3所示。结果
3.1。OGD A1AR监管和A2aAR表情
星形胶质细胞中扮演重要角色占用过多的谷氨酸,避免会引起神经元(
11]。在此,我们孤立和培养小鼠初级皮层星形胶质细胞(图
1(一))。免疫染色表明,S100B和GFAP,星形胶质细胞标记,强烈表达了在这些细胞的细胞质(图
1 (b))。OGD可以用来开发一个体外脑缺血模型。在我们的研究中,星形胶质细胞在OGD 1 h和6 h。免疫印迹显示A1AR的表达在细胞表面后减少OGD治疗,而A2aAR蛋白质含量升高。此外,EAAT2蛋白的表达也减少后细胞暴露于OGD(图
1 (c))。有趣的是,Co-IP试验表明,OGD提升A1AR和A2aAR(图之间的交互
1 (d))。此外,细胞内谷氨酸水平明显下降后细胞受到OGD 1和6 h比0 h (
p
<
0.05
)(图
1 (e))。这些数据表明,A1AR与A2aAR形成A1AR-A2aAR异质二聚体参与的规定EAAT2表达和谷氨酸摄取。
OGD提升与A2aAR A1AR星形胶质细胞之间的相互作用。主要(a)正常星形胶质细胞形态学观察显示了通过相差显微镜检查和上层(×100)和低(×200)板。(b)星形胶质细胞被免疫荧光试验确定。S100b的阳性表达(红色)和GRAFP(绿色)星形胶质细胞的抗原是由免疫荧光(×200)。核与DAPI染色(蓝色)。星形胶质细胞暴露在OGD条件表示。(c)的蛋白表达A1AR, A2aAR, EAAT2被西方墨点法评估。(d) Co-IP分析被用来评估A1AR之间的交互和A2aAR。(e)使用谷氨酸测定细胞内谷氨酸含量检测设备。数据代表
意味着
±
年代
。
E
。
n
=
3
。
∗
p
<
0.05
与0 h组和<年代up>^年代up>
p
<
0.05
与1 h组。数据表示的
意味着
±
年代
。
E
。
(
n
=
3
)。
3.2。A1AR A2aAR监管EAAT2的表达和谷氨酸摄取
我们探索A1AR的角色和A2aAR EAAT2的规定和谷氨酸摄取。的激活与CCPA A1AR A2aAR的失活与SCH58261 EAAT2蛋白水平升高在星形胶质细胞OGD条件(图
2(一个))。同样,相比仅在集团OGD,细胞内谷氨酸含量增加OGD / CCPA OGD / SCH58261, OGD / CCPA + SCH58261组(
p
<
0.05
)。有趣的是,谷氨酸水平更高的OGD / CCPA + SCH58261组比OGD / CCPA集团(
p
<
0.05
)(图
2 (b))。此外,EAAT2的表达和谷氨酸水平没有显著增加OGD / CGS21680 + CCPA组与组仅在OGD (
p
>
0.05
)(数据
2 (c)和
2 (d))。这些数据表明,A1AR激活和A2aAR失活可以提升EAAT2的表达,改善在星形胶质细胞谷氨酸摄取OGD条件。进一步确认的角色A1AR和A2aAR EAAT2表达式的规定,与小干扰rna(图A2aAR A2aAR被撞倒了
2 (e))。EAAT2蛋白质和细胞内的水平在A2aAR-silenced细胞谷氨酸增加OGD相比单独细胞受到OGD (
p
<
0.05
)(数据
2 (f)和
2 (g))。同样,由EYFP-A1AR A1AR被迫表达质粒的差别部分逆转OGD-mediated对这些EAAT2表达和谷氨酸摄取受损(数字
2 (h)- - - - - -
2 (j))。这些数据表明,A2aAR与A1AR和形式A1AR / A2aAR异质二聚体,导致A1AR的抑制活动并通过抑制谷氨酸摄取EAAT2表达式。
A1AR / A2aAR异质二聚体监管EAAT2和谷氨酸摄取的表达。星形胶质细胞受到OGD没有条件或存在30 nM CCPA (A1AR受体激动剂)和200 nM SCH58261 (A2aAR拮抗剂)。(a, b) EAAT2的表达和细胞内谷氨酸水平检测到免疫印迹或谷氨酸化验设备,分别。数据表示的
意味着
±
年代
。
E
。
(
n
=
3
)。
∗
p
<
0.05
与对照组;<年代up>^年代up>
p
<
0.05
与OGD组;<年代up>#年代up>
p
<
0.05
与OGD / CCPA组。星形胶质细胞受到OGD条件没有或30 nM CCPA和200 nM CGS21680 (A2aAR受体激动剂)。(c, d) EAAT2的表达和细胞内谷氨酸水平检测到免疫印迹或谷氨酸化验设备,分别。数据表示的
意味着
±
年代
