SCIENTIFICA Scientifica 2090 - 908 x Hindawi出版公司 674256年 10.6064 / 2012/674256 674256年 研究文章 记者与裂殖酵母GPCR试验系统 粟酒裂殖酵母 Sasuga Shintaro Osada Toshiya 乔奎姆鲁伊斯 De旧金山 玛丽亚 生命科学部门 生物科学与生物技术学院毕业 东京技术学院的 b - 2 4259 Nagatsuta-cho Midori-ku 横滨226 - 8501 日本 titech.ac.jp 2012年 31日 12 2012年 2012年 31日 10 2012年 11 12 2012年 2012年 版权©2012 Shintaro Sasuga Toshiya Osada。 这是一个开放的文章在知识共享归属许可下发布的,它允许无限制的使用,分布和繁殖在任何媒介,提供最初的工作是正确的引用。

G protein-coupled受体(GPCRs)与各种各样的生物活性有关。酵母通常用作宿主不等的GPCR化验。我们工程的记者对裂殖酵母质粒产生绿色荧光蛋白(GFP)通过其内生GPCR通路。作为一个控制区域的GFP表达记者质粒,我们专注于七内源性基因激活途径。当这些基因的上游地区被用作诱导启动子结合LPI终结者, mam2上游地区产生GFP最迅速和强烈,尽管高背景。随后,LPI终结者被替换为相应的下游地区。SPBC4.01下游地区增强响应背景较低。此外,结合SPBC4.01下游地区sxa2上游地区,信号噪声比显然比其他地区。我们也评估时间和剂量依赖性GFP的记者质粒的菌株转化。最后,我们展出的模型简化GPCR化验与记者质粒表达内源性GPCR外国启动子的控制下。

1。介绍

在哺乳动物中,G protein-coupled受体(GPCRs)构成了最大和最不同的蛋白质家族。GPCRs被激活的激素、气味、肽、神经递质等 1- - - - - - 3]。不足为奇的是,通常情况下,GPCRs与多种疾病相关;GPCRs最潜在的药物靶点之一,随着酶。然而,很难复制适当和功能性GPCR表达在不同的细胞由于其独特的构造和未知的机制贩运和折叠。因此,大量的GPCRs仍然不确定相应的配体。今天,各种各样的主机和它们的转化株开发解决这些问题( 4- - - - - - 10]。

裂殖酵母, 粟酒裂殖酵母,是一种单细胞真核生物,最好的生物模型尤其是在细胞周期。裂殖酵母股票更相似的哺乳动物信使rna剪接,转译后的修改,比其他酵母出芽酵母等, 酿酒酵母( 11]。事实上,许多基因的裂殖酵母可以辅以哺乳动物同源染色体,和许多哺乳动物在裂殖酵母细胞中表达的蛋白质是成功 12- - - - - - 17]。尽管裂殖酵母表达外源蛋白有很多优势,最好不要选择GPCR裂殖酵母的研究。

裂殖酵母内生遵循两种GPCR通路。一个是营养(葡萄糖)信号通路( 18),另一个是交配的途径。这种交配途径相似增殖蛋白激酶(MAPK)在哺乳动物细胞通路 19, 20.]。通常一个裂殖酵母细胞有丝分裂分裂的丰富的媒介。然而,暴露于营养饥饿(尤其是氮饥饿),细胞转化为有丝分裂与减数分裂的细胞发展成健壮的孢子通过信息素交流与相反的接合型耐环境压力( 20., 21]。一个交配类型+细胞( h+或P细胞)分泌信息素扩散肽,P因素编码 map2基因。另一个交配类型-细胞( h−或M细胞),接收由内生GPCR p因素,这是Mam2蛋白质编码 mam2基因( 22, 23]。信息素信号触发顺序和交配synergistical激活特定基因,导致后来形态变化结合相反交配类型( 23, 24]。

在这项研究中,我们提出了筛选系统通过内生与裂殖酵母交配途径找到许多孤儿GPCRs的配体。基因作为报告基因,强烈如LacZ或荧光素酶往往利用与酵母(GPCR试验 8- - - - - - 10, 25),但我们使用绿色荧光蛋白(GFP)专注于简单和便宜的相比,尽管非常微弱信号检测的基因。为了克服这一缺点,我们构建了驯良的记者质粒。

2。材料和方法 2.1。菌株和媒体

在这项研究中使用的菌株是列在表中 1。裂殖酵母细胞生长在电解加工(爱丁堡基本培养基,日出科学产品、钙、美国)或EMM-N (EMM -氮,日出科学产品)。转化株被镀到MMA(基本培养基琼脂,日出科学产品)或MMA补充亮氨酸为1.25% (120 μL /板)。

