SCI 干细胞国际 1687 - 9678 1687 - 966 x Hindawi出版公司 10.1155 / 2016/2639728 2639728 研究文章 小说的方法分析液释放内皮细胞和内皮祖细胞 Jinju 1 Runmin 2 3 雅可布 布拉德利 4 程ydF4y2Ba Suhong 5 Iwuchukwu Ifeanyi 6 盖恩斯 肯尼斯·J。 4 程ydF4y2Ba 李赛 1、2、4 Simman 理查德。 1 Lv Guiyuan 5 2 Bihl 霁C。 1 杜米尼克 1 药理学和毒理学 Boonshoft医学院 莱特州立大学 代顿 哦45435 美国 wright.edu 2 心内科 广东医科大学的附属医院 湛江 广东524001年 中国 gdmc.edu.cn 3 健康科学学院 武汉体育大学 武汉 湖北430079年 中国 wipe.edu.cn 4 神经学部门和内科 Boonshoft医学院 莱特州立大学 代顿 哦45435 美国 wright.edu 5 浙江中医药大学 杭州 浙江310053年 中国 zcmu.edu.cn 6 神经学部门 奥克斯纳医疗中心 杰佛逊 70121年拉 美国 ochsner.org 2016年 28 3 2016年 2016年 08年 12 2015年 25 02 2016年 2016年 版权©2016王Jinju et al。 这是一个开放的文章在知识共享归属许可下发布的,它允许无限制的使用,分布和繁殖在任何媒介,提供最初的工作是正确的引用。

液(练习)是细胞衍生的囊泡,调解信息交流,可以作为生物标志物。这里我们描述新方法的净化和表现型练习释放内皮细胞(ECs)和内皮祖细胞(epc)结合微和荧光量子点(q导®)技术。练习从ECs的培养基和内皮祖细胞分离和检测特异性抗体共轭微和第二抗体结合q导(NTA)系统通过使用纳米粒子跟踪分析。细胞起源的敏感标记对ECs (CD105, CD144)和内皮祖细胞(CD34、KDR)进行评估。敏感性和特异性是由使用积极的和消极的标记进行练习(CD63)、血小板(CD41),红细胞(CD235a)和微泡(膜联蛋白V)。此外,该方法进一步验证particle-free等离子体和患者样本。结果表明,anti-CD105 / anti-CD144和anti-CD34 / anti-KDR敏感性和特异性最高的隔离和检测EC-EXs EPC-EXs,分别。方法的整体回收率超过70%,能够检测到循环的动态变化EC-EXs EPC-EXs急性缺血性中风。总之,我们已经开发出敏感和特定的微/ q导荧光NTA EC-EX和EPC-EX隔离和检测方法,它将促进功能性研究和生物标志物的发现。

1。介绍

细胞外液(练习)纳米囊泡,来自多泡endosomal隔室( 1- - - - - - 3]。释放后,练习可以流传在细胞外空间相邻的释放或进入生物体液(如血浆、尿液和脑脊液)。最近的研究表明,练习携带父母细胞的基因和蛋白质组学的内容( 4, 5]。此外,越来越多的证据表明,练习是细胞间通讯的重要介质和生理和病理生理过程中起着至关重要的作用。他们已经被证明参与炎症,肿瘤发生,心血管疾病等等 6- - - - - - 10]。因此,更好的理解练习的表现型biofluids是必需的。然而,有限的研究显示特定的隔离和检测协议从biofluids练习。虽然传统的隔离技术,如超速离心法和密度梯度分离,可以实现组练习,这些技术不能单独的特定表型的练习前化合物由于其相似的大小和浮力密度( 11]。