。
E
。
(
n
=
3
)。
∗
p
<
0.05
与对照组。(e)的蛋白质含量A2aARafter A2aAR siRNA成星形胶质细胞的转染48 h被西方墨点法评估。A2aAR-silenced星形胶质细胞受到OGD条件没有或30 nM CCPA的存在。(f, g) EAAT2的表达和细胞内谷氨酸水平检测到免疫印迹或谷氨酸化验设备,分别。数据表示的
意味着
±
年代
。
E
。
(
n
=
3
)。
∗
p
<
0.05
与对照组和
∧
p
<
0.05
与OGD组。(h)的蛋白质水平A1AR EYFP-A1AR质粒转染后为48 h星形胶质细胞被西方墨点法评估。星形胶质细胞与EYFP-A1AR质粒转染48 h,然后受到OGD条件没有或200海里SCH58261的存在。(i, j) EAAT2的表达和细胞内谷氨酸水平检测到免疫印迹或谷氨酸化验设备,分别。数据表示的
意味着
±
年代
。
E
。
(
n
=
3
)。
∗
p
<
0.05
与对照组;<年代up>^年代up>
p
<
0.05
与OGD组;<年代up>#年代up>
p
<
0.05
与OGD / EYFP-A1AR组。
3.3。PPARγ<斜体> < /斜体>调节谷氨酸EAAT2所吸收
然后,我们评估是否PPAR
γ调节EAAT2的表达和谷氨酸摄取。星形胶质细胞是使用罗格列酮(显示),PPAR
γ受体激动剂和受到OGD。PPAR
γ激活增加EAAT2的表达和细胞内谷氨酸水平相比仅在集团OGD(数字
3(一个)和
3 (b))。这些数据表明PPAR
γ能促进EAAT2和减弱OGD-impaired谷氨酸摄取的表达。我们进一步研究是否A1AR / A2aAR异质二聚体调节PPAR
γ表达式。图
3 (c)表明,PPAR的表达
γ增加时,星形胶质细胞与CCPA preincubated SCH58261然后对待OGD相比,星形胶质细胞治疗OGD孤单。A2aAR沉默PPAR的水平升高
γ在文化OGD没有或存在CCPA(图
3 (d))。此外,GW9962, PPAR的抑制剂
γ增加,废除了CCPA——SCH58261-induced EAAT2表达式OGD条件下(数字
3 (e)和
3 (f))。这些结果表明,A1AR / A2aAR异质二聚体调节通过PPAR EAAT2水平
γ。
PPAR
γ规范的表达EAAT2并从星形胶质细胞谷氨酸释放。(a, b) EAAT2蛋白质和细胞内星形胶质细胞谷氨酸水平下OGD缺席或者1的存在
μM罗格列酮被免疫印迹检测或谷氨酸化验设备,分别。数据代表
意味着
±
年代
。
E
。
(
n
=
3
)。
∗
p
<
0.05
与对照组和<年代up>^年代up>
p
<
0.05
与OGD组。(c)免疫印迹分析PPAR的表达
γ在星形胶质细胞治疗30 nM CCPA和200海里SCH58261暴露OGD 6 h。d .的PPAR
γ蛋白质含量与A2aAR siRNA星形胶质细胞转染48 h在被接受之前OGD条件与30 nM CCPA评估。(e, f)表达的免疫印迹分析EAAT2在星形胶质细胞对30 nM CCPA或200海里SCH58261 30的存在
μM GW9662,紧随其后的是接触OGD 6 h。
3.4。A1AR / A2aAR异质二聚体监管YY1的表达
在这项研究中,我们发现YY1蛋白质的表达,转录因子,增加(图
4(一))在星形胶质细胞被置于OGD条件。进一步研究表明,YY1减少当星形胶质细胞的表达与CCPA preincubated SCH58261然后放在OGD条件相比,OGD(图
4 (b))。此外,在A2aAR-silenced文化YY1 OGD的表达没有或存在CCPA减毒(图
4 (c))。这些数据表明,A1AR / A2aAR异质二聚体调节YY1表达式。图
4 (d)表明YY1 siRNA撞倒YY1蛋白质水平。YY1沉默提升EAAT2的表达在细胞在正常和OGD条件下(图
4 (e))。谷氨酸摄取试验表明,YY1沉默OGD条件下细胞内细胞的谷氨酸水平增加(图
4 (f)),这表明YY1沉默可以减弱OGD-impaired谷氨酸摄取。
A1AR / A2aAR异质二聚体通过YY1监管EAAT2表达式。星形胶质细胞(a) YY1蛋白水平下OGD 1 h和6 h条件评估。(b)的免疫印迹分析YY1表达在细胞治疗30 nM CCPA和200海里SCH58261暴露OGD 6 h。(c) YY1蛋白水平与A2aAr siRNA星形胶质细胞转染48 h,紧随其后的是30 nM CCPA接触OGD条件,评估。PPAR的表达