裂殖酵母株用于这项研究。

应变 基因型
OSP210 h−, leu1-32, ura4-D18, sxa2Δ
OSP210-0 h−, leu1-32, ura4-D18, sxa2Δ、pSU1Z pAL7
OSP210-1 h−, leu1-32, ura4-D18, sxa2Δ、pSU1Z pAL7-U dhc1-GFP-LPI
OSP210-2 h−, leu1-32, ura4-D18, sxa2Δ、pSU1Z pAL7-U mam2-GFP-LPI
OSP210-3 h−, leu1-32, ura4-D18, sxa2Δ、pSU1Z pAL7-U mam3-GFP-LPI
OSP210-4 h−, leu1-32, ura4-D18, sxa2Δ、pSU1Z pAL7-U rgs1-GFP-LPI
OSP210-5 h−, leu1-32, ura4-D18, sxa2Δ、pSU1Z pAL7-USPBC4.01-GFP-LPI
OSP210-6 h−, leu1-32, ura4-D18, sxa2Δ、pSU1Z pAL7-U spk1-GFP-LPI
OSP210-7 h−, leu1-32, ura4-D18, sxa2Δ、pSU1Z pAL7-U sxa2-GFP-LPI
OSP210-8 h−, leu1-32, ura4-D18, sxa2Δ、pSU1Z pAL7-U dhc1-GFP-D dhc1
OSP210-9 h−, leu1-32, ura4-D18, sxa2Δ、pSU1Z pAL7-U mam2-GFP-D mam2
OSP210-10 h−, leu1-32, ura4-D18, sxa2Δ、pSU1Z pAL7-U mam3-GFP-D mam3
OSP210-11 h−, leu1-32, ura4-D18, sxa2Δ、pSU1Z pAL7-U rgs1-GFP-D rgs1
OSP210-12 h−, leu1-32, ura4-D18, sxa2Δ、pSU1Z pAL7-USPBC4.01-GFP-DSPBC4.01
OSP210-13 h−, leu1-32, ura4-D18, sxa2Δ、pSU1Z pAL7-U spk1-GFP-D spk1
OSP210-14 h−, leu1-32, ura4-D18, sxa2Δ、pSU1Z pAL7-U sxa2-GFP-D sxa2
OSP210-15 h−, leu1-32, ura4-D18, sxa2Δ、pSU1Z pAL7-U mam2-GFP-DSPBC4.01
OSP210-16 h−, leu1-32, ura4-D18, sxa2Δ、pSU1Z pAL7-U mam3-GFP-DSPBC4.01
OSP210-17 h−, leu1-32, ura4-D18, sxa2Δ、pSU1Z pAL7-U sxa2-GFP-DSPBC4.01
OSP220 h−, leu1-32, ura4-D18, sxa2Δ, cyr1Δ
OSP220-0 h−, leu1-32, ura4-D18, sxa2Δ, cyr1Δ、pSU1Z pAL7
OSP220-2 h−, leu1-32, ura4-D18, sxa2Δ, cyr1Δ、pSU1Z pAL7-U sxa2-GFP-DSPBC4.01
OSP220-17 h−, leu1-32, ura4-D18, sxa2Δ, cyr1Δ、pSU1Z pAL7-U mam2-GFP-LPI
OSP230 h−, leu1-32, ura4-D18, sxa2Δ, mam2Δ,
OSP230-17 h−, leu1-32, ura4-D18, sxa2Δ, mam2Δ、pSU1Z pAL7-U sxa2-GFP-DSPBC4.01
OSP230-17n1 h−, leu1-32, ura4-D18, sxa2Δ, mam2Δ、pSU1Z pAL7-U sxa2-GFP-DSPBC4.01-P nmt1- - - - - - mam2
OSP230-17u1 h−, leu1-32, ura4-D18, sxa2Δ, mam2Δ、pSU1Z pAL7-U sxa2-GFP-DSPBC4.01-P urg1- - - - - - mam2
OSP230-17h1 h−, leu1-32, ura4-D18, sxa2Δ, mam2Δ、pSU1Z pAL7-U sxa2-GFP-DSPBC4.01-PhCMV - mam2
OSP230-17n2 h−, leu1-32, ura4-D18, sxa2Δ, mam2ΔpSU1Z-Pnmt1 - mam2,pAL7-U sxa2-GFP-DSPBC4.01
OSP230-17u2 h−, leu1-32, ura4-D18, sxa2Δ, mam2ΔpSU1Z-Purg1 - mam2,pAL7-U sxa2-GFP-DSPBC4.01
OSP230-17h2 h−, leu1-32, ura4-D18, sxa2Δ, mam2ΔpSU1Z-PhCMV - mam2,pAL7-U sxa2-GFP-DSPBC4.01
OSP230-2h2 h−, leu1-32, ura4-D18, sxa2Δ, mam2ΔpSU1Z-PhCMV - mam2,pAL7-U mam2-GFP-LPI