微粒子超顺磁的是共轭高度特定抗体的特定抗原在细胞表面。他们通常用于分离和浓缩特定细胞亚种群通过涂布抗体( 12]。因为练习携带父母细胞的抗原,它是合理的假设特定antigen-conjugated微磁可以用于隔离,净化和浓缩。纳米粒子跟踪分析(NTA)是一种新技术,可以检测囊泡小30 nm直径( 13, 14)和计数的特定子组练习使用抗体共轭荧光探针称为量子点(q导) 6, 15]。应用q导和荧光NTA表型特定循环细胞外囊泡,syncytiotrophoblast-derived微泡,和上皮肿瘤细胞衍生的练习已经证明( 15, 16]。根据这些观察,我们假设特异性抗体共轭微结合荧光q导能够隔离和表型从biofluids练习,尤其是对于那些暴露不止一个母细胞的表面抗原。

为开发方法,在这项研究中,我们使用一个特定的内皮细胞表面抗原(ECs)或内皮祖细胞(EPC)来捕获练习从培养ECs释放或内皮祖细胞,然后我们探索与其他电子商务或EPC特定表面抗原表型捕获的练习。我们所知,这是第一个工作描述微的结合,荧光q导,NTA检测特定的练习。此外,我们可以准确的EC-EXs EPC-EXs从人血浆使用方法。

2。材料和方法 2.1。准备练习从细胞培养介质

人类大脑微血管ECs买来电池系统(柯克兰,佤邦)和培养CSC完全培养基中含10%血清,2%的人类重组生长因子,和0.2%的抗生素溶液标准细胞培养条件下(5%股份有限公司2,37°C)。细胞培养基是改变了每周两次。段落4到13的ECs被用于实验研究。内皮祖细胞从Amsbio购买。EC-EX准备,ECs挑战与CSC介质(细胞系统)补充2%的人类重组生长因子和0.2%的抗生素24人力资源解决方案。EPC-EX准备,内皮祖细胞与EPC挑战基础培养基(Amsbio)和0.2%的抗生素24人力资源解决方案。然后,细胞中收集和离心机在300克15分钟,随后在2000 g离心30分钟去除细胞和细胞碎片。脱细胞培养基离心机在20000克70分钟,然后离心器在170000克6小时缩短到颗粒的练习。颗粒状的练习与20 nm resuspended过滤(绘画纸、匹兹堡、PA)磷酸盐(PBS)和NTA整除。

2.2。隔离的EC-EXs和EPC-EXs EC和EPC培养基用Anti-CD105——或者Anti-CD34-Conjugated微

根据制造商的指示,修改,颗粒状的练习与10孵化 μL (Biotin-conjugated anti-CD105 ECs(具体),anti-CD41血小板(具体),anti-CD235a红细胞(具体),或anti-CD34 epc(具体)抗体(Miltenyi研究)在100年 μL反应体积为2小时,其次是增加10 μL (anti-Biotin微(Miltenyi研究),分别。然后,一块磁铁模块应用于独立microbeads-labeled总前悬挂的练习。一夜磁铁分离后,液体被温柔地远离磁铁,被认为是废物。微磁约束练习resuspended 100 μL过滤PBS和添加10 μL multisort释放试剂(Miltenyi研究)10分钟断开的微磁练习按照制造商的指示。然后,所有样本与150年补充道 μL过滤PBS最后卷250 μL和被放置在一个磁铁(DynaMag-2;生命技术)的发布微过夜。第二天,收集并视为CD105流体+,CD41+,CD235a+,或者CD34+练习。孤立的练习都是枚举通过NTA NS300系统(莫尔文仪器)。净化效率计算microbead积极练习的数量除以总数量的练习。

2.3。免疫荧光标记的CD105 <一口> + < /一口>练习和CD34 <一口> + < /一口>练习与q导

孤立的CD105+或CD34+练习与其他组主要抗体,然后孵化goat-against CD144 ECs(具体),goat-against KDR epc(具体),goat-against膜联蛋白V (MVs具体),或goat-against CD63练习(具体)(1:200稀释;圣克鲁斯生物技术),2小时,其次是孵化兔抗体免疫球蛋白结合q导655(1:350稀释;生命技术)90分钟rt,过滤PBS被添加到前悬挂给最终成交量为700 μl .所有样品分析NTA NS300系统(英国莫尔文仪器)。

