OMCL 氧化医学与细胞寿命 1942-0994. 1942-0900. Hindawi 10.1155 /三百四十八万三千五百一十九分之二千零二十〇 3483519 研究文章 柠檬籽黄酮对H2O2 Dingyi 1 1 玉清 1 https://orcid.org/0000-0002-0353-3326 Lei 千千 1 https://orcid.org/0000-0001-9798-7865 2 Ruokun 2 https://orcid.org/0000-0001-8749-4936 3. 吉尔 德国 1 生物流变学科学与技术教育部重点实验室(重庆大学) 重庆大学肿瘤医院和重庆市肿瘤研究所和重庆市肿瘤医院 重庆400044 中国 cqch.cn 2 重庆市功能食品协同创新中心 重庆市功能食品工程技术研究中心 重庆市功能食品研究开发工程实验室 重庆教育学院 重庆400067 中国 cqu.edu.cn 3. 肿瘤转移转化研究与个体化治疗重庆市重点实验室 重庆大学肿瘤医院和重庆市肿瘤研究所和重庆市肿瘤医院 重庆400030 中国 cqch.cn 2020. 20. 4 2020. 2020. 07 02 2020. 22 03 2020. 04 04 2020. 20. 4 2020. 2020. 版权所有©2020杨定义等。 这是一篇在知识共享署名许可下发布的开放存取的文章,它允许在任何媒体上无限制地使用、传播和复制,只要原始作品被适当地引用。

在这项研究中,在柠檬种子类黄酮(FLS)被用来评估在由H诱导的人胚胎肾293T细胞的氧化性损伤(HEK 293T细胞)及其改进2O2 在体外实验结果表明,不同浓度的黄酮类化合物处理HEK 293T细胞的存活率为50 μ克/毫升,100  μ克/毫升和150 μg/mL)超过95%,说明无明显毒性作用。与正常组相比,H2O2(0.3 mmol/L)显著导致HEK 293T细胞氧化应激损伤。经黄酮类化合物处理后,受损细胞的存活率增加,高浓度(150 μg/mL)的总黄酮含量为76.2%。黄酮类化合物也能有效抑制H2O2全身的细胞凋亡。同时,类黄酮处理显著降低了细胞丙二醛含量,提高了过氧化氢酶(CAT)、超氧化物歧化酶(SOD)、谷胱甘肽(GSH)和谷胱甘肽过氧化物酶(GSH- px)水平。定量聚合酶链反应(Quantitative polymerase chain reaction, qPCR)和Western blot分析也提示FLS上调了H2O2-诱导的HEK 293T细胞氧化损伤。高效液相色谱分析表明,FLS含有6种化合物,包括没食子儿茶素、咖啡酸、表儿茶素、牡荆素、槲皮素和橙皮苷。FLS被证明具有良好的抗氧化能力 在体外并能明显改善H2O2.生物活性价值值得研究,在进一步的研究。

重庆教育学院 重庆市功能食品协同创新中心科研平台建设 重庆市重大疾病预防控制技术项目 2019年zx002 院士领导的重庆市科技创新指导项目 cstc2017jcyj-yszx0001 重庆市自然科学基金 cstc2019jcyj-msxmX0648 重庆市教委 KJQN201900104 科技研究项目
1.介绍

柠檬(L.)缅甸。F.作为一种富含维生素的水果被广泛食用。 1].这种水果中的大部分柠檬籽都被丢弃了。在中药中,一些化合物中只加入少量的柠檬籽。在现代分子生物学和其他技术中,对其生物活性知之甚少。一项研究表明,柠檬籽提取物可以在大豆油加工过程中发挥抗氧化作用[ 2].柠檬籽提取物能保持氧化稳定性 α-大豆油加工中的生育酚[ 3.]. 在体外实验已经证明,柠檬籽提取物可以抑制人乳腺癌的增殖和发挥抗癌作用[ 4].