大肠杆菌应变DH5 α用于质粒的subcloning准备。

肽和寡核苷酸的合成是由操纵子有限公司(日本东京)。每个肽原液的制备1毫米Milli-Q水和储存在−80°C。

2.2。质粒结构和转换 2.2.1。基因的破坏

基因中断是由标准的同源重组方法。基因的质粒的详细施工中断是前面描述的 26]。短暂,约1000个基点的5′和3′侧翼序列被用作一个目标基因的染色体整合区域。删除 ura4选择标记, ura4基因被夹200 bp的3′侧翼序列的目标基因。消极的选择 ura4肽,细胞被镀上YES-FOA板块(0.5%的酵母提取物,3%葡萄糖和SP补充剂,Bacto琼脂2%,0.1% 5-fluoroorotic酸)。结果 ura4肽在随后的基因重组。

2.2.2。记者根据pAL7质粒

记者质粒设计基于pAL7这是一个高拷贝质粒裂殖酵母( 27]。示意图说明图中描述 1。主要的片段包括复制起点和选择标记放大使用引物从pAL7 pAL7invforward pAL7invreverse。片段与一系列特定的启动子的结扎,GFP, Lipocortin我(LPI)终结者。更换pheromone-dependent基因的启动子区域与每个上游区域,逆合成质粒用引物的PCR进行pAL7invreverse GFPORFforward。更换LPI终结者,逆使用引物进行PCR pAL7invforward GFPORFreverse。开放阅读框(ORF)用于本研究的GFP放大从怪物绿色荧光蛋白phMGFP向量(Promega日本,东京,日本)。LPI终结者被放大pSU1Z向量(朝日玻璃有限公司、东京、日本)。上游和下游地区放大从基因组DNA,和引物是列在表中 3

记者的示意图说明质粒结构。(a)结扎的碎片放大pAL7和含磷酸盐的片段包括一系列的启动子,GFP(箭头)和LPI终结者(满箱)。(b)启动子转化为任何上游地区(阴影和开放的三角形),和转换的LPI终结者到任何下游地区(阴影和开放的盒子)。(c)完成转换的上游和下游地区。表中列出的所有记者质粒 1建立了以这种方式。

2.2.3。<斜体> mam2 < /斜体>基因表达质粒

pSU1Z向量允许特定基因的表达的启动子血巨细胞病毒的控制下 ura4裂殖酵母染色体上的轨迹。来表达 mam2其它促进剂基因的控制下,我们启动子与血巨细胞病毒所取代 nmt1 urg1启动子。该地区的 nmt1发起人是指pREP1矢量和 urg1该地区被称为瓦特报告等。 28]。镇压的 nmt1子,超过15 μM硫胺素被添加到培养基中。诱导的 nmt1子,新鲜的电解加工没有硫胺素的细胞被孵化20小时。pre-incubation期间, urg1子一直紧尿嘧啶的缺失。相反, urg1启动子在试验持续激活的氮饥饿。

PCR产品用于质粒的建筑都是准备使用KOD-plus-Neo (Toyobo,大阪,日本)按照供应商的指令。所有的碎片没有复制的起源 大肠杆菌与T4多核苷酸磷酸化激酶(Toyobo)和连接反应的进行和Ligation-Convenience工具包(日本东京日本基因)。每一个质粒的序列是由核苷酸序列分析验证。

2.2.4。转换

裂殖酵母被转换使用醋酸锂方法( 27, 29日]。转化细胞被镀到MMA板或与亮氨酸MMA板补充。板块在32°C 2 - 3天,孵化和积极的殖民地被选中。检查正确的集成PCR进行提取的DNA混合使用SapphireAmp快速PCR大师(豆类生物有限公司,首先,日本)。所有的亲代菌株在这项研究中缺乏的功能 leu1+和 ura4+。在分析之前, leu1-32补充了LEU2源自pAL7(或其衍生物)和 ura4-D18补充了 ura4基因来自pSU1Z向量(或其衍生产品)。

2.3。分析 2.3.1。时间分析

细胞生长在电解加工在32°C 24-36小时,被接种到5毫升的新鲜的电解加工。然后在30°C细胞种植20小时,收获。与无菌水清洗两次后,这些细胞被转移到试验中给一个初始光密度1.5在600海里。立即P-factors被添加在最后一集中的1或0 μ500年m细胞 μL是每小时(0 - 6 h),两个小时(6 - 12小时),或12小时(12到24小时)。整除resuspended在500年 μL Milli-Q水后洗一次。生产的GFP荧光强度的细胞由日立f - 2700测量荧光分光光度计(日立、日本东京)。相对荧光强度平均,计算样本的比例控制应变窝藏pAL7而不是记者质粒(OSP210-0或OSP220-0)。拍摄该照片在蔡司Axiovert 200倒置显微镜与AxioCam MRm造相机由Axiovision控制。使用独立的转化株进行化验。

