SCI. 干细胞国际 1687 - 9678 1687 - 966 x Hindawi出版公司 678063 10.1155 / 2013/678063 678063 评论文章 在临床前设置中间充质茎/基质细胞的生物分布 SenseBé. Luc. 1,2 弗雷拉斯卡洛群岛 Sandrine 1,2 Krampera 毛罗。 1 UMR5273 CNRS. UPS EFS-INSERM U1031 Stromalab. 图卢兹 法国 2 EFSPyrénées-Méditerranée 图卢兹 法国 2013年 10 10 2013年 2013年 14 05 2013年 08 07 2013年 2013年 版权所有©2013 Luc Sensebé和Sandrine Fleury-Cappellesso。 这是一篇在知识共享署名许可下发布的开放存取的文章,它允许在任何媒体上无限制地使用、传播和复制,只要原始作品被适当地引用。

由于它们的多能性和免疫化和免疫抑制性质,间充质茎/基质细胞(MSCs)是治疗免疫障碍和组织修复的重要工具。MSC的越来越多的用途导致生产过程的开发需要按照良好的制造实践(GMP)。在欧洲,MSCs是体细胞治疗产品,称为先进治疗药用产品(ATMPS),在美国,MSCs必须符合当前的良好组织实践要求。必须确保MSCs的安全性和疗效,无论细胞来源以及剂量和生物分布的研究是安全测试的重要方面。关于生物分布和药效中流体动力学的临床前数据是批准的强制性。重要的是表明MSCs没有不必要的归位,可以在某些器官中推动不恰当的差异,或者在某些实验中支持癌症发展。所有这些方面应根据EMA最近公布的指南以基于风险的方法解决。在本文中,我们总结了标签和跟踪注入的MSC的主要方法,关于当前动物模型的报告,并概述了生物分布的可用结果。

1.介绍

细胞治疗和再生医学中最有前途的工具之一是利用间充质茎/基质细胞(MSC),因为它们的双分化潜力和免疫调节性能。首先由Alexander Friedenstein描述于20世纪60年代/​​ 70年代[ 1,中胚层来源的非造血骨髓(BM)细胞粘附在塑料上,发展成具有成纤维细胞外观的集落,msc被称为骨骼组织(如骨、软骨)的干细胞[ 2]。第一个临床应用是其与生物材料结合,修复长骨骨折[ 3.]。后来,发现MSC型的新兴细胞的神经嵴,而不是中胚层[发起 4.[几乎在胎儿,新生儿和成年人的所有组织中发现了具有BM-MSCs的一些特征的细胞[ 5.]。

国际专家小组[ 6.]描述了MSC类别中细胞的常见最小标准:粘附在塑料中的细胞;能够形成形成菌落形成的单位成纤维细胞(CFU-FS);膜标志物CD90,CD73和CD105阳性,但造血分子CD45,CD34和HLA-DR阴性;能够通过骨细胞,软骨细胞和脂肪细胞途径来区分。这些主要特征适用于培养的BM-MSC,但取决于原产地的组织(例如,脂肪组织衍生的CD34和CD54的表达的一些差异[ 7.])。同样,来自不同组织的MSC是不是在表型和功能[等效 8.]。

MSC领域已经迅速发展,证明 体外-扩大的MSCs显示免疫抑制特性,这些特性在治疗耐药移植物抗宿主病的广泛2期临床试验中得到了开发[ 9.]器官移植[ 10]。最后,MSCs具有由许多生长因子和它们产生的细胞因子介导的营养效果[ 11]。