人体有氧代谢产生的活性氧(ROS)主要包括超氧阴离子(O2-)、过氧阴离子(O22 -)、羟基自由基(·OH)、有机过氧自由基(ROO .-)和H2O2.当大量的氧自由基(雌花)超过自己的抗氧化保护系统的范围和过度氧化发生时,它会攻击人类细胞获得电子和保持自己的稳定,导致损失相对于细胞的形态和功能,以及炎症和其他类型的慢性疾病,例如心血管疾病、神经系统疾病、肾脏疾病和癌症[ 5 6].这些疾病的机制,在大多数情况下,涉及关键生理分子的氧化变化,如蛋白质,脂质,碳水化合物,核酸,基因表达的调节,和炎症反应[ 7].为了保护身体免受OFR的损害,人类通过自身的抗氧化系统和摄入外源性抗氧化剂来抵抗氧化应激。酶系统包括超氧化物歧化酶(SOD)、过氧化氢酶(CAT)和谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)系统。非酶抗氧化剂包括麸质、茶多酚、生育酚、类黄酮和脂肪酸[ 8].是活性氧的主要形式 在活的有机体内H2O2,来源广泛,性质稳定,可与细胞内铁产生·OH2+通过芬顿反应,从而引起连锁反应,是细胞氧化应激建模的首选诱导剂[ 9].

293T细胞是人肾上皮细胞系,对外界环境影响明显,蛋白表达较强。常用于检测试样氧化应激的抑制作用[ 10].肾上皮细胞的损伤是密切相关的慢性肾功能疾病,如慢性肾盂肾炎和慢性梗阻性肾病[ 11].肾上皮细胞受损会导致肾功能下降,也会影响其他疾病,包括骨髓瘤、白血病、恶性肿瘤等[ 12].人胚肾293T可以有效地通过氧化应激检测活性物质在疾病防治中的作用。因此,这项研究调查了黄酮类化合物的抗氧化活性 在体外并建立使用H的HEK 293T细胞损伤模型2O2作为诱导物。研究了不同浓度黄酮类化合物对氧化应激损伤细胞的保护作用。同时测定了黄酮类化合物的活性成分,为黄酮类化合物治疗氧化应激引起的相关疾病提供了参考。

2.材料和方法 2.1。制备黄酮从柠檬种子提取物(FLS)

FLS(重庆汇达柠檬科技集团有限公司,重庆,中国)的萃取液,干燥,保持柠檬种子恒重,在研钵中研磨,过筛获得柠檬籽粉。The powder was degreased with n-hexane for 90 min (degreasing temperature, 50°C; material liquid ratio, 1 : 30; and power, 200 W). After filtration and drying, flavonoids were extracted from 8 g of degreased lemon seed powder with 300 mL of 95% ethanol for 60 min (temperature, 50°C; power, 200 W). Finally, the sample solution was obtained by filtration and the dry FLS were evaporated using a rotary evaporator (Great Wall R-1050, Zhengzhou Greatwall Scientific Industrial and Trade Co., Ltd., Zhengzhou, Henan, China).

2.2.细胞培养

胡man embryonic kidney (HEK) 293T cells (Shanghai Institute of Biochemistry and Cell Biology, Shanghai, China) were resuscitated from liquid nitrogen and seeded in Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium (DMEM) (high sugar, containing 10% fetal bovine serum and 1% penicillin-streptomycin double antibody solution) (Solarbio Life Sciences, Beijing, China). The medium was changed two or three times a week in a saturated humid environment at 37°C and 5% CO2.当细胞融合达到90%时,用胰蛋白酶(0.25%)(Solarbio Life Sciences)消化传代。所有的实验都使用对数期的细胞。

2.3.FLS对hek293t细胞的毒性研究

HEK 293T细胞悬浮液( 1 × 10 4 细胞/mL)接种到96孔细胞培养板( 60 μ l 细胞 + One hundred. μ l 文化 媒介 ), 37℃培养24 h至贴壁,20 μ不同浓度的FLS溶液(正常组,50 μ克/毫升,100  μ克/毫升和150 μg/mL)。

2.4.MTT法检测细胞存活率

采用MTT法测定细胞存活率:HEK 293T细胞先在细胞壁上培养24 h, 20 μ升FLS溶液中,用不同浓度(正常组,50  μ克/毫升,100  μ克/毫升和150 μg/mL);20 μ加入L的MTT (5 mg/mL) (Solarbio Life Sciences),混合培养4 h。丢弃上培养液,加入150 μlof dimethyl sulfoxide (DMSO) (Solarbio Life Sciences), shaking for 30 min in dark period and at 37°C. Optical density (OD) was measured at 490 nm. The experiment was performed in triplicate. 细胞 生存 速度 基于“增大化现实”技术 / 作为 × One hundred. ,其中Ar为FLS治疗组的OD, As为正常组的OD (Evolution™350,Thermo Fisher Scientific, New York, USA)。

