糖尿病(DM)是死亡的主要原因之一,越来越多的人遭受这种普遍的疾病(
胰脏移植的尸体1966年开始蓬勃发展,让糖尿病患者没有胰岛素注射(
近年来,研究者们努力发展再生疗法,干细胞或内分泌前体细胞的分化成刺激胰岛素生产细胞(IPCs)取代摧毁
一般来说,理想的组织来源再生治疗糖尿病必须满足一定标准,如丰富的可用性,容易复制,相当于函数的主β细胞。不仅胚胎干细胞,成体干细胞,成人胰腺前体细胞,extrapancreatic内分泌祖细胞作为代理已报告
我们实验室已经证明了,胰腺内分泌细胞前体(PEP)可以生成从沃顿商学院的果冻间充质干细胞(WJ-MSCs) [
机构审查委员会批准(台北荣民总医院)获得了所有程序。的书面知情同意的父母,健康胰腺实质组织切除的正常部分用于吻合。为了防止退化,新鲜的胰腺组织最初保存在解决D (0.137 M氯化钠,氯化钾5.38毫米,0.19毫米Na2HPO4,0.205毫米K2HPO4蔗糖,葡萄糖5.49毫米,0.058米,青霉素和链霉素1%,0.12%二性霉素b)。组织然后切碎的消化2毫克/毫升V型胶原酶(Sigma-Aldrich,圣路易斯,密苏里州)为30分钟37°C。消化样品洗了三次冷杜尔贝科的修改鹰中/ F12 (DMEM / F12,表达载体,卡尔斯巴德,CA)。在1200 g离心20分钟后在4°C Histopaque(1.077毫克/毫升)和DMEM / F12梯度,胰管细胞,胰岛,内分泌前体细胞(epc)是孤立的。的epc Histopaque / DMEM接口与DMEM / F12然后吸气,洗CMRL 1066培养基培养(5.5毫米葡萄糖,英杰公司公司)包含10%的边后卫,1%,青霉素和链霉素100 ng / mL神经生长因子(研发系统、明尼阿波利斯、MN), 10毫米烟酰胺(σ),和25 ng / mL表皮生长因子(EGF表达载体)。扩张后7 - 10天,内皮祖细胞达到融合。内皮祖细胞是使胰蛋白酶化0.05%胰蛋白酶/ EDTA(表达载体),用无血清DMEM / F12 (17.5 l更易与葡萄糖),和播种6-well培养皿中涂层与基底膜基质(美国BD生物科学、贝德福德,MA)进行进一步的文化和分化。内皮祖细胞的数量在每个1×106细胞。胰岛素,转铁蛋白,亚硒酸钠+亚油酸(+ l,σ),2 g / l BSA和10 ng / mL基本成纤维细胞的生长因子(bFGF、表达载体)培养基中添加。5 - 7天后在基底膜基质,细胞聚合层集群和分化成ipc。凝胶层被破坏,细胞刮刀。IPC集群和基底膜基质部分被转移到大量prewarmed介质和单个细胞集群是精选fire-polished玻璃吸管。IPC集群被保存在悬挂5天在无血清DMEM / F12补充其+ l (
机构审查委员会批准的所有研究过程(台北荣民总医院)。骨髓组织聚集来自20个健康的捐赠者与他们的知情同意。洗后的骨髓样本两次磷酸缓冲盐(PBS, PH = 7.2),密度梯度离心法(NycoPrep 1.077, Axis-Shield,奥斯陆,挪威)拥有和BM-MSCs孤立。冲洗两次BM-MSCs低葡萄糖DMEM (LG-DMEM, 5.5毫米葡萄糖,表达载体,卡尔斯巴德,CA)和文化在37°C和5%湿润二氧化碳膨胀介质组成的L-DMEM补充10%胎牛血清(的边后卫;英杰公司)和1%青霉素、链霉素、两性霉素(以色列海法生物产业)。培养基是每三天更换一次,不依从细胞被删除。当附着BM-MSCs汇合的90 - 95%(10 - 15天),他们被Trypsin-Versene亚文化(表达载体)。当第三通道BM-MSC融合达到了80%,这是提供给分化成IPCs采用无血清培养高葡萄糖DMEM (HG-DMEM, 25毫米葡萄糖)补充1%二甲亚砜(DMSO,σ,圣路易斯,密苏里州)。3天后,培养基是取代HG-DMEM补充10%的边后卫14天(