现在广泛用于临床试验中的源自各种组织的MSCs的细胞。在欧洲,MSCs是体细胞 - 治疗产品,称为先进治疗药品(ATMP),并在欧洲监管下进行No.1394 / 2007。在美国,如生产任何其他细胞和组织的产品,MSCs必须符合当前的良好组织实践要求,在美国联邦法规守则下。必须确保MSCs的安全性和疗效,无论细胞来源以及剂量和生物分布的研究是安全测试的重要方面。此外,在批准之前,监管机构需要关于生物分布和药效学的临床前数据;在欧盟,这些数据应根据欧洲药典产生。事实上,MSC的生物分布是安全所需的主要临床前数据之一;重要的是表明MSCs没有不需要的归位,可以在某些器官中推动不恰当的差异[ 12或支持某些实验中提出的癌症发展[ 13 14]。所有这些方面都应该以一种基于风险的方法来解决。EMA高级治疗委员会(CAT)最近发布了基于风险方法的指南(基于风险方法指南根据ATMPs指令2001/83/EC附录I, part IV: EMA/CAT/CPWP/686637/2011)。该指南定义了风险,例如,不希望的细胞/器官靶向、不希望的组织形成和肿瘤形成;风险因素,如使用ATMPs后导致特定风险的定性或定量特征。所有关于风险和风险因素的信息都应该被整合起来建立风险分析,而生物分布是提供不同风险和风险因素信息的主要临床前数据之一。为了达到这一目标,必须根据欧洲药典和良好实验室规范进行生物分配。

骨髓间充质干细胞注射后,无论通过何种途径,其生物分布的研究都具有挑战性;必须分析不同方面,主要是细胞标记或染色和跟踪的方法,动物模型,以及与人类使用的相关性。

2.间充质干细胞的标记与追踪

对于其他活细胞,MSCs可以通过多种方法进行标记和染色。在培养过程中,它们可以很容易地用细胞内染料如5-羧基荧光素二乙酸琥珀酰亚胺酯或合成核苷如5-溴-2 ' -脱氧尿苷(BrdU)进行标记。BrdU在细胞复制过程中被引入到新合成的DNA中,取代胸腺嘧啶。在标记阶段,该方法需要细胞分裂,导致标记不均匀,残留的未标记MSCs比例不一致。输注后,brdu特异性抗体可在组织中检测到标记的MSCs [ 15]。对于这两种标记分子,细胞分裂导致掺入的分子顺序减半,其可以将每种细胞的量降低至低于检测阈值。应该强调的是,这些方法对于在血管内注射后研究分布或局部涂抹更有用。在MSCs中的另一种易于细胞标记的方法是用编码荧光蛋白的基因转染细胞(例如,绿色荧光蛋白[GFP])[ 16]。可能会遇到两个问题:一些组织的自身荧光和由于其他细胞(如巨噬细胞)再摄取蛋白质而导致的非特异性表达。最后,所有这些方法都不允许 在活的有机体内MSCs生物分布的跟踪;在动物杀死后,需要不同组织的特异性染色和组织学分析。为了 在活的有机体内随访,几种标签技术是有用的:用诸如Technetium-99米的放射性示踪剂分子标记,111indium-oxine [ 17]或氟葡萄糖(18fdg),具有正电子发射断层扫描(PET)[ 18];用荧光素酶和基于外部相机的基于外部相机的射流转染在注射后的生物发光(Luciferin)[ 19];或在间充质干细胞中加入磁性纳米颗粒 在活的有机体内核磁共振成像( 20. 21]。

不同分子用于标记可能对MSC功能的后果特别是在分化或免疫抑制中。用铁纳米粒子,研究表明了矛盾的结果:昌等人。[ 20.]报障 体外胺表面修饰的超顺磁性氧化铁纳米颗粒标记人间充质干细胞后的成骨和软骨分化相反,Schmidtke-Schrezenmeier等人[ 21]发现,与氧化铁 - 聚(L-丙交酯)的纳米颗粒标记的MSC不影响一大组的标记的MSC的功能:生存能力,表型,细胞增殖,分化或免疫抑制。这些相互矛盾的结果可能与应用于铁颗粒的差异,每个细胞颗粒,或生产过程和细胞年龄的数目。

最后,在异种模型,没有先前的标签,人MSC可通过人类的Alu序列的使用定量PCR(qPCR)的跟踪[ 22]或在标记人的特异性抗原后的组织学。人alu序列高度重复,物种特异性和300bp序列。由于其高重复和物种特异性,Alu序列是检测小鼠器官中少数人细胞的侵袭的选择标记。通过QPCR扩增的QPCR扩增评估Alu标记的存在和定量,所述DNA从小鼠从小鼠中提取的DNA作为模板,从健​​康的非诱导小鼠中作为阴性对照。可以用从不同的小鼠组织和人MSC萃取的已知量的DNA来建立指示人DNA的量与小鼠DNA的标准曲线。该标准曲线允许估计每重量组织单位的细胞数量为230个人细胞/ g组织(LS,个人数据);通过改进的技术,阈值可以达到100个人体细胞/器官[ 23]。