2.5.细胞增殖的观察

HEK 293T细胞悬浮液( 1 × 10 4 细胞/mL)接种到96孔细胞培养板( 60 μ l 细胞 + One hundred. μ l 文化 媒介 ), cultured at 37°C for 24 h, adhered to the wall, and cultured with 20  μ的H L2O2(0.3 mmol/L) μ升用不同浓度的溶液FLS(正常组,40  μ克/毫升,100  μ克/毫升和160 μg/mL) was added to the culture for 24 h, and the cell survival rate was measured using the MTT method (Figure 1(a))。

柠檬籽黄酮对人胚肾293T细胞存活率的影响。所呈现的值是 的意思是 ± 标准 偏差 N 6 /组)。安妮横线上不同字母的平均值有显著差异( P < 0.05 ),根据Tukey的诚实的显著差异。正常:未处理HEK 293T细胞;FLSL: 50 μg/mL经fls处理的HEK 293T细胞;FLSM: 100 μg/mL经fls处理的HEK 293T细胞;FLSH: 150 μg/mL fls处理的HEK 293T细胞。

HEK 293T细胞悬浮液( 1 × 10 4 细胞/mL)接种到96孔细胞培养板( 60 μ l 细胞 + One hundred. μ l 文化 媒介 ), cultured at 37°C for 24 h, adhered to the wall, and cultured with 20  μ的H L2O2(0.3 mmol/L)处理4 h,制备氧化损伤模型。丢弃上介质后,20 μ升用不同浓度的溶液FLS(正常组,40  μ克/毫升,100  μ克/毫升和160 μg/mL) was added to the culture for 24 h, and the cell survival rate was measured using the MTT method (Figure 1(b))。

2.6。细胞凋亡的观察流式细胞仪

根据细胞增殖实验对HEK 293T细胞进行处理,收集并形成单细胞悬液。固定和染色后,用流式细胞仪检测细胞凋亡(Accuri C6, BD Biosciences, San Jose, CA, USA)。

2.7。hek293t细胞丙二醛(MDA)、超氧化物歧化酶(SOD)、谷胱甘肽(GSH)、谷胱甘肽过氧化物酶(GSH- px)、过氧化氢酶(CAT)的测定

HEK 293T细胞处于对数生长期,用0.25%胰蛋白酶消化,在六孔细胞培养板接种( 1 × 10 5 细胞/mL), 2 mL DMEM在37°C和5% CO的饱和潮湿环境中培养2保温24 h,贴壁,加200 μ的H L2O2(0.3 mmol/L), mixed well, and cultured for 4 h to prepare the oxidative damage model. FLS aqueous extract (200  μL)不同浓度(0 μ50 g / mL, μ克/毫升,100  μ克/毫升和150 μg/mL),加入HEK 293T细胞氧化损伤模型每孔,并加入0.1 mol/L的PBS溶液维持平衡。细胞在37°C和5% CO条件下进一步培养224 h。将经FLS处理的HEK 293T细胞从旧培养基中取出,用预冷的PBS洗涤,用200 mol / l与细胞壁分离 μL,取1.5 mL离心管,离心弃上清。再次用预冷PBS洗涤细胞,4000r /min离心15 min,弃上清液,加入800 μL生理盐水,均质。按照试剂盒说明书测定匀浆中MDA、SOD、GSH、GSH- px、CAT的含量(南京建城生物工程研究所,中国南京)。

2.8。单独分析

按照本节细胞培养方法培养hek293t细胞 2.2;the HEK 293T cells in the logarithmic growth stage were digested by 2.5 g/L trypsin to form a single cell suspension. The HEK 293T cells were inoculated into 24-well plates, with 50 cells per well. Each group of cells was inoculated with six wells, five groups in total (normal, control, FLSL, FSLM, and FLSH groups). HEK 293T cells in the normal group were cultured for 1 week without any other treatment. HEK 293T cells in the control group were cultured using 900  μ大号DMEM培养基和100  μL培养液含H2O2(0.3更易/ L);FLSL组、FSLM组、FLSH组采用800 μL DMEM培养基,100 μL培养液含H2O2(0.3 mmol/L), and 100  μ含有FLS L培养介质溶液(40  μg / mL, 80 μ克/毫升和160 μg/mL)。丢弃培养基,用PBS洗涤培养皿孔,用1 mL纯甲醇固定15 min,使用Giemsa染色液(Solarbio Life Sciences)染色。将培养板置于低倍数显微镜下(IX73, Olympus, Tokyo, Japan),计数50个以上细胞的克隆数,按以下公式计算克隆形成率: 克隆 形成 速度 克隆 数量 / 接种 数量 × One hundred. 13].