2.4。纳米粒子跟踪分析

的NanoSight NS300 405 nm激光仪器(英国莫尔文仪器)是用于检测练习没有标签或标记与稳定的荧光团。NanoSight聚苯乙烯乳胶校准珠子、100 nm和200 nm),应用于检查仪器性能。在这项研究中,稀释悬浮液含练习被加载到样品室,和相机水平维持在10光散射模式和16岁之间的荧光散射模式样本。氮川三乙酸光散射模式使用相机过滤器1,和荧光模式使用的相机过滤器2长传球430纳米过滤器。三个视频通常30秒的持续时间,以每秒30帧的帧速率。NTA 3.0软件分析的数据(莫尔文仪器)进行优化,首先识别并跟踪每个粒子在一帧一帧的基础上。

2.5。计算双标记检测和整体效率的练习

CD105的探测效率+q导+练习和CD34+q导+练习计算如下:(CD105+q导+)练习% = (CD105的数量+q导+练习)/ (CD105的总数+练习);(CD34+q导+)练习% = (CD34的数量+q导+练习)/ (CD34的总数+练习)。测量CD105的整体效率+q导+练习或CD34+q导+练习计算如下:(CD105+)练习% = (CD105的数量+q导+练习)/(练习的总数);(CD34+)练习% = (CD34的数量+q导+练习)/(练习)的总数。

2.6。蛋白质和免疫印迹分析

蛋白质从EC-EXs EPC-EXs与裂解缓冲隔离(热科学、FL)含有蛋白酶抑制剂。蛋白质浓度测定进行了使用布拉德福德化验设备(Bio-Rad实验室)。BSA的测定的线性范围从0.2到0.9毫克/毫升。板块在595 nm阅读使用荧光谱仪(BioTek仪器)。免疫印迹分析,蛋白质电泳和转移到PVDF膜。膜被封锁的孵化与5%的奶粉1小时,其次是孵化主要抗体在一夜之间在4°C。主要的抗体使用anti-CD63 (1: 400;BD生物科学),anti-CD105 (1: 500;Santa Cruz), anti-CD34(1: 500年,圣克鲁斯) β肌动蛋白(σ1:4000)。彻底清洗后,膜与辣根孵化peroxidase-conjugated免疫球蛋白g (1: 40000;杰克逊ImmunoResearch实验室)在室温下1小时。屁股被发达国家增强化学发光与发展中解决方案。

2.7。TEM EC-EXs EPC-EXs

练习从EC和EPC条件培养基是固定的2%戊二醛和后缀的1%锇(都从电子显微镜购买科学,哈特菲尔德,PA),然后他们嵌入Spurr树脂(σ,圣路易斯,密苏里州)和烤60°C根据制造商的指示和我们之前的研究 17]。超薄部分(60 - 80 nm)与MT7000准备,安装在300 -铜网格,网格和染色与醋酸双氧铀及柠檬酸铅。所有样本检查EM 208(飞利浦)透射电子显微镜在加速电压70 KV。

2.8。复苏的EC-EXs和EPC-EXs Particle-Free等离子体

人类血浆稀释5倍PBS过滤和离心20分钟的200克。上层清液离心机在20000克70分钟,其次是超速离心法在170000克6小时。后上层清液由NTA超速离心法进行了分析,认为particle-free等离子体。已知量(6×108粒子)EC-EXs或EPC-EXs隔绝ECs,内皮祖细胞加入1毫升的准备particle-free等离子体。EC-EXs / particle-free等离子体和EPC-EXs / particle-free等离子体混合物在20000 g离心机在4°C为70分钟,然后离心器在170000克6小时缩短到颗粒恢复EC-EXs EPC-EXs。恢复EC-EXs和EPC-EXs resuspended anti-CD105 - PBS过滤然后孤立anti-CD34, anti-CD41或anti-CD235-conjugated NTA微和分析。同样,恢复微积极练习与anti-CD144探测,anti-Annexin V - anti-KDR或anti-CD63-conjugated q导并随后分析,荧光NTA。回收率计算微积极练习的数量除以总数量的练习。同样,检测和恢复CD105的整体效率+q导+练习和CD34+q导+练习计算如上所述。