机构审查委员会批准的所有研究过程(台北荣民总医院)。与父母的书面知情同意、新鲜人类脐带得到出生后并存储在汉克的平衡盐溶液(生物产业、以色列)之前,组织处理获得msc。清除血管后,间质组织刮掉了沃顿商学院的果冻,在250 g离心5分钟。离心后,小球在15毫升resuspended血清杜尔贝科的修改鹰的介质(DMEM;Gibco大岛,纽约)含0.2克/毫升的胶原酶和孵化16 h在37°C。接下来,这些细胞被洗,包含2.5%胰蛋白酶在DMEM resuspended,孵化与搅拌30分钟37°C。最后,再次清洗、培养细胞在DMEM补充10%胎牛血清(的边后卫;σ圣路易斯,密苏里州,美国)和葡萄糖(4.5 g / L) 5%的股份有限公司237°C孵化器。第四到第六段,达到70%的融合后,msc被诱导分化成胰岛细胞聚合三个阶段。未分化的msc被HyQTase分离,与SFM-A稀释,离心机。首次播种密度和细胞计数1×106细胞/厘米2resuspended SFM-A和播种在超低附件组织培养板(康宁,费舍尔科学国际,汉普顿,在北半球,
确定三种细胞来源已经分化成ipc,与胰腺癌相关基因的表达
这三种类型的分化细胞与PBS洗两次,在300毫升冷水蒸馏resuspended,均质通过声波降解法冰。分析了匀浆的整除fluorometrically DNA内容一式两份,一夜之间,另一个整除与酸性乙醇提取和测量胰岛素内容使用酶联免疫试剂盒(Mercodia,乌普萨拉,瑞典)。
这三种类型的分化细胞被孵化的1 h DMEM-LG葡萄糖(5.5毫米)和中收集和储存在−20°C。这些细胞被洗PBS和孵化1 h DMEM-HG(25毫米的葡萄糖)(纽约Gibco)和中收集和储存在−20°C。c -肽的浓度是由c -肽酶联免疫试剂盒(Mercodia,乌普萨拉,瑞典)。
24雄性SD大鼠高血糖诱导在封闭的殖民地(体重300 - 350克)通过腹腔内注射30毫克/公斤的链脲霉素(STZ)连续3天。血糖测定使用罗氏ACCU-CHEK血糖仪(美国罗氏诊断,印第安纳波利斯。)通过尾静脉血液。稳定的高血糖(血糖水平介于16.7和33.3更易/ L)开发的24老鼠一周后。18糖尿病大鼠6的三个学习小组,与戊巴比妥麻醉(40毫克/公斤,i.p)。中线剖腹手术后门静脉被确认和0.5毫升肝素化盐水和5×106差异化的胰岛素生产细胞(三种类型的分化细胞)悬浮在0.1毫升的生理盐水注入WJ-MSCs的导管,BM-MSCs,胰腺msc学习小组,后跟一个体积的生理盐水的体积相当于Port-A-Cath导管(0.35毫升)将移植到门静脉。6大鼠STZ组做过同样的步骤,但是只有注射生理盐水(STZ组)。体重和血糖水平记录之前和之后的细胞移植。从尾静脉血液收集和血糖水平与血糖仪测定(罗氏、巴塞尔、瑞士)[
老鼠牺牲移植后8周和灌注4%甲醛(Ferak,柏林,德国)。胰腺组织切除,切成0.5 - -1.0厘米3碎片。样本脱水和嵌入在10月(樱花Finetek USA Inc .)托兰斯、钙、美国)在液态氮。cryosections (5
每一系列的实验进行了一式三份。从一个典型的实验获得的结果表示为±标准差(SD)的手段。使用SPSS 14.0软件进行统计分析程序(社会科学统计软件包SPSS Inc .芝加哥,美国)。使用非参数统计分析Mann-Whitney
确定三种细胞来源已经分化成ipc,胰腺癌相关基因的表达
实时PCR分析三种细胞来源的分化后评估胰腺癌的表达
胰岛素/ DNA的表达比在人类最大的切除pancreas-IPCs相比人类WJ ipc和BM-IPCs。胰岛素/ DNA的表达比在比BM-IPCs WJ-IPCs更大。然而,在上面没有发现显著差异比较(图
Insulin-to-DNA比例三种不同类型的人体组织msc。胰岛素生产细胞培养在成熟期刺激表示和c -肽在中使用ELISA分析。测量每个样本的DNA内容的规范化。三个样本/测量条件。类似的结果在至少三个独立的实验。
测试三种ipc是否胰腺β细胞的功能特点,我们决定c -肽的分泌各种IPCs低葡萄糖浓度(5.5毫米)和高葡萄糖浓度(25毫米)。低葡萄糖浓度,WJ-MCSs IPCs显示最高版本的c -肽相比IPCs BM-MCSs和切除胰腺内皮祖细胞。在高葡萄糖浓度,WJ-MCSs IPCs显示c -肽的类似版本从BM-MCSs ipc,均高于IPCs从切除胰腺内皮祖细胞。另一方面,所有的三种ipc能显著提高c -肽分泌高葡萄糖刺激的反应。ipc的切除胰腺内皮祖细胞至少有10倍的增加刺激c -肽分泌在应对高葡萄糖。从BM-MSCs IPCs透露至少4倍增加刺激c -肽分泌在应对高葡萄糖。IPCs从WJ-MSCs产生大约两倍的c -肽分泌在高葡萄糖浓度(图