3.动物模型

对于其他临床前数据,动物模型的选择至关重要。为了研究生物分布,第一步可能是使用来自同一动物物种的间充质干细胞。然而,监管机构需要人类间充质干细胞的数据。为了防止人类间充质干细胞的排斥反应,这可能会干扰其在不同组织中的生物分布和维持,最流行的模型是注射免疫缺陷啮齿动物,如裸鼠,或为了防止任何排斥反应,注射NOD/SCID小鼠。由于裸鼠甚至NOD/SCID小鼠的免疫不完全消失,最好的模型似乎是NOD- rag小鼠[ 24]。用小鼠模型的主要问题是静脉注入MSCs的剂量,一般0.5至2万元,以防止死亡肺部栓塞。这些剂量,对应的MSC /公斤100至200亿美元,比临床相关剂量的人类偏离很大。在欧洲委员会的第七框架计划的欧洲方案(REBORNE:FP7-HEALTH-241879),我们研究了从两个不同组织间充质干的生物分布:骨髓和脂肪组织。研究在SCID小鼠中后IV输注或在陶瓷支架加载MSC的皮下植入后进行的。无论使用qPCR为人类的Alu序列的MSC的来源,从没有IV输注后的MSC的任何不希望的归巢。在第7天,在AT-MSC的,相反,我们并没有发现肺部任何的BM-MSC;在第91天,只能用一些AT的MSCs有留在肺部的人类DNA。下面的MSCs +支架植入皮下,从未有过其他器官的任何再循环和归巢。此外,不同器官的组织学分析没有显示出任何肿瘤的形成。 These data demonstrated the safety of using BM and AT MSCs, and based on these results and other preclinical data, the French, German, Spanish, and Italian regulatory authorities delivered authorization for starting clinical studies in bone repair.

使用其他模型,如非人灵长类动物,似乎更相关,但由于伦理原因,很难,当测试人类间充质干细胞时,使用免疫抑制药物是强制性的。

对于预期的临床应用,模型应与间充质干细胞输注途径(静脉、动脉、局部注射或植入)和治疗条件相关。间充质干细胞优先归属于受损组织,如受辐射损伤的组织[ 25]。必须在疾病的正常和动物模型中研究生物分布和药效学。

最后,因为来自不同组织的MSC不等同[ 8.[培养方法是否有所不同,应测试来自不同类型的准备的MSC。

4.Biodistribution msc的 4.1.在动物模型

通过对人Alu序列的检测发现,经小鼠静脉注射的人骨髓间充质干细胞能迅速捕获肺部。第一次栓塞后,MSCs可能会再循环,通过外周血单个核细胞培养显示来自人类的CFU-Fs显示灌注后15分钟[ 23]。在短暂的后续后,将人体MSCS融入不同的器官,主要是肝脏,但这种二次再循环似乎仅关注少量注入的MSC。在该模型中,在48和96小时的灌注中,在6个组织(肝脏,脾脏,胰腺,脑,肾,心脏和骨髓)中,回收了0.04%和0.01%的注射人体MSC。在较长时间(7天和3个月)中研究小鼠的人BM-MSC分布,仅在脾脏(LS,个人数据)的7天内发现人细胞。标记技术似乎很重要:用睾丸-99米标记和人体BM-MSC的静脉输注显示,骨骼,骨髓,脾脏,肌肉和软骨中的人体细胞长期持久性高达4至13个月[ 26]。

BM-MSCs静脉内注入,作为人类AT-MSCs,脂肪组织首先在肺中被捕获。用裸鼠荧光素酶转染的人脂肪组织MSC显示,从肺部1周内清除人细胞,然后在肝脏中持续31周[ 19]。对NOD / SCID小鼠,7天postinfusion检测人脂肪组织的MSCs的铝序列,人类细胞位于脾脏,但主要是保持肺部内并持续存在3个月而没有任何其他次级定位(LS,个人数据)。近日,人体脂肪组织的MSCs静脉滴注后,人体细胞,迅速清除,大多在天11在肺和胃肠道28中。同样,结果是高度可变的:小鼠只有17%〜25%为阳性[ 22]。关于具体的调控要求,在睾丸或卵巢中未发现静脉注入的人MSCs [ 22 27]。