2.9。研究对象

本研究招募了16缺血性中风患者的神经病学奥克斯纳医学中心。外周血(3毫升)收集缺血性中风患者入院时天(第一天)卒中后发生。16个病人分为两组:一组为cEC-EXs分析( n = 8 );另一组是用来检测cEPC-EXs ( n = 8 )。排除标准为本研究的主题包括下列情况:(1)上月传染病;(2)自身免疫性疾病的历史,末梢血管疾病,或中风;(3)短暂性脑缺血发作、脑梗死和脑出血;(4)肝功能衰竭和急性或慢性肾脏疾病;(5)近期心肌疾病在过去的3个月;(6)药物脂质控制,抑制,炎症或免疫抑制;和(7)历史的癌症。所有实验协议被部门批准奥克斯纳医疗中心和神经病学的IRB委员会莱特州立大学。书面知情同意之前就从每个参与者获得注册。

2.10。从人血浆的制备和分析循环练习

全血样品(3毫升)来自缺血性中风患者在入院3和5天(第一天)和天入院后使用含有3.13%柠檬酸钠的管子。整个血样稀释3 x过滤PBS和离心机在4°C 400 g 35分钟;最外层组织收集等离子体。1毫升的等离子体在2000 g离心20分钟去除血小板。上层清液收集和离心机在20000克70分钟,然后上层清液离心器在170000 g 6小时缩短到颗粒循环练习(cEXs)。与过滤的颗粒状cEXs resuspended PBS,然后由anti-CD105孤立——或者anti-CD34-conjugated NTA微和分析。然后,探讨了微磁捕获cEXs anti-CD144, anti-Annexin V - anti-KDR或anti-CD63-conjugated q导并随后进行了分析,荧光NTA。使用荧光NTA cEXs的比例计算(CD105+q导+)cEXs % = CD105+q导+cEXs /总cEXs;(CD34+q导+)cEXs % = CD34+q导+总cEXs cEXs /。cEC-EXs的绝对数量和cEPC-EXs CD105的绝对数量+CD144+cEXs或CD34+KDR+人类血浆cEXs每毫升。

2.11。统计分析

实验数据被表示为均值±SEM和分析使用一个或双向方差分析(方差分析)。例数字与蛋白质浓度的相关性进行了分析使用斯皮尔曼等级相关测试(SPSS 17.0版;SPSS,芝加哥,IL)。的值 P < 0.05 被认为是统计学意义。

3所示。结果与讨论 3.1。练习与EC和EPC培养基被NTA特点,TEM和免疫印迹分析

的Nanosight NS300系统校准与100 nm和200 nm聚苯乙烯珠(图 1(一)检测实验样品之前)。如图 1 (b),只剩下几个粒子EX-depleted EC中、EPC媒介。EC-EXs的平均大小是158±55纳米和EPC-EXs 154±59海里,这与先前的观察是一致的( 18, 19]。与此同时,我们的TEM结果按照NTA数据显示,EC-EXs和EPC-EXs由小颗粒直径小于200纳米(图 1 (c))。此外,我们的免疫印迹结果表明EC-EXs和EPC-EXs CD63表达的蛋白质家庭最常与练习,通常用作标记(交货 20., 21),进一步确认microbeads-isolated粒子是练习。与此同时,这并不令人惊讶,发现EC-EXs表达他们的父母细胞标记CD105和EPC-EXs表达EPC特定标记CD34(图 1 (d))。在未来的研究中,其他EC和EPC特定标记如CD31和CD133可以测试EC-EXs和ECs EPC-EXs释放内皮祖细胞在不同条件下,分别。许多先前的研究使用的蛋白质浓度的练习,而不是粒子数,作为他们的功能分析的量化参数 22- - - - - - 24),我们分析了蛋白质浓度之间的相关性和EC-EXs的粒子数量或EPC-EXs。相关系数图表明EC-EXs和EPC-EXs检测到的浓度NTA高度呈正相关蛋白质含量与各自衡量Bio-Rad蛋白质化验(图 1 (e))。这种相关性可以应用到粒子数量的推断蛋白质浓度 在活的有机体内在未来的实验。

