44), = 0.93 (17,米44), = 0.97 (20.,米44),
= 0.95 (8,米45), = 0.92 (17,米45), = 0.95 (20.,米45),
= 0.96 (8,米46), = 0.96 (17,米46), = 0.95 (20.,米46),
= 0.94 (11,米48), = 0.97 (12,米48), = 0.91 (15,米48),
= 0.96 (16,米48), = 0.40 (21,米48), = 0.38 (22,米48),
= 0.41 (23,米48), = 0.49 (24,米48)
丙氨酸 = 0.90 (8,米44), = 0.96 (17,米44), = 0.95 (20.,米44),
= 0.96 (8,米45), = 0.94 (17,米45), = 0.95 (20.,米45),
= 0.96 (8,米46), = 0.96 (17,米46), = 0.90 (20.,米46),
= 0.97 (11,米48), = 0.94 (12,米48), = 0.95 (15,米48),
= 0.91 (16,米48), = 0.61 (21,米48), = 0.65 (22,米48),
= 0.62 (23,米48), = 0.56 (24,米48)
酪氨酸 = 0.94 (8,米44), = 0.94 (17,米44), = 0.96 (20.,米44),
= 0.87 (8,米45), = 0.94 (17,米45), = 0.93 (20.,米45),
= 0.97 (8,米46), = 0.95 (17,米46), = 0.94 (20.,米46),
= 0.94 (11,米48), = 0.92 (12,米48), = 0.93 (15,米48),
= 0.94 (16,米48), = 0.60 (21,米48), = 0.69 (22,米48),
= 0.49 (23,米48), = 0.57 (24,米48)
精氨酸 = 0.95 (11,米48), = 0.89 (12,米48), = 0.95 (15,米48),
= 0.92 (16,米48), = N。D (S21,米48), = N。D (S22,米48),
= 0.64 (23,米48), = 0.56 (24,米48)
表3
在不同的氨基酸表面活性剂改性表面的价值:从引用数据提取6- - - - - -8]。

一系列氨基酸进行了测试在不同的浸渍层。色析法用三种不同的表面活性剂研究流动模式和各种氨基酸的混合物的分离。二氧化硅和氧化铝表面被不同种类的表面活性剂改性。默罕默德和Zehra17),不同borate-phosphate缓冲溶剂系统用于氨基酸的色谱法。作者选择只有一个(borate-phosphate )的三个缓冲系统在不同硅浸渍层。在这项研究中,相互分离组氨酸和DL-tryptophan得以实现。该方法已成功应用于制药配方对氨基酸的检测。

在另一项研究中,穆罕默德和哈克18]使用水溶液中葡萄糖(40%,w / v)二氧化硅和氧化铝浸渍层。这种方法更强调代绿色色谱方法研究氨基酸。在这种方法中,作者把赖氨酸与精氨酸,因为他们在生命系统的各种生理活动。默罕默德和哈克28]也介绍了在固定相表面活性剂和溶剂系统在一个色谱系统。在这项研究中使用了三种不同的表面活性剂对氨基酸的色谱法。作者已经成功分离苯丙氨酸赖氨酸。

本文后面的主题是现代色析法提供一个列表的新一代表面氨基酸的色谱法。很多信息可以从表生成3。这些新开发的静止阶段铺平了道路为各种医药行业和科学家处理研究氨基酸的简单检测、分离和定量。