2.9。定量聚合酶链反应(qPCR)

将HEK 293T细胞培养到六孔板( 1 × 10 5 细胞/mL),用不同浓度的FLS处理。用TRIzol Reagent (Thermo Fisher Scientific)提取HEK 293T细胞总RNA。我们添加了1 μL Oligo (dT) 18引物(500 ng)和1.0 μL的总RNA(1.0  μg)至10.0  μL非核酸酶水在65°C梯度PCR仪上加热5分钟。然后,混合物含有4.0 μL的5x反应缓冲液,1.0 μRiboLock RNase Inhibitor (20 U), 2.0 μL的10毫米dNTP混合,和1.0 μlof RevertAid Reverse Transcriptase (200 U/ μl) (Thermo Fisher Scientific) was added to the total RNA system, which was transcribed into cDNA at 42°C for 60 min and 70°C for 5 min. Amplification conditions were as follows: denaturation at 95°C for 3 min, annealing at 60°C for 30 s, extension at 95°C for 1 min, and a total of 40 cycles. mRNA expressions of SOD, CAT, GSH, and GSH-Px were detected using qPCR (Table 1).每个基因的cDNA平行扩增3次,得到Ct均值。以管家基因GAPDH为内参,按 2 Ct (StepOnePlus, Thermo Fisher Scientific) [ 14].

逆转录聚合酶链反应引物序列。

加入数量 基因名字 序列
NM_000454.4 草皮 转发:5 -AGATGGTGTGGCCGATGTGT-3 反向:5 -TCCAGCGTTTCCTGTCTTTGTA-3

NM_001752.3 转发:5 -TGTTGCTGGAGAATCGGGTTC-3 反向:5 -TCCCAGTTACCATCTTCTGTGTA-3

NM_000178.4 GSH. 转发:5 -TACGGCTCACCCAATGCTC-3 反向:5 -CTATGGCACGCTGGTCAAATA-3

NM_201397.2 GSH-PX. 转发:5 -GTCGGTGTATGCCTTCTCGG-3 反向:5 -CTGCAGCTCGTTCATCTGGG-3

NM_002046.7 GAPDH 转发:5 -TCAAGAAGGTGGTGAAGCAGG-3 反向:5 -AGCGTCAAAGGTGGAGTG-3
2.10。Western Blot.

用RIPA细胞裂解缓冲液裂解细胞后,分离上清,用蛋白检测试剂盒测定蛋白浓度。我们分离出30 - 50 μ通过SDS-PAGE将其电标记到硝酸纤维素(NC)膜上。将NC膜密封,依次与SOD1、SOD2、GSH1、CAT的一抗和二抗结合,采用化学发光法检测抗体(Thermo Fisher Scientific)结合区(Tanon Science and Technology Co., Ltd, Shanghai, China) [ 15].

2.11。高效液相色谱法

将FLS提取物溶于DMSO中,得到浓度为10 mg/mL的溶液,然后用50%甲醇稀释,最终得到浓度为2 mg/mL的溶液。经过0.22之后 μM有机滤膜,进样量为5 μ色谱柱:Accucore C18柱(2.6 μ米, 4.6 mm × 150 mm );流动相A: 0.5%乙酸;流动相B:乙腈;流速:0.6 mL/min;列温度:35°C;检测波长:285 nm;梯度洗脱条件:0-10 min, 12%-25% A;10-30分钟,25%-45%

2.12。统计数据

SPSS 20.0统计软件来分析数据。所有的实验数据,重复3次。结果表示为 的意思是 ± 标准 偏差 价值观。采用邓肯的多范围检验和方差的单向分析的结果进行了分析。一种 P < 0.05 被认为是统计学意义的。