描述EC-EXs EPC-EXs。(一)代表NTA情节显示100 nm和200 nm大小分布的聚苯乙烯珠。(b)代表NTA情节显示大小/颗粒的浓度分布EX-depleted EC和EPC介质EC-EXs EPC-EXs。黑色实线:100 nm地标;黑色虚线:200 nm的地标。(c) TEM显微图的练习。免疫印迹(d)代表乐队CD63的表达,CD105、CD34在练习及其对应的母细胞,ECs和内皮祖细胞。(e)练习和蛋白质含量之间的相关性。

3.2。EC-EXs和EPC-EXs孤立结合Anti-CD105——或者Anti-CD34-Conjugated微和Anti-CD144——或者Anti-KDR-Conjugated q导

首先,为了发展的方法,我们使用EC-EXs来源于培养ECs的标准样品建立隔离方法。我们也证实了这种隔离方法通过使用EPC-EXs释放培养内皮祖细胞。因为一组标记(CD34、KDR)被用作替代标记物内皮祖细胞( 25, 26)和CD105 CD144已确定为ECs ( 27),我们使用这些抗体建立方法。数据显示anti-CD105-conjugated微磁效率最高(> 94%)在净化EC-EXs(图 2(一个))和anti-CD34-conjugated微磁效率最高(> 93%)在净化EPC-EXs(图 3(一个)),相比那些孤立等消极控制anti-CD41 -(特定于血小板)或anti-CD235a红细胞(具体)共轭微。这些结果反映了特异性的隔离EC-EXs CD105和隔离EPC-EXs CD34,他们还进一步提供证据前表面抗原表达的概念可以用于他们的选择性隔离 28]。

方法的效率和特异性结合微净化和探测EC-EXs NTA。(a)的净化效率和特异性EC-EXs EC-EXs总额中,由离心器收集到的EC培养基和孤立各种microbeads-conjugated EC特定标记抗体(CD105,以及消极的控制、CD34、CD41,和CD235a)。(b)的检测效率和总CD105 EC-EXs的特异性+贴上CD144——练习,或者KDR,膜联蛋白V -或CD63-conjugated q导在荧光NTA的检测。(c)测量CD105的整体效率+练习与CD144 colabeled——、KDR——膜联蛋白V -或在总EC-EXs CD63-conjugated q导。(d)代表情节显示大小/ CD105的浓度分布+珠子孤立练习下荧光/ nonfluorescence模式。黑色曲线:CD105+练习下测量光散射(nonfluorescence)模式。黄色曲线:CD105+q导+练习下测量荧光模式。黑色虚线:200 nm的地标。 N = 4 /组。

方法的效率和特异性结合微净化和探测EPC-EXs NTA。(a)的净化效率和特异性EPC-EXs总EPC-EXs,收集从EPC培养基和超离心机的分离各种microbeads-conjugated EPC特定标记抗体(CD34,以及消极的控制,CD105, CD41,和CD235a)。(b)的检测效率和总CD34 EPC-EXs的特异性+贴上CD144——练习,或者KDR,膜联蛋白V -或CD63-conjugated q导在荧光NTA的检测。(c)测量CD34的整体效率+练习与CD144 colabeled——、KDR——膜联蛋白V -或在总EC-EXs CD63-conjugated q导。(d)代表情节显示大小/ CD34的浓度分布+珠子孤立练习下荧光/ nonfluorescence模式。黑色曲线:CD34+练习下测量光散射(nonfluorescence)模式。黄色曲线:CD34+q导+练习下测量荧光模式。黑色虚线:200 nm的地标。 N = 4 /组。