2.3。表面活性剂的溶剂系统

本节讨论不同种类的溶剂系统产生的表面活性剂。表4总结了氨基酸的色谱数据在不同表面活性剂介导溶剂系统。使用表面活性剂在不同浓度水平水溶液或有机溶液。有些解决方案非常有效的在某一浓度水平的表面活性剂分子排列在一层称为临界胶束浓度的电导率急剧下降的解决方案或急剧增加每单位质量的物质在溶液中发生。有些解决方案非常强大高于临界胶束浓度表面活性剂形成聚集的地方。胶束的解决方案是非常强大的系统可溶性溶质的非齐次的环境因为胶束内部提供一个表面极性和非极性(14]。在这种非均匀环境下溶质可以静电或终或双向交互(14]。
氨基酸 流动相 固定相 价值
赖氨酸 米3 年代1 0.52
米4 0.40
米5 0.05
米6 0.07
米7 0.09
米8 0.12
米17 0.83
米18 0.80
米19 0.75
米21 0.04
米22 0.06
米23 0.12
米24 0.20
精氨酸 米3 年代1 0.55
米4 0.41
米5 0.02
米6 0.03
米7 0.06
米8 0.10
米17 0.79
米18 0.77
米19 0.74
米21 0.06
米22 0.09
米23 0.19
米24 0.21
L-Ornithine 米3 年代1 0.60
米4 0.45
米5 0.05
米6 0.09
米7 0.12
米8 0.15
组氨酸 米3 年代1 0.68
米4 0.50
米5 0.30
米6 0.40
米7 0.45
米8 0.48
左旋色氨酸 米3 年代1 0.72
米4 0.62
米5 0.58
米6 0.64
米7 0.50
米8 0.66
米17 0.94
米18 0.91
米19 0.90
米21 0.45
米22 0.50
米23 0.66
米24 0.75
L-Isoleucine 米17 年代1 0.88
米18 0.54
米19 0.80
米21 0.55
米22 0.58
米23 0.63
米24 0.72
L-Hydroxyproline 米17 年代1 0.82
米18 0.78
米19 0.75
米21 0.21
米22 0.23
米23 0.32
米24 0.41
L-Proline 米17 年代1 0.85
米18 0.80
米19 0.78
米21 0.33
米22 0.33
米23 0.34
米24 0.37
半胱氨酸 米17 年代1 0.97
米18 0.93
米19 0.88
米21 0.09
米22 0.17
米23 0.23
米24 0.45
l -胱氨酸 米17 年代1 0.00
米18 0.00
米19 0.00
米21 0.00
米22 0.00
米23 0.00
米24 0.00
L-Methionine 米17 年代1 0.90
米18 0.88
米19 0.83
米21 0.42
米22 0.45
米23 0.53
米24 0.58
L-Valine 米17 年代1 0.86
米18 0.83
米19 0.78
米21 0.36
米22 0.40
米23 0.49
米24 0.56
L-Glycine 米17 年代1 0.91
米18 0.89
米19 0.84
米21 0.14
米22 0.19
米23 0.30
米24 0.38
L-Serine 米17 年代1 0.97
米18 0.94
米19 0.90
米21 0.15
米22 0.18
米23 0.31
米24 0.38
表4
氨基酸的价值在不同的表面活性剂介导溶剂系统:从引用数据提取12,14]。

阿姆斯特朗和省(29日)设计了一种三相的胶束色谱模型的理论描述。描述说,分区与胶束溶质和固定相发生在三种可能的方式:(a)分区大部分溶剂之间的溶质和固定相,(b)分区之间的溶质体积溶剂和胶束,和(c)分区胶束之间的溶质和固定相。后来阿姆斯特朗和斯坦(30.,31日)溶质分为三类,即绑定,不具约束力,或者antibinding基于他们的保留行为造成溶质和胶束之间的静电相互作用。

默罕默德和希32)L-met分离,半胱氨酸和l -胱氨酸使用0.001米水AOT + DMSO + 1-butanol (3: 2: 7, v / v / v)在硅表面。定量分析L-cys也是由TLC-spectrophotometry方法。

其中最有趣的想法是使用混合胶束在氨基酸的分离氨基酸的分离。通常非离子和离子表面活性剂混合在一起产生混合胶束。据报道,表面活性剂溶液混合行为不同于单个表面活性剂由于增加ion-dipole离子和非离子表面活性剂之间的相互作用33]。混合两种不同的表面活性剂产生协同效应的物理化学性质与他们的个人行为。这个讨论协同效应是由于提高密实度的聚氧乙烯(坡)壳比单个表面活性剂的胶束。这是由于有吸引力的氧鎓离子之间的相互作用(氧原子)坡链和阴离子头组阴离子表面活性剂(34]。默罕默德和Laeeq35)使用一系列的溶剂系统[M31日- m43在不同的混合物。的混合组合tx - 100 + SDS +丙酮(1:1:1,v / v / v)已被证明是有用的选择性分离从其他必需氨基酸赖氨酸。这种方法也被用于制药配方中赖氨酸的识别。在另一项研究中,穆罕默德和古普塔(36)利用相结合的tx - 100 + SDS + 1-butanol + DMSO对三分量的混合表面活性剂的分离,即赖氨酸、组氨酸和左旋色氨酸。他们还将研究扩展到检查吸附剂的性质适合三个氨基酸的分离。报告的结果表明,这种分离的硅是最有利的氧化铝相比,纤维素,硅藻土混合表面活性剂溶剂系统。