2.3.2。存在剂量依赖的相关性分析

预培养后,细胞被转移到EMM-N给一个初始光密度1.5在600海里。细胞暴露于每个p因素集中在30°C孵化24小时,和荧光强度测量。规范化数据适合方程: E = E 马克斯 / ( 1 + 经验值 ( γ * ( ln ( 电子商务 50 ] - - - - - - ln ( x ] ) ] ) E 代表当前响应在每个p因素的浓度, x E 马克斯 是最大的反应。 电子商务 50 是p因素产生半最大反应的浓度。 γ是希尔系数。

3所示。结果 3.1。驯良的记者质粒从pAL7发达

准备转化株对记者分析,我们建立新的记者质粒与温顺和敏感度。记者质粒让这些转化株产生绿色荧光蛋白(GFP)通过Mam2-P-factor信号转导通路(交配途径)。来确定最合适的pheromone-dependent记者地区记者质粒,我们专注于7基因,据报道,大大激活添加p因素( 24, 30.]。这些基因的上游地区被用作GFP的诱导启动子。作为GFP的下游地区,我们使用LPI终结者,并正确地做一个基因裂变酵母细胞的终结者。每一个合成质粒(列在表 2)变成了 sxa2Δ应变,OSP210 ( h−, leu1-32, ura4-D18, sxa2Δ)。的原因 sxa2基因被删除是因为Sxa2蛋白是特定的肽酶p因素。应对1或0 μM p因素的氮饥饿下表所示 2。所有上游地区以外的 dhc1上游地区表达绿色荧光蛋白。的 mam2上游地区的反应比别人更强烈。然而,信号噪声比(信噪比) mam3 sxa2上游地区是更好的比 mam2上游地区。接下来,我们决定是否更适合一些下游地区3′UTR GFP比LPI终结者,因为据报道,3′UTR mRNA监管它的稳定性和表达水平的影响 31日]。LPI终结者记者地区的每一个质粒与下游地区取代了对应于其上游地区复制本机基因组上下文。的结合 dhc1地区没有回应,表明转录可能定位在开放的重要地区以外的地区或用于本研究。的 spk1下游地区下降背景下p因素的缺失。的 mam2 mam3下游地区明显降低p因素的响应,而的 sxa2显示小区别LPI终结者。SPBC4.01和 rgs1下游地区提高了响应显著,但很明显 rgs1下游地区提出了不依赖p因素的表达水平。为了准备适当的地区,记者 mam2, mam3, sxa2上游地区大概包括强烈pheromone-dependent上游激活序列结合SPBC4.01下游地区。正如我们所料,的结合 sxa2上游和下游SPBC4.01地区提高了背景响应几乎没有增加。因此,最好的信噪比得到这个组合。我们详细地调查了两个记者质粒;一个是pAL7-U mam2-GFP-LPI包括最强烈的地区,另一个是pAL7-U记者 sxa2-GFP-DSPBC4.01的记者地区表现出最好的信噪比。