孵化后Q-dots-conjugated抗体CD144 (EC)标志,KDR (EPC标记),或CD63,纯化CD105+练习和CD34+练习分析荧光NTA。根据氮川三乙酸结果,检测CD105的效率+CD144+练习是和CD105的70%左右+KDR+练习只有30%左右(图 2 (b))。同样,CD34的探测效率+KDR+练习是CD34的68%左右+CD144+练习只有20%左右(图 3 (b))。显示的总体效率的测量,62%以上的练习与EC培养基colabeled CD105和CD144(图 2 (c))。同样,绝大多数(72%)的练习从EPC培养基分离colabeled CD34和KDR(图 3 (c))。为了进一步排除污染粒子,我们孵化anti-CD105或anti-CD34捕获练习anti-CD63-conjugated q导或anti-Annexin V-conjugated q导。捕获的数据显示,70%以上的练习CD63是积极的,而其中的一些表达膜联蛋白V,这表明有一个低污染的MVs微磁捕获的练习。值得注意的是,CD105的大小+练习(黑色曲线)与q导CD105标记重叠+练习(黄色曲线)。同样地,CD34的大小配置文件+练习(黑色曲线)与q导CD34标记重叠+练习(黄色曲线)(数据 2 (d) 3 (d))。这些数据表明,q导绑定并没有改变练习的物理特性。

总的来说,这些结果表明,荧光的方法结合微和q导NTA能够敏感和具体列举练习从一个粒子池。

3.3。EC-EXs和EPC-EXs恢复Anti-CD105——或者Anti-CD34-Conjugated微结合Anti-CD144——或者从Particle-Free等离子Anti-KDR-Conjugated q导

为了测试练习的采收率等离子体通过使用上面描述的方法,我们添加了一个已知量(6×108CD105的粒子)+练习或CD34+练习到particle-free等离子体,然后评估各自的回收率和检测效率。如前所述,一个已知数量的练习(6×108粒子)添加到particle-free等离子体,其次是孵化与anti-CD105, anti-CD41, anti-CD235a或anti-CD34-conjugated微。数据显示,近90%的添加EC-EXs和EPC-EXs也被anti-CD105——(图 4(一))或anti-CD34-conjugated微(图 5(一个)),而很少练习被anti-CD41或anti-CD235a(负控制),进一步验证的特异性和敏感性微捕捉练习。与第二抗体和q导孵化后,NTA结果表明CD105的检测效率+CD144+练习是CD105的72%左右+KDR+练习是42%左右(图 4 (b))。和CD34的检测效率+KDR+练习是CD34的69%左右+CD144+练习只有17%(图 5 (b))。

复苏和检测效率高的EC-EXs particle-free等离子体通过microbead净化和荧光NTA检测方法。(a)中恢复了EC-EXs particle-free等离子体通过微共轭NTA各种抗体和分析。(b)恢复CD105的探测效率+练习,用二次抗体标记(CD144、KDR膜联蛋白V或CD63)共轭荧光NTA与q导和分析。(c)测量恢复CD105的整体效率+练习与CD144 colabeled——、KDR——膜联蛋白V -,或者CD63-conjugated q导。(d)恢复CD105的绝对数量+积极的练习CD144、KDR膜联蛋白V或CD63每毫升particle-free等离子体。 N = 4 /组。

复苏和检测效率高的EPC-EXs particle-free等离子体通过microbead净化和荧光NTA检测方法。(a)中恢复了EPC-EXs particle-free等离子体通过微共轭NTA各种抗体和分析。(b)恢复CD34的探测效率+练习,用二次抗体标记(CD144、KDR膜联蛋白V或CD63)共轭荧光NTA与q导和分析。(c)测量恢复CD34的整体效率+练习与CD144 colabeled——、KDR——膜联蛋白V -,或者CD63-conjugated q导。(d)恢复CD34的绝对数量+积极的练习CD144、KDR膜联蛋白V或CD63每毫升particle-free等离子体。 N = 4 /组。

显示的总体效率的测量,超过70%的恢复EC-EXs colabeled CD105和CD144(图 4 (c))。同样,绝大多数(65%)的恢复EPC-EXs colabeled CD34和KDR(图 5 (c))。同样,CD63和膜联蛋白V是用来确定粒子是否练习。的数据表明,75%以上两种类型的捕获CD63练习是积极的,但只有少数是阳性膜联蛋白V,这符合绝对数量如图 4 (d) 5 (d)。所有这些数据都与我们观察到的结果一致标准EC-EX和EPC-EX样本,和他们进一步验证了净化效率和建立方法的特异性。