3所示。微乳液薄层色谱的氨基酸

纳米乳是热力学稳定、单一光学各向同性的解决方案包含油、水、表面活性剂,通过(中链醇胺或类似的极性有机分子)(37]。有许多独特的特性纳米乳比其他溶剂系统色谱领域的使用。这些现代溶剂系统产生巨大的色谱法在工业中的应用。氨基酸的色谱数据使用各种微乳液溶剂系统提出了表5。纳米乳的一些有趣的特性,如独特的增溶和能力将溶质在分散的液滴和像提取媒体,提供了许多应用程序在液相色谱(38]。微乳液的机理设计的薄层色谱田和谢39)表示,溶质在固定相之间,分布连续相的油或水,室内阶段和间期。
氨基酸 流动相 固定相 价值
L-Glycine 米49 年代1 0.01
米50 0.23
米51 0.28
米52 0.30
米53 0.32
米54 0.40
米55 0.54
米56 0.70
米57 0.85(圣)
米58 0.05
米59 0.05
米60 0.09
丙氨酸 米49 年代1 0.15
米50 0.25
米51 0.30
米52 0.32
米53 0.36
米54 0.42
米55 0.58
米56 0.62
米57 0.88(我的)
L-Valine 米49 年代1 0.18
米50 0.32
米51 0.35
米52 0.36
米53 0.40
米54 0.45
米55 0.60 (T)
米56 0.65 (T)
米57 0.90(圣)
米58 0.05
米59 0.05
米60 0.10
L-Leucine 米49 年代1 0.20
米50 0.35
米51 0.38
米52 0.40
米53 0.42
米54 0.47
米55 0.61
米56 0.66 (T)
米57 0.92(圣)
L-Isoleucine 米49 年代1 0.22
米50 0.36
米51 0.40
米52 0.44
米53 0.56
米54 0.50
米55 0.62 (T)
米56 0.65 (T)
米57 0.92(是)
米58 0.16
米59 0.20
米60 0.21
L-Serine 米49 年代1 0.08
米50 0.12
米51 0.24
米52 0.28
米53 0.35
米54 0.40
米55 0.50
米56 0.60
米57 0.78 (T)
米58 0.06
米59 0.10
米60 0.16
苏氨酸 米49 年代1 0.10
米50 0.15
米51 0.25
米52 0.30
米53 0.32
米54 0.38
米55 0.46
米56 0.50
米57 0.61 (T)
赖氨酸 米49 年代1 0.10
米50 0.23
米51 0.28
米52 0.34
米53 0.38
米54 0.40
米55 0.47
米56 0.52
米57 0.71 (T)
米58 0.07
米59 0.12
米60 0.19
精氨酸 米49 年代1 0.20
米50 0.30
米51 0.34
米52 0.38
米53 0.45
米54 0.55
米55 0.65
米56 0.75 (T)
米57 0.85(圣)
米58 0.08
米59 0.15
米60 0.26
组氨酸 米49 年代1 0.01
米50 0.11
米51 0.20
米52 0.28
米53 0.35
米54 0.45
米55 0.60
米56 0.75 (T)
米57 0.83(圣)
天门冬氨酸 米49 年代1 0.02
米50 0.05
米51 0.10
米52 0.18
米53 0.28
米54 0.35
米55 0.40
米56 0.50
米57 0.60 (T)
L-Glutamic酸 米49 年代1 0.04
米50 0.10
米51 0.15
米52 0.25
米53 0.35
米54 0.38
米55 0.45
米56 0.58 (T)
米57 0.70(是)
L-Asparagine 米49 年代1 0.08
米50 0.16
米51 0.20
米52 0.25
米53 0.30
米54 0.45
米55 0.50
米56 0.55 (T)
米57 0.65 (T)
谷酰胺 米49 年代1 0.10
米50 0.21
米51 0.25
米52 0.30
米53 0.35
米54 0.50
米55 0.52
米56 0.60 (T)
米57 0.70 (T)
半胱氨酸 米49 年代1 0.12
米50 0.16
米51 0.22
米52 0.25
米53 0.32
米54 0.36
米55 0.45
米56 0.55
米57 0.65 (T)
米58 0.03
米59 0.10
米60 0.20
L-Methionine 米49 年代1 0.18
米50 0.34
米51 0.36
米52 0.40
米53 0.45
米54 0.55
米55 0.60 (T)
米56 0.70 (T)
米57 0.85 (T)
米58 0.06
米59 0.12
米60 0.17
DL - 苯丙氨酸 米49 年代1 0.38
米50 0.44
米51 0.50
米52 0.55
米53 0.60
米54 0.68
米55 0.70 (T)
米56 0.75 (T)
米57 0.85 (T)
酪氨酸 米49 年代1 0.26
米50 0.35
米51 0.55
米52 0.65
米53 0.75
米54 0.80
米55 0.82 (T)
米56 0.85 (T)
米57 0.90 (T)
左旋色氨酸 米49 年代1 0.40
米50 0.55
米51 0.66
米52 0.72
米53 0.75
米54 0.83
米55 0.86 (T)
米56 0.90 (T)
米57 0.92 (T)
米58 0.10
米59 0.14
米60 0.57
L-Proline 米49 年代1 0.12
米50 0.18
米51 0.24
米52 0.27
米53 0.32
米54 0.38
米55 0.55
米56 0.78 (T)
米57 0.82(圣)
米58 0.04
米59 0.08
米60 0.10
L-Hydroxyproline 米49 年代1 0.10
米50 0.15
米51 0.25
米52 0.30
米53 0.36
米54 0.40
米55 0.57
米56 0.86 (T)
米57 0.90(圣)
米58 0.08
米59 0.11
米60 0.15
L-Ornithine盐酸盐 米49 年代1 0.12
米50 0.13
米51 0.18
米52 0.25
米53 0.32
米54 0.34
米55 0.42
米56 0.46 (T)
米57 0.60(圣)
半胱氨酸盐酸盐 米49 年代1 0.10
米50 0.12
米51 0.25
米52 0.28
米53 0.34
米54 0.38
米55 0.48
米56 0.59 (T)
米57 0.70(圣)
表5
氨基酸在微乳液含有溶剂系统的价值:从引用数据提取15,16]。