记者质粒和GFP生产转化株。

质粒名称 记者的记者质粒 合成应变 荧光强度在 信噪比c
上游 记者 下游 0 h 24小时(−)一个 24小时(+)b
pAL7-U dhc1-GFP-LPI dhc1 绿色荧光蛋白 LPI OSP210-1 1.07 (±0.12) 1.02 (±0.03) 1.05 (±0.04) 1.03
pAL7-U mam2-GFP-LPI mam2 绿色荧光蛋白 LPI OSP210-2 1.14 (±0.10) 4.05 (±0.43) 28.62 (±5.74) 7.07
pAL7-U mam3-GFP-LPI mam3 绿色荧光蛋白 LPI OSP210-3 1.05 (±0.10) 1.02 (±0.10) 7.66 (±2.21) 7.51
pAL7-U rgs1-GFP-LPI rgs1 绿色荧光蛋白 LPI OSP210-4 1.52 (±0.14) 1.88 (±0.23) 4.12 (±0.98) 2.19
pAL7-USPBC4.01-GFP-LPI SPBC4.01 绿色荧光蛋白 LPI OSP210-5 1.06 (±0.13) 1.09 (±0.06) 3.75 (±2.64) 3.44
pAL7-U spk1-GFP-LPI spk1 绿色荧光蛋白 LPI OSP210-6 1.15 (±0.08) 1.58 (±0.18) 3.71 (±0.74) 2.35
pAL7-U sxa2-GFP-LPI sxa2 绿色荧光蛋白 LPI OSP210-7 1.05 (±0.09) 1.05 (±0.09) 9.82 (±2.09) 9.35
pAL7-U dhc1-GFP-D dhc1 dhc1 绿色荧光蛋白 dhc1 OSP210-8 1.07 (±0.12) 1.02 (±0.03) 1.06 (±0.05) 1.04
pAL7-U mam2-GFP-D mam2 mam2 绿色荧光蛋白 mam2 OSP210-9 1.04 (±0.13) 1.15 (±0.20) 6.46 (±1.06) 5.62
pAL7-U mam3-GFP-D mam3 mam3 绿色荧光蛋白 mam3 OSP210-10 1.05 (±0.13) 0.99 (±0.11) 4.02 (±1.68) 4.06
pAL7-U rgs1-GFP-D rgs1 rgs1 绿色荧光蛋白 rgs1 OSP210-11 1.44 (±0.09) 2.36 (±0.90) 7.96 (±3.27) 3.37
pAL7-USPBC4.01-GFP-DSPBC4.01 SPBC4.01 绿色荧光蛋白 SPBC4.01 OSP210-12 1.05 (±0.08) 1.03 (±0.31) 7.84 (±1.85) 7.61
pAL7-U spk1-GFP-D spk1 spk1 绿色荧光蛋白 spk1 OSP210-13 1.17 (±0.15) 1.25 (±0.03) 4.64 (±1.31) 3.71
pAL7-U sxa2-GFP-D sxa2 sxa2 绿色荧光蛋白 sxa2 OSP210-14 1.12 (±0.17) 1.03 (±0.06) 8.43 (±2.91) 8.18
pAL7-U mam2-GFP-DSPBC4.01 mam2 绿色荧光蛋白 SPBC4.01 OSP210-15 0.99 (±0.02) 1.21 (±0.15) 6.99 (±3.19) 5.78
pAL7-U mam3-GFP-DSPBC4.01 mam3 绿色荧光蛋白 SPBC4.01 OSP210-16 1.03 (±0.03) 0.99 (±0.08) 6.40 (±2.96) 6.46
pAL7-U sxa2-GFP-DSPBC4.01 sxa2 绿色荧光蛋白 SPBC4.01 OSP210-17 0.99 (±0.04) 1.06 (±0.05) 15.54 (±3.09) 14.66

每个值的荧光强度是指(±SD)从以上三个独立的实验。一个没有p因素(−):孵化。b(+):孵化与p因素。c信噪比:信噪比,信噪比得到荧光强度除以24 h(+),在24 h (−)。

引物信息。

引物名称 目标基因 地区一个 转发(5′ 3′) 反向(5′ 3′)
pAL7inv GAGCAAAAGGCCAGCAAAAG AACCGTATTACCGCCTTTGA
GFPORF ATGGGCGTGATCAAGCCCG TTAGCCGGCCTGGCGGGGT
dhc1向上 SPAC1093.06c / dhc1 −1044 AAGCACGCGCTCTAATTCAT GGTGTCAAGAAAACTTGACCG
dhc1dw + 958 AACTTGAAACTATTTGTTGTTTACTA GAATCTGAGGTTGATGTTGAA
mam2向上 SPAC11H11.04 / mam2 −1068 CATCGGGATTGCATTGAGAGT AATGTCAGAGGGAGCAAGAACA
mam2dw + 1010 CTTACGCCTGAATGTATCTTT ACTCAAAGCCATAACTGTGC
mam3向上 SPAP11E10.02c / mam3 −1041 TTTTAGAAAGTGTCTATTGTACC GACGAATTATGGGAAGATCAAG
mam3dw + 997 ATAAAGTTAATGTTTTATATTTATTTTACA ACTGAGAATGTCGTCTGTCC
rgs1向上 SPAC22F3.12c / rgs1 −1118 GGCAGGTGTAAGAAGCGTTG CCAAAGCTGATTCTTACTTTTACGA
rgs1dw + 944 TGCATAGAAAACAATCGTGT CGAAAGAATCCTGCTGTTAC
SPBC4.01up SPBC4.01 −985 CCCATCTGGGTGAAAGAGTG CCATTCTTAAACCGTAATTTTAAATTG
SPBC4.01dw + 992 ACAAACATAAATAAGATTTTGTAAAC AATTATTGCTGTCGCCGAAC
spk1向上 SPAC31G5.09c / spk1 −1040 GGACGCCAAGGGAAATTTAT TAGACTACAAATTGAAAAACTTGAAAG
spk1dw + 958 AAAGCTTCAACTAGAATTCTCCT CAACCGATGACGGTATTTAT
sxa2向上 SPAC1296.03c / sxa2 −1363 AGATTATGGGGTAGTGGGTTC GCATTGAAAAGAGAGACAATGA
sxa2dw + 945 AAGTTTAATATCGGAAAATTTAA CGGAAGTTAGGCTTGTGTGC