3.4。隔离cEC-EXs和cEPC-EXs在急性缺血性中风患者血浆通过Anti-CD105——或者Anti-CD34-Conjugated微结合Anti-CD144——或者Anti-KDR-Conjugated q导方法

一项研究表明,高浓度的CD105传播+CD144+endothelial-derived细胞外微泡在等离子体被发现从血管疾病患者,这表明他们可以作为替代标记的内皮功能 10]。枚举和表现型练习是重要的考虑他们的使用在临床研究和练习的比较从不同的来源。然而,练习的纳米大小港口的准确计算通过使用流式细胞仪( 29日, 30.]。通过使用这里描述的方法,我们首先提出了证据概念的表现型练习从血浆样品。

如图 6捕捉到的,大约21.8%和10.8%的cEXs anti-CD105——或者anti-CD34-conjugated微,分别。Q-dots-conjugated抗体的调查,我们发现,大约12%的总cEXs CD105+CD144+cEC-EXs CD34 cEXs总额的7.9%+KDR+cEPC-EXs。收集cEXs中,20%的人coexpressed CD105和CD63,其中10.2% coexpressed CD34和CD63。有一个低的百分比cEXs表达膜联蛋白V,反映了极低的交叉污染的循环MVs cEXs收集。有大约1.15×107CD105+CD144+cEC-EXs和8.3×106CD34+KDR+cEPC-EXs每毫升血浆从病人入院后第1天(收集数据 6(a3)和 6(b3))。

识别cEC-EXs cEPC-EXs从人血浆通过anti-CD105——或者anti-CD34-conjugated微和q导结合荧光NTA。((a1)和(b1) CD105的比例+cEXs和CD34+cEXs在等离子体被anti-CD105孤立或anti-CD34-conjugated微。((a2)和(b2) CD105的比例+cEXs或CD34+cEXs colabeled CD144 -、KDR -膜联蛋白V -或在总cEXs CD63-conjugated q导。((a3)和(b3) CD105的绝对数量+cEXs和CD34+cEXs被贴上CD144、KDR膜联蛋白V或CD63每毫升第一天缺血性中风病人血浆。 N = 8 /组。

3.5。动态变化的cEC-EXs和cEPC-EXs病人急性缺血性中风的等离子体

此外,我们评估CD105的动态变化+CD144+cEC-EXs和CD34+KDR+cEPC-EXs天患者1、3和5后入学。如图 7,我们发现有CD105的重要水平升高+CD144+cEC-EXs在天3和5比1天。研究EC-EXs允许我们研究内皮的状态 在活的有机体内提供一个新颖的方法,有潜力的进一步了解中风的病理生理学。与此同时,这个结果提供支持EC-EX内皮损伤的生物标志物在缺血性中风。

cEC-EXs的动态变化,在中风病人血浆cEPC-EXs天1,3,5在入院。(a)的动态变化cEC-EXs每毫升血浆cEPC-EXs天1,3,5卒中后病人入院NTA的分析。

NTA所分析的,有CD34的重要水平升高+KDR+cEPC-EXs天5比1天,但是没有天1和3的区别。EPC-EXs在缺血性中风的增加可能是由于缺血反应的循环内皮祖细胞数量增加。综上所述,所有这些发现将有助于开发治疗对缺血性中风使用练习。

4所示。结论

总之,在目前的研究中,我们建立了敏感和具体方法,表型和列举的练习在细胞培养基和血浆样本。鉴于其缓解、广泛的适用性和发现潜在的高,我们相信这些方法可能是一个重要的附加技术定性和定量评估的曲目的练习在各种系统中,从心血管炎症性疾病。

相互竞争的利益

作者声明没有经济利益的竞争。

作者的贡献

郭Runmin Jinju Wang,李阳是相等的贡献者。

确认

这项工作得到了国家心脏、肺和血液研究所(hl - 098637,李赛陈),美国心脏协会(15 pre25700198, Jinju王)和中国国家自然科学基金(国家自然科学基金委,没有。81270195)。

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