田和谢39)广泛研究了流动行为的氨基酸含有CTAB的微乳液,水,正丁醇,n-octane不同含水的内容。他们的研究成果的基础上,据报道,氨基酸分布在室内阶段或连续相微乳液。其他的概率是报道,氨基酸可以插入障碍层之间由CTAB和正丁醇。的变化 值可能是由于几个因素的影响如吸附、分布、静电、疏水的力量,空间壁垒,萃取和反萃取。田和谢39)已经成功分离四个组件的氨基酸(谷氨酸、丙氨酸、异亮氨酸和色氨酸)在硅表面微乳液(CTAB:水:正丁醇:正庚烷)。“穆罕默德等。”40)产生的选择性分离色氨酸从一群其他氨基酸通过微乳液(SDS:水:n-pentanol:正庚烷)硅层。“穆罕默德et al。”利用三种不同的纳米乳的选择性分离色氨酸但三只微乳液(SDS:水:正丁醇:正庚烷)是适合这种分离。

4所示。相互作用的氨基酸表面活性剂的研究

薄层色谱法也是一个有用的分析工具研究各种各种化合物的相互作用或绑定。很少有文章发表在氨基酸与表面活性剂的相互作用研究。这些交互是生物非常重要和有用的在各种医药和农药剂型。这些交互已经证明了提高效率的各种配方的有效成分。Forgacs [41]研究了氨基酸之间的相互作用和非离子表面活性剂(nonylphenyl hexaethoxylates)由电荷转移反相薄层色谱法。观察到在大多数情况下,表面活性剂的疏水性氨基酸的影响可以忽略不计。半胱氨酸的绑定,Glu、通用电气、忧郁、法和酪氨酸与表面活性剂是观察和互动的力量是相当低的。这可以从这项研究得出结论,氨基酸侧链的疏水性显著影响相互作用的强度。Cserhati [42]还研究了氨基酸之间的相互作用与非离子表面活性剂(乙氧基硬脂酸),电荷转移反相薄层色谱法。从研究被观察,只有Asn(天冬酰胺),半胱氨酸(半胱氨酸),Glu(谷氨酸),低浓缩铀(亮氨酸),赖氨酸(赖氨酸),(蛋氨酸)会面,有Nle(正亮氨酸),板式换热器(苯丙氨酸),Trp(色氨酸)和酪氨酸(酪氨酸)结合表面活性剂。逐步回归分析用于研究力量的参数。从这项研究观察,氨基酸有最高的电子参数影响相互作用的强度。在另一项研究中,Cserhati和Forgacs43]研究了氨基酸之间的相互作用和阳离子表面活性剂由电荷转移RPTLC(溴化cetyltrimethylammonium)。相互作用的相对强度也计算研究。Arg的绑定、Glu、通用电气、亮氨酸、赖氨酸、满足,有Nle,板式换热器,Trp,酪氨酸,Val观察表面活性剂。相互作用的强度直接影响氨基酸侧链的疏水性。

引用

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