一个地区代表如何远离ATG或目标基因的终止密码子是羊痘疮。

我们探讨了时间窝藏pAL7-U GFP的生产菌株 mam2-GFP-LPI (OSP210-2)或pAL7-U sxa2-GFP-DSPBC4.01 (OSP210-17)。压力被暴露于1或0 μM p因素在氮饥饿(图 2(a))。应变OSP210-2不仅与强度表现出响应速度,使它能够区分的积极反应后3小时内添加p因素。然而,细胞产生可衡量的GFP蛋白没有添加p因素。相反,pAL7-U sxa2-GFP-DSPBC4.01引起细胞产生小GFP蛋白p因素的缺失。最大值是相对较高的,积极的信号可以歧视后5小时内添加p因素。这些结果与荧光显微镜的观察(图 2(b))。在这两种菌株,发光细胞开始出现时GFP信号被检测到的荧光光谱仪。和细胞的伸长身体形成什穆也观察到,这是典型的接待p因素引发的反应( 23]。奇怪的是,压力OSP210-2开始伸长比应变OSP210-17早大约两小时。我们也探讨了GFP存在剂量依赖的相关性(图生产 2(c))。响应曲线形成清晰的表明,Mam2-P-factor交互定量测量了这些菌株。他们的EC50值不显示菌株之间的显著差异。建议后续的信号转导通路的效率必须保持不受增加质粒的拷贝数的影响。

时间和剂量依赖性反应与记者质粒p因素。(一)时间响应与要么pAL7-U p因素 mam2-GFP-LPI或pAL7-U sxa2-GFP-DSPBC4.01。细胞暴露在1或0 μM p因素和被每小时(0 - 6 h),两个小时(6 - 12 h)或12小时(12到24小时)。实心圆描绘OSP210-2 ( sxa2Δ,pAL7-U mam2-GFP-LPI) + p因素,开环描绘OSP210-2−p因素,充满了平方描绘OSP210-17 ( sxa2Δ,pAL7-U sxa2-GFP-DSPBC4.01) + p因素和开放广场描绘OSP210-17−p因素。的值都是一式三份的意思决定从一个典型的实验。误差棒表示±标准错误。培养基(2 (b)整除 μL)被安装在荧光显微镜幻灯片和可视化。添加p因素后,形态逐渐改变,GFP的生产增加。比例尺= 10 μ米,(c)剂量依赖性反应。细胞被暴露在各种浓度的p因素和孵化24小时后添加p因素。实心圆描绘OSP210-2 ( sxa2Δ,pAL7-U mam2-GFP-LPI)和填充平方描绘OSP210-17 ( sxa2Δ,pAL7-U sxa2-GFP-DSPBC4.01)。 Y 设在表示最大响应的一个百分比。的值都是一式三份的意思决定从一个典型的实验。

3.2。<斜体> cyr1 < /斜体>Δ应变与记者质粒

腺苷酸环化酶编码 cyr1基因是经常在交配通路从试验中删除。的 cyr1Δ应变展览本构饥饿不管氮和碳的存在( 32]。随时准备好接受配体的优势在交配试验系统的途径,所以我们检查的影响 cyr1删除与记者质粒。细胞暴露在1或0 μM p因素下氮的存在与否,和时间响应测量(图 3)。氮的存在下, cyr1Δ应变窝藏pAL7-U mam2-GFP-LPI在12 h (OSP220-2)反应最强烈。压力没有p因素相比,绿色荧光蛋白的差异生产开始出现3 h和完全区分4 h和超越。然而,这些菌株已经表现出高背景在0 h。另一方面, cyr1Δ应变窝藏pAL7-U sxa2-GFP-DSPBC4.01 (OSP220-17)成为区分4 h。此外,压力没有p因素没有产生GFP蛋白。意料之中的是, cyr1+应变窝藏pAL7-U sxa2-GFP-DSPBC4.01 (OSP210-17)有或没有p因素并没有显示在氮的响应。有趣的是, cyr1+应变窝藏pAL7-U mam2-GFP-LPI (OSP210-2)可以应对由12 h p因素通过即使在氮的存在。在没有氮的情况下, cyr1Δ应变OSP220-2是背景,开始产生GFP高约3 h在氮的存在一样。然而,这一毒株没有提高我们预期的响应。的 cyr1Δ应变OSP220-17成为区分早于大约一个小时 cyr1+应变OSP210-17,响应的强度也有所提高。的 cyr1删除很有效的应变OSP220-17不管氮的存在。