在小鼠动脉内注入的人骨髓间充质干细胞和静脉注入的细胞中发现相似[ 23但不同的是用于治疗这种疾病的动物模型。例如,在脑缺血的大鼠中,注射人骨髓间充质干细胞导致人细胞在大脑中的短暂定位[ 28]。

使用同种动物间充质干细胞治疗异常时,结果可能有所不同。静脉滴注111铟-oxine标记的大鼠间充质干细胞,Yoon等人观察了脑外伤大鼠的脑摄取[ 29]。在辐照的灵长类动物模型中,静脉注射灵长类主教GFP标记的BM-MSC和造血干细胞导致骨髓,皮肤,肠道和肌肉中的局部化,从12至82天后灌注,肺部没有细胞[ 27]。

最后,在局部注射的模型中,例如,术语 22]和肌内[ 30.,细胞在注射部位停留很长时间。肌肉注射后,在肌肉外的任何评估组织中均未检测到人类DNA [ 30.]。相比之下,在不同时间(从第11-186天)的细胞内注射后,在心脏,脾,肠,脑,睾丸或10%至20%分析的小鼠的肝脏中发现了人ALU序列[ 22]。当细胞植入生物材料或支架时,局部跟踪和证明人体细胞的持续性可能是困难的[ 31]但BM-MSCs或AT-MSCs不会传播(LS,个人数据)。

4.2.在人类

很少有数据在人类中的MSCs生物分布上。在肺捕获方面,结果可以稍微类似于啮齿动物模型中发现的这些,患有疾病或物种的再循环差异。Gholamrezanezhad等。[ 17]用于放射性标记(111在血管内静脉内注入肝硬化患者的BM-MSC,发现在初始肺累积后,BM-MSC在肝脏和脾脏中重新定位:放射性从肺的33.5%降至2%,增加到2%至42%脾。在3例接受同种异体BM-MSC的患者中治疗造血干细胞移植后的皮质抗移植物 - 与宿主疾病(GVHD),一名患者的后期分析揭示了淋巴结和胃肠道靶向GVHD的供体DNA,但是供体DNA从未在肺,肝脏或脾脏中发现[ 32]。

5.结论和观点

MSC的生物分布研究是强制性的,出于安全原因,监管要求,以及ATMPs使用的基于风险的方法。MSCs的标记是容易的,但应考虑每种技术的局限性和预期的随访。经典的技术(例如,绿色荧光标记)不允许 在活的有机体内跟进。允许外部后续的标记系统(例如,荧光素酶,铁颗粒或放射性)可能降低检测灵敏度。通过QPCR检测人alu序列似乎是简单且敏感的,并且在不需要连续的外部后续时,可以使用。在临床前设置,所使用的主要动物模型是免疫功能均衡的小鼠(裸体,点击/ SCID或NOG-RAG)。虽然易于使用和信息性,但这些模型有局限性:它们是异种,人体MSCs大于小鼠MSC,而生理特征在啮齿动物和人类之间存在差异。无论模型如何,MSCs似乎最初被困在肺中。在该肺栓塞后,再循环MSC,但再循环细胞的数量似乎是低的,并且在肝脏,脾脏和炎症或受伤的位点发生次级归巢。

两个主要建议是(1)使用最敏感的技术用于标记和/或跟踪和(2)在免疫排斥潜力和治疗预期疾病方面的相关动物模型。最后,需要动物模型,信息性但不够,需要更多的人类数据。可以与执行某些阶段的监管机构进行讨论,用于验证人类的跟踪系统和生物分布。此外,报告人类中所有可用数据的注册管理机构将具有重要意义。

致谢

来自欧盟第七次框架计划的补助金提供的这项工作:Cascade(FP7-Health-233236)和Reborne(FP7-Health-241879),由Agence Nationale Poul La Recherche提供:安全(ANR-2011-RPIB-01201)和基础设施计划Ecellfrance(ANR-11-Insb-005),并通过RégionMidi-Pyrénées(Nomasec),onCodesign公司(法国第戎,法国)进行SCID鼠标。

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