结果 3.1.FLS对hek293t细胞的毒性研究

如图所示 1治疗后50岁 μ克/毫升,100  μ克/毫升和150 μg/mL时,HEK 293T细胞的存活率超过95%,说明FLS在该范围内(0 ~ 150 μg/mL)。因此,FLS从柠檬籽中提取,其浓度为50 μ克/毫升,100  μ克/毫升和150 μ克/ mL的在随后的研究中使用。

3.2.FLS对H<sub>2</sub>O<sub>2</sub>诱导的HEK 293T细胞增殖的保护作用

如图所示 2结果表明,与正常细胞相比,H2O2显著降低。H2O2(图 2(a)) H后2O2诱导的氧化损伤(图 2(b))的存活率为50 μ克/毫升,100  μ克/毫升和150 μ克/毫升FLS萃取物显著提高,并且具有高浓度处理的细胞的存活率(150  μg/mL)为89.2%,且效果更显著( P < 0.05 ).

柠檬种子(FLS)的类黄酮对H的成活率影响2O2受损的人类胚胎肾293T细胞。(a)与H2O2和FLS的;(b) H后用FLS治疗2O2诱导的氧化损伤。安妮横线上不同字母的平均值有显著差异( P < 0.05 ),根据Tukey的诚实的显著差异。正常:未处理HEK 293T细胞;FLSL: 50 μg/mL经fls处理的HEK 293T细胞;FLSM: 100 μg/mL经fls处理的HEK 293T细胞;FLSH: 150 μg/mL fls处理的HEK 293T细胞。

3.3。FLS对由H <子> 2 </子> 0 <子> 2 </子>诱导HEK 293T细胞的损伤抑制

在图 3.,与正常细胞相比,hek293t细胞受到H2O2(97.1%的对照组细胞受损和凋亡)。经过50次治疗后 μg/mL(77.1%损伤和凋亡细胞),100 μg/mL(66.2%损伤和凋亡细胞) μ克/毫升FLS(39.8%受损和凋亡细胞)提取物,细胞损伤显著抑制( P < 0.05 ),且随着FLS浓度的增加抑制效果更好。

上ħ柠檬种子黄酮(FLS)的抑制细胞凋亡的效果2O2受损的人类胚胎肾293T细胞。安妮横线上不同字母的平均值有显著差异( P < 0.05 ),根据Tukey的诚实的显著差异。正常:未处理HEK 293T细胞;FLSL: 50 μg/mL经fls处理的HEK 293T细胞;FLSM: 100 μg/mL经fls处理的HEK 293T细胞;FLSH: 150 μg/mL fls处理的HEK 293T细胞。

3.4。在MDA,SOD,GSH,GSH-Px活性与FLS处理的变化,并在HEK 293T细胞中CAT水平

如图所示 4结果表明,H2O2(0.3 mmol/L)处理4 h显著高于正常细胞,但OD、GSH、GSH- px和CAT水平显著低于正常细胞。经不同浓度的FLS处理后(50 μ克/毫升,100  μ克/毫升和150 μ克/毫升),MDA含量是显著降低( P < 0.05 ),但SOD、GSH、GSH- px和CAT水平显著升高( P < 0.05 ).的150的效果  μg/mL FLS处理最显著。

柠檬籽黄酮(FLS)对H暴露人胚肾293T细胞MDA、SOD、GSH、GSH- px、CAT水平的影响2O2安妮横线上不同字母的平均值有显著差异( P < 0.05 ),根据Tukey的诚实的显著差异。正常:未处理HEK 293T细胞;FLSL: 50 μg/mL经fls处理的HEK 293T细胞;FLSM: 100 μg/mL经fls处理的HEK 293T细胞;FLSH: 150 μg/mL fls处理的HEK 293T细胞。

3.5.FLS对受损hek293t细胞克隆形成的影响

如表所示 2与正常的HEK 293T细胞相比,H2O2有显著的影响( P < 0.05 )对hek293t细胞克隆形成的影响,对照组hek293t细胞克隆数量最少。FLS可以显著( P < 0.05 )抑制H2O2,且随着FLS浓度的增加,抑制作用更强。