γ和YY1对待星形胶质细胞被西方墨点法评估。(d) YY1蛋白转染后YY1 siRNA成星形胶质细胞48 h被西方墨点法评估。YY1-silenced星形胶质细胞受到OGD条件没有或30 nM CCPA的存在。(e, f)的表达YY1 EAAT2和胞内谷氨酸水平检测到免疫印迹或谷氨酸化验设备,分别。数据代表
意味着
±
年代
。
E
。
(
n
=
3
)。
∗
p
<
0.05
与NC组和<年代up>^年代up>
p
<
0.05
与OGD / NC组。
3.5。HDAC1招聘由YY1压抑PPARγ<斜体> < /斜体>
上述结果表明,YY1和PPAR
γ可以调节EAAT2的表达;然而,YY1和PPAR之间的关系
γ是未知的。我们发现YY1沉默PPAR的水平升高
γ在细胞在正常和OGD条件下(图
5(一个))。此外,HDAC1的表达增加后OGD挑战(图
5 (b))。进一步研究表明,OGD提升YY1和HDAC1(图之间的交互
5 (c)下),这表明YY1可以招募HDAC1 OGD条件。荧光素酶分析表明,HDAC1沉默显著提升PPAR
γ推广活动(数据
5 (d)和
5 (e))。这些数据表明,抑制PPAR HDAC1 YY1新兵
γ启动子活性OGD条件下,导致EAAT2表达式的镇压和星形胶质细胞谷氨酸摄取。
YY1监管PPAR
γHDAC1。(一)PPAR
γ蛋白质含量在星形胶质细胞转染YY1 siRNA 48 h,然后暴露于OGD 6 h是评估。(b)的蛋白质水平在星形胶质细胞暴露于OGD HDAC1 6 h测量。(c)。Co-IP分析被用来评估YY1之间的交互和HDAC1。(d)的蛋白质水平在星形胶质细胞转染HDAC1 HDAC1 siRNA 48 h被西方墨点法评估。PPAR (e)荧光素酶检测评估
γ启动子活动293 T细胞转染HDAC siRNA 48 h,然后暴露于OGD 6 h。数据表示的
意味着
±
年代
。
E
。
(
n
=
3
)。
∗
p
<
0.05
与NC组和<年代up>^年代up>
p
<
0.05
与NC / OGD组。
4所示。讨论
应力诱导homo-oligomeric的形成和hetero-oligomeric GPCR复合物可能中断的功能A1AR或A2aAR [
31日]。这里,我们发现OGD提拔的形成A1AR-A2aAR heteromers A1AR的激活或失活A2aAR减毒OGD-mediated EAAT2抑制谷氨酸和吸收功能障碍。PPAR
γ可以调节EAAT2-mediated谷氨酸摄取[
43]。因此,我们调查是否A1AR-A2aAR heteromers监管通过PPAR EAAT2
γ。这些数据显示,A1AR / A2aAR A1AR异质二聚体的激活或失活的A2aAR减毒OGD-mediated抑制PPAR
γ抑制,导致升降胞内谷氨酸水平。接下来,我们进一步研究的机理A1AR-A2aAR heteromers控制通过PPAR EAAT2
γ。鉴于YY1可能抑制EAAT2的表达
21),是调节目标基因的转录因子,如PPAR
γ(
44]。我们进行实验,表明YY1隐含的表达EAAT2通过招聘HDAC1 PPAR
γ启动子区域。这些数据表明A1AR-A2aAR heterodimerization EAAT2表达和调节谷氨酸通过YY1-induced招聘HDAC1 PPAR的吸收
γ启动子区域。
GPCRs,比如A1AR A2aAR,检测和传输细胞外物质进入细胞并激活下游信号,导致生理和病理反应的起始
45]。一般来说,GPCRs单体的存在和功能的细胞表面受体(
46]。然而,最近的研究显示homo-oligomeric和hetero-oligomeric GPCR复合物在培养细胞表面的
47,
48]。这些人类/形成监管可能以不同的方式,如通过受体激动剂/拮抗剂。特别是,GPCR的功能形成,包括它们的药理特性和激活,可能比GPCR明显不同单体(
49,
50]。几项研究表明,A2aAR A1AR互动和二聚化海马和皮质突触体
28,
29日,
51]。此外,A2aAR在这种异质二聚体可以减少A1AR的亲和力的受体激动剂(
28]。在目前的研究中,OGD促进与A2aAR A1AR星形胶质细胞之间的相互作用和抑制EAAT2和谷氨酸摄取的表达。先前的研究表明,激活谷氨酸A2aAR也受损间隙(