人工培养的ipc的c -肽分泌葡萄糖刺激的反应。葡萄糖挑战c -肽释放试验,以应对低葡萄糖(LG: 5.5毫米)和高葡萄糖浓度(HG: 25毫米)分化细胞。(+:胰腺切除的褶皱增加而增加褶皱沃顿的果冻,
在我们的实验中,空腹血糖水平在糖尿病老鼠STZ-induced > 350 mg / dL一周然后增加到> 400 mg / dL。STZ诱导后的空腹血糖水平在4组是不一样的,虽然他们没有显著不同。为了进一步规范化post-STZ血糖水平,我们报道空腹血糖水平的变化之间的特定的时间点和STZ诱导后的第二天,而不是确切的空腹血糖水平在特定的时间点。血糖水平的趋势的三个学习小组IPCs移植后均显著地不同于对照组,与我们之前的研究结果一致。WJ-IPCs组血糖水平显著降低移植后第一周以来,达到最大减少在星期2,和维护显著下降到本研究的终点,移植后8周。BM-IPCs组血糖水平也显著降低移植后第一周以来,在第2周达到最大减少,但3周以来逐渐增加。切除pancreas-IPCs组血糖水平显著降低,直到两个星期后移植,达到最大减少在周3,周4(图以来逐渐增加
STZ-induced糖尿病大鼠的血糖水平的变化(IPCs研究小组:移植到门静脉通过Port-A-Cath沃顿的果冻msc、BM-MSCs,和胰腺切除;STZ组:STZ-induced糖尿病大鼠没有生产胰岛素的细胞移植)结果为6均值±SD大鼠。
WJ-MSCs分化成ipc和居住在STZ大鼠的胰腺。共焦WJ-IPCs移植后胰腺组织23天的分析显示,集群的细胞,GFP表达和人类c -肽表达(红色)以及核染色,DAPI(蓝色)。比例尺= 50
组的细胞表达绿色荧光蛋白(GFP)和人类发现了c -肽STZ大鼠的胰腺移植后8周。我们成功地发现WJ-IPCs归航胰腺的能力。然而,我们找不到任何IPCs STZ大鼠接受移植的胰腺BM-IPCs和切除pancreas-IPCs。
因为器官捐赠者的短缺阻碍了进步的胰腺移植和胰岛移植替代胰岛素生产细胞的来源是强制性的来克服这个障碍。干细胞再生已成为一个潜在的胰岛素替代疗法。从胰腺干细胞
胰岛内分泌细胞前体(epc)的细胞来源再生药物治疗被认为存在在胰管细胞或小岛本身(
msc、另一种有前途的干细胞,首次分离出BM [
McElreavey et al。
在我们先前的研究的研究小组,胰岛素生产细胞生成从沃顿商学院的果冻,骨髓,和人类胰腺组织。我们培养和分化协议称为前辈在文献和期刊的编辑,我们提交报告。由于不同的细胞来源,不同的培养和分化的协议。尽管如此,我们认为,胰岛素生产细胞产生的三个不同来源的最适条件我们的特定的分化方法。接下来,我们试图探讨细胞的
人类胰腺干细胞
关于msc BM和沃顿商学院的果冻,前者表示积极的c -肽染色14天,后者有更大的染色在10天。此外,4 - 6通道的BM-MSCs已经分化潜力而WJ-MSCs 8 - 10通道的分化潜能。此外,当葡萄糖浓度较低时,人类WJ-MSCs c -肽水平高于BM-MSCs和胰腺mcs。我们的数据显示类似文献的证据(
在
与血糖水平和移植的ipc的潜在作用,移植后组织学分析应该执行。在先前的研究中,我们使用了免疫组织化学分析检测IPCs我们通过门静脉移植到STZ大鼠。我们发现人类c -肽的外观和人类核标记BM-MSCs STZ大鼠的肝移植治疗8周后(
沃顿商学院的果冻被调查人员在先前的研究相对于胰腺干细胞干细胞,因为它包含了许多倍胰管(
总之,我们的结果表明,WJ-MSCs可以分化成胰腺细胞谱系
作者宣称没有利益冲突有关的出版。
这项研究受到了研究经费从台北VGH (v102a - 014)和台北VGH PJ蔡(v99a - 009),台北VGH (v99e1 - 004)和国家科学委员会(nsc - 102 - 2314 - b - 010 - 041 - my3)陈TH,和国防医学中心(mab - 102 - 56)和陆海空三军种总医院(tsgh - c102 - 124)摩根富林明害羞的。来说