关于H中克隆形成柠檬种子(FLS)的黄酮类化合物的影响2O2诱导损伤人胚胎肾293T细胞。

集团 克隆的数量 单独使用率(%)
正常的 48.39 ± 4.57 一个 100.00 ± 0.00 一个
控制 10.32 ± 3.02 e 21.33 ± 2.77 e
FLSL 20.59 ± 3.80 d 42.55 ± 3.12 d
FLSM 31.14 ± 4.11 c 64.35 ± 4.83 c
FLSH 39.67 ± 2.03 b 82.00 ± 2.46 b

所呈现的值是 的意思是 ± 标准 偏差 N 6 /组)。安妮同一列上不同字母的平均值有显著差异( P < 0.05 ),根据Tukey的诚实的显著差异。正常:未处理HEK 293T细胞;FLSL: 50 μg/mL经fls处理的HEK 293T细胞;FLSM: 100 μg/mL经fls处理的HEK 293T细胞;FLSH: 150 μg/mL fls处理的HEK 293T细胞。

3.6。FLS对受损HEK 293T细胞SOD、CAT、GSH、GSH- px表达的影响

如图所示 5,H后2O2(0.3 mmol/L)时,HEK 293T细胞中SOD、CAT、GSH、GSH- px mRNA表达量和SOD1、SOD2、CAT、GSH蛋白表达量均显著降低。FLS处理后受损细胞中SOD、CAT、GSH、GSH- px表达显著升高( P < 0.05 ),与试剂盒测试结果一致。FLS可以增加SOD、CAT、GSH和GSH- px的水平,这是使用试剂盒通过qPCR和Western blot检测受损HEK 293T细胞的表达。

柠檬籽黄酮(FLS) mRNA (a)和蛋白(b)在H2O2受损的人类胚胎肾293T细胞。安妮横线上不同字母的平均值有显著差异( P < 0.05 ),根据Tukey的诚实的显著差异。正常:未处理HEK 293T细胞;FLSL: 50 μg/mL经fls处理的HEK 293T细胞;FLSM: 100 μg/mL经fls处理的HEK 293T细胞;FLSH: 150 μg/mL fls处理的HEK 293T细胞。

3.7。FLS的HPLC测定

如图所示 6,FLS含有六种化合物,包括没食子儿茶素,咖啡酸,表儿茶素,牡荆素,槲皮素,橙皮苷和。Their peak retention time on the liquid chromatogram was 5.664 min, 9.715 min, 10.611 min, 20.442 min, 25.017 min, and 31.010 min, respectively. The contents of the six components in the FLS were 18.304 mg/g, 37.294 mg/g, 25.080 mg/g, 108.539 mg/g, 334.585 mg/g, and 145.983 mg/g, respectively.

柠檬种子的黄酮成分:(一)标准色谱图;柠檬种子色谱(b)的类黄酮。1:没食子儿茶素;2:咖啡酸;3:表儿茶素;4:牡荆素;5:槲皮素;6:橙皮苷。

4.讨论

氧化应激引起的损伤影响正常细胞的增殖,导致细胞死亡和细胞增殖下降[ 16].由此可见,FLS能抑制H2O2并保护正常细胞增殖。氧化应激可损伤细胞,引起细胞凋亡,促进正常细胞死亡,通过降低氧化损伤细胞的凋亡程度,有效保护正常细胞[ 17].当FLS和H2O2同时加入培养细胞,FLS可直接与H2O2,减少H的量2O2能破坏细胞,从而发挥不是H后加入FLS的干预作用更强2O2首先破坏细胞。因此,FLS能有效防止氧化应激引起的细胞凋亡,保护正常细胞。

细胞膜释放出的MDA与蛋白质和核酸发生反应,引起交联聚合,抑制蛋白质合成,主要是通过破坏细胞膜结构和功能,改变其通透性,从而影响正常机体的生化反应[ 18].因此,MDA含量可以反映脂质过氧化和细胞损伤的程度。的适当的抗氧化物质的进可降低ROS诱导的脂质过氧化的程度[ 19].CAT、SOD、GSH- px是重要的抗氧化酶,GSH也是具有良好抗氧化作用的酶。它们能有效调节体内氧化平衡,抑制氧化应激引起的损伤[ 20.].本研究结果表明,FLS能有效减轻H2O2并保护细胞。

克隆形成分析(集落形成分析)是一个 在体外基于单个细胞的长成的菌落,这基本上是在群体中的每个小区的“无限”除以功率的实验的能力的细胞存活试验。产克隆测定可以被用于确定细胞毒性或药物或活性物质的疗效[ 21].在本研究中,我们还发现FLS可以有效抑制过氧化氢引起的正常细胞的异常克隆形成,达到细胞保护的效果。