对比 cyr1Δ和 cyr1+窝藏记者菌株质粒。细胞暴露在1 μM p因素的存在的氮(a)和氮(b)和缺席的情况下被每小时(0 - 6 h)或6小时(6 - 12 h)。实心圆描绘OSP210-2 ( sxa2Δ, cyr1+,pAL7-U mam2-GFP-LPI) + p因素,开环描绘OSP210-2−p因素,充满了平方描绘OSP210-17 ( sxa2Δ, cyr1+,pAL7-U sxa2-GFP-DSPBC4.01) + p因素,开放广场描绘OSP210-17−p因素,三角形描述OSP220-2 ( sxa2Δ, cyr1Δ,pAL7-U mam2-GFP-LPI) + p因素,开放三角形描述OSP220-2−p因素,满钻石形状描述OSP220-17 ( sxa2Δ, cyr1Δ,pAL7-U sxa2-GFP-DSPBC4.01) + p因素,和开放的钻石形状描述OSP220-17−p因素。的值都是一式三份的意思决定从一个典型的实验。

3.3。异位<斜体> mam2 < /斜体>应变窝藏记者质粒表达

作为外源GPCR的模型试验与记者质粒 mam2基因表达ectopically内生其他启动子的控制下 mam2Δ应变,OSP230 ( h−, leu1-32, ura4-D18, sxa2Δ, mam2Δ)。三个推动者被用来表达 mam2基因;第一个是没有消息硫胺素1 ( nmt1)启动子,这是最常见的诱导启动子和展品最强的裂殖酵母中表达 33, 34];第二个是尿嘧啶regulatable 1 ( urg1)启动子,这是一种可诱导的启动子和表达了适度。而 urg1启动子是压抑的去除尿嘧啶的媒介,这是最大限度地引起的尿嘧啶或氮的去除 28];第三是人类巨细胞病毒()血巨细胞病毒启动子强启动子的激活既定的( 35]。的 mam2驱动基因在染色体整合向量的裂殖酵母,pSU1Z向量(或其衍生物)或记者质粒(图 4(a))。转换引入受体和记者同时执行。当父母的应变OSP230 co-transformed 150 ng记者的质粒和150 ng的线性化集成向量,37 ( SD ± 14 )殖民地出现了。暴露于1 μM p因素,充分响应可以检测到5 mam2下面表达式模式6,略有下降,在本机表达式模式(图 4(b))。也许太多的积累Mam2蛋白质阻碍的应变OSP230-17h1 GFP生产 mam2是持续表达的启动子血巨细胞病毒的控制下在高拷贝质粒。另一方面,GFP生产不是由本构抑制染色体表达的 mam2表达式是小于游离表达式。诱导 nmt1启动子的游离和染色体表达毫无区别。在本实验条件下的细胞pre-incubated 20 h, mam2基因诱导表达的强烈 nmt1启动子为2 - 5 h后细胞的胞内硫胺素完全进行了身体。调节pre-incubation时间可能提高响应。尽管硫胺素, nmt1启动子并不是完全压抑。这个结果正好与前面的数据 28]。的 urg1启动子并没有表现出显著差异游离和染色体之间的表达式。在这两种菌株,非常容易操作 urg1子以来,在本实验条件下自动抑制和诱导。虽然我们与pAL7-U遵循同样的步骤 mam2当我们与pAL7-U -GFP-LPI sxa2-GFP-DSPBC4.01,试验已经错了。我们不能分析的原因是没有回应的细胞聚集形成p因素在preculture(图 4(c))。

异位 mam2表达 mam2Δ压力。(一)异位的图式策略 mam2表达内源性 mam2Δ压力。离开了, mam2基因(灰色箭头)驱动的记者质粒。来补充 ura4基因,空pSU1Z向量被引入 ura4在染色体位点。对的, mam2基因pSU1Z向量被引入 ura4轨迹。灰色的五角大楼中启动子, nmt1启动子, urg1启动子或启动子血巨细胞病毒。两个质粒(记者和受体)改变了在同一时间。(b) mam2基因表达的控制下 nmt1启动子, urg1启动子或启动子血巨细胞病毒染色体或质粒的记者。OSP210-17被用作积极控制。OSP230-17被用作负控制,没有表达 mam2基因启动子的控制下。细胞暴露在1 μM p因素和孵化了0 h(打开盒子),3 h(阴影盒),6 h(灰色框),或12 h添加p因素后(满箱)。压力包括 nmt1启动子是化验0(上)或15(上) μ硫胺素的M。的 urg1启动子是持续激活下氮饥饿。的值都是一式三份的意思决定从一个典型的实验。误差棒表示±标准错误。(c)上,preculture应变OSP230-17 h2表达媒介 mam2基因的控制下染色体与pAL7-U子血巨细胞病毒 sxa2-GFP-DSPBC4.01。低,preculture介质的应变OSP230-2 h2表达 mam2基因的控制下染色体与pAL7-U子血巨细胞病毒 mam2-GFP-LPI。