33)的激活A1AR缺血中发挥保护作用[
34,
35,
52]。因此,我们怀疑OGD诱发A1AR-A2aAR heterodimerization, A2aAR激活抑制A1AR-mediated EAAT2表达的调节。进一步研究表明,A1AR激活和A2aAR失活提高了OGD-mediated EAAT2蛋白质水平和减少谷氨酸摄取受损。有趣的是,A2aAR受体激动剂预处理阻塞A1AR activation-induced EAAT2表达和谷氨酸摄取的变化。这些数据证明OGD介导A1AR-A2aAR heterodimerization抑制A1AR的活动,导致通过抑制谷氨酸摄取受损EAAT2表达式。
PPAR
γ,一个配体依赖性转录因子核受体超家族的成员,调节基因转录的绑定过氧物酶体扩散国的反应元素(ppr)在目标基因的启动子区域
53]。激活PPAR
γ在免疫中起着至关重要的作用,炎症
54),和新陈代谢
55]。最近,Tureyen等人表明,PPAR的激活
γ显示抑制炎症反应,降低梗死体积和神经赤字在大脑中动脉阻塞(MCAO)模型大鼠(
56]。京和他的同事们研究发现,细胞外谷氨酸被PPAR控制的水平
γ活动在U87MG和U251MG细胞(
57]。另一项研究表明,PPAR
γ具有神经保护作用,移植EAAT2星形胶质细胞(子活动
43]。与先前的报道一致,PPAR
γ能够促进EAAT2的表达和减弱OGD-impaired谷氨酸摄取。我们发现A1AR的激活和失活A2aAR可能增加PPAR的水平
γ在星形胶质细胞暴露于OGD条件。这些数据表明,A1AR / A2aAR heteromers控制EAAT2水平,通过调节PPAR谷氨酸摄取
γ表达式。
YY1、转录因子调节多个蛋白参与细胞增殖和分化,细胞凋亡,染色质重塑在各种细胞类型(
58- - - - - -
63年]。最近的研究显示,YY1中起关键作用的神经发展,神经功能,发展髓鞘形成,和神经系统疾病(
64年]。Aguirre等人,罗萨斯等人发现,YY1压制过剩(GLAST) / EAAT1表达式通过绑定其启动子在小鸡胶质细胞(
65年,
66年]。进一步的研究还表明,YY1负调节EAAT1和EAAT2表达在大鼠星形胶质细胞(
21,
67年]。符合上述文件,在我们的研究中,OGD诱导YY1表达式,YY1沉默EAAT2蛋白水平升高和减毒OGD-impaired老鼠星形胶质细胞谷氨酸摄取。有趣的是,YY1的表达是通过A1AR的激活或抑制A2AR的失活。这些数据表明,OGD-mediated A1AR / A2aAR heteromers上调YY1表达式,YY1压制EAAT2表达式和损害后谷氨酸。
先前的研究已经报道,YY1调节许多基因在转录水平(
68年]。YY1被发现的负监管效果依赖于hdac,一种组蛋白去乙酰酶抑制剂(
69年,
70年]。我们的结果表明,OGD诱导HDAC1的表达,这与YY1互动。Romera等人表明,suCEBPD / HDAC1 HDAC3复杂灭活PPARG2转录在adipocyte-like脂肪生成HepG2细胞(
43]。在此,我们还发现YY1或HDAC1沉默PPAR升高
γ水平细胞在正常和OGD条件和HDAC1击倒PPAR可能会受到抑制
γOGD条件下推广活动。这些数据表明,抑制PPAR HDAC1 YY1新兵
γOGD条件下推广活动。
综上所述,这些结果显示的机械模型A1AR-A2aAR heterodimerization-mediated EAAT2表达和调节谷氨酸通过YY1-induced招聘HDAC1 PPAR的吸收
γ启动子区域。在这个模型中,OGD促进A1AR-A2aAR异质二聚体的形成。这个复杂的提升YY1蛋白质水平,压制EAAT2表达式,削弱了谷氨酸的星形胶质细胞。可以部分抵消这些影响A2aAR A1AR的激活或失活。此外,YY1抑制EAAT2的表达通过招聘HDAC1 PPAR
γ启动子区域(图
6)。这些发现给洞察多个ARs的机制调节EAAT2,应促进对缺血性中风治疗的发展。
示意图说明腺苷受体A1-A2a heteromers调节PPAR
γ在星形胶质细胞转录和EAAT2表达。OGD提升A1AR-A2aAR heteromer形成和调节抑制PPAR YY1表达式
γ通过招聘HDAC1 PPAR的转录
γ启动子区域,导致废除EAAT2-mediated谷氨酸摄取。