没食子儿茶素,这是从植物中衍生的化合物,具有一定的抗氧化活性[ 22].咖啡酸具有广泛的抗菌和抗病毒活性[ 23],并已被证实能抑制小鼠脑匀浆中脂质过氧化物的形成[ 24].表儿茶素具有抗氧化、清除自由基、增强新陈代谢、调节免疫、抗肿瘤等作用。它的抗氧化能力被认为是由酚羟基与分子中的自由基结合来清除自由基[ 25].牡荆素的主要作用是活血化瘀、理气疏通血管。牡荆素也是一种天然药物成分,具有预防癌症和抗肿瘤活性[ 26].槲皮素广泛存在于植物中,已被证明具有抗氧化、抗炎、抗病毒、抗肿瘤、抗动脉粥样硬化、神经保护、降血压等生物活性[ 27].橙皮苷具有抗炎、抗病毒和抗菌作用,用于治疗高血压和心肌梗死[ 28].这些六种物质是有效的生物活性的所有化合物。FLS的正常保护作用归因于这些化学品的生物活性,以及​​这些化合物的混合物可以产生改进的组合效果,其权证进一步调查。

5.结论

在这项研究中, 在体外本实验旨在研究FLS对氧化损伤下细胞水平和潜在活性化合物的改善作用。的结果 在体外实验表明,FLS表明对氧化的细胞损伤,从而避免由氧化应激引起的细胞死亡的有益效果,抑制细胞凋亡的氧化损伤导致的,并增强在细胞中抗氧化酶以抵抗氧化应激。成分分析结果表明,包含在FLS活性化合物具有多种生物活性,并且它们的组合显示出对氧化细胞损伤的抑制作用。不过,这项研究只是初步研究抗氧化活性和改善从柠檬种子FLS的氧化损伤 在体外.抗氧化保护机制 在活的有机体内需要额外的探索。

数据可用性

没有数据来支持这项研究。

的利益冲突

作者声明他们没有潜在的利益冲突需要披露。

作者的贡献

实验大部分由杨定义完成,手稿由杨定义撰写;江勇、王玉青、罗倩倩、赵鑫、易若坤对数据分析有贡献;张欣设计并指导了这项研究,并阅读了最终手稿。

致谢

重庆市教委科技攻关项目(KJQN201900104);重庆市自然科学基金项目(cstc2019jcyj-msxmX0648);重庆市院士科技创新指导项目(cstc2017jcyj-yszx0001);重庆市重大疾病预防控制技术项目(2019ZX002);重庆市功能食品协同创新中心科研平台建设

s W。 g . X。 F。 x H。 j . C。 柠檬新品种“响水”( 柠檬(L.)缅甸。F) 性的植物繁殖 2012年 25 4 337 345 10.1007 / s00497-012-0201-8 2- s2.0-84869117694 23114638 吕宋岛 D. M. M. 豪尔赫 N。 柠檬籽提取物的抗氧化活性( 柠檬)加入大豆油进行加速培养箱贮存试验 Quimica新星 2008年 32 4 946. 949. 吕宋岛 d . M。 豪尔赫 N。 柠檬籽提取物在大豆油中的氧化稳定性和α -生育酚的保留( 柠檬) thermoxidation 天然产物通信 2009年 4 11 1553 1556 19967989 J。 Jayaprakasha G. K. Uckoo r·M。 pat b S。 对人乳腺癌(MCF-7)细胞柠檬籽提取物的化学预防和细胞毒性效果的评价 食品和化学毒理学 2012年 50 2 423 430 10.1016 / j.fct.2011.10.057 2 - s2.0 - 84862777076 22056335 Poulianiti k P。 Kaltsatou 一个。 Mitrou G. I. Jamurtas 答:Z。 Koutedakis Y。 Maridaki M。 Stefanidis 我。 Sakkas G. K. Karatzaferi C。 慢性肾脏疾病的全身氧化还原失衡:一项系统综述 氧化医学与细胞寿命 2016年 2016年 19 8598253 10.1155 / 2016/8598253 2 - s2.0 - 84984887774 27563376 拉盖尔 M。