4所示。讨论 4.1。新记者系统

记者本研究系统构建是相当容易处理。甚至这些记者质粒很容易转换效率高的同时介绍了染色体整合向量。此外,质粒非常灵活,很容易重建;例如,选择标记可以改变根据实验室股票品种的基因型。此外,作为检测产生足够的GFP在这个试验系统,报告基因不必是一个强烈的如lacZ或荧光素酶,需要检测的底物降解敏感的读出。作为一个记者的质粒,我们认为的组合 sxa2上游地区和SPBC4.01下游地区是最适合由于最好的信噪比。细胞应对p因素开始出现在5 h,成为明显的发光6 h,而一些发光细胞出现24 h p因素的缺失。的结合 mam2上游地区和LPI终结者反应最迅速而强烈的反应,开始在3 h,成为绝对的4 h。然而,我们不能推荐使用记者地区,有两个原因:首先,因为过高的背景(许多发光细胞内出现8 h和信噪比不是很好与他人相比),其次是因为非特异性聚合容易形成。

4.2。记者质粒和<斜体> cyr1 < /斜体>删除

在pAL7-U的结合 sxa2-GFP-DSPBC4.01, cyr1删除有正反两方面的影响。积极方面是,试验介质不是有限的,细胞反应几个小时前。消极方面的 cyr1Δ菌株变得更难对付;例如,它花了很长时间把(最大OSP210-17倍增时间→OSP220-17: 3.20 h→4.76 h在电解加工30°C)和转换效率成为显著降低(约一百)。除了这些缺点,更糟的是发生了什么 cyr1Δ应变窝藏pAL7-U mam2-GFP-LPI。根据氮饥饿, cyr1Δ应变反应那么强烈 cyr1+压力。一种解释可能是,有一个最优差pre-incubation时间最大限度地应对p因素之间的应变OSP220-2和其他菌株。这是暗示为了留住pAL7-U mam2-GFP-LPI,细胞内的条件必须稍微影响(在下面描述)。

4.3。异位<斜体> mam2 < /斜体>表达式

外源GPCRs模型,我们表达 mam2基因的三种启动子的控制下 mam2Δ压力。它从根本上方便相关实验记者质粒表达受体基因,尽管巨大的受体表达可能导致问题的回应。的表达式 nmt1 urg1启动子高拷贝质粒对p因素的接待,几乎没有什么影响,但降低响应的应变 mam2基因结构上所表达的启动子高拷贝质粒血巨细胞病毒。建议太多Mam2生产可能造成的蛋白质反应,而对细胞有害的影响( 36]。因此,它是必不可少的在有丝分裂期间抑制异种GPCR表达式。事实上, nmt1启动子可以繁殖响应尽管展示强大的表达启动子血巨细胞病毒。当试验与 urg1启动子进行,操作非常简单,因为细胞自动压抑和诱导系统。然而,请注意,诱导 urg1启动子可以依赖于细胞内的条件( 28),所以 cyr1Δ应变可能无法压抑的表达 urg1启动子的 cyr1+压力。

4.4。细胞内的影响pAL7-U <斜体> mam2 < /斜体> -GFP-LPI

Cyr1蛋白质需要通过营养途径感知不是氮而是碳资源( 37]。事实上, cyr1删除使细胞无法感知的碳资源。然而,碳饥饿并不导致自噬的减数分裂,由氮饥饿诱导( 38]。的原因 cyr1删除(碳饥饿模仿)影响交配途径大概是因为它促进的表达 ste11基因通常在几个胞内信号转导途径中发挥着关键作用包括不仅交配通路还营养信号和压力信号通路( 30., 37]。在这项研究中,有一些间接的证据表明这类的 ste11感应的 cyr1+应变窝藏pAL7-U mam2-GFP-LPI (OSP210-2)。应变OSP210-2可以应对p因素即使在氮(图的存在 3)。此外,形态变化大约两个小时前取得进展比应变OSP210-17(图 2(b))。启动子和/或激活区域必须与GFP生产,但地区不太可能影响形态学改变。这是暗示DNA或RNA来自pAL7-U mam2-GFP-LPI了 ste11基因更容易诱导与压力反应和营养情况常常如此饥饿。

确认

作者要感谢博士Hideki Tohda(朝日玻璃有限公司、神奈川、日本)的技术援助和请提供质粒(pAL7和pSU1)和酵母菌株ARC010 ( h−, leu1-32, ura4-D18),所有菌株在这项研究中。这项工作是支持的创造性的科学研究(没有的补助金。19 gs0418)从日本促进社会科学和先进技术研究所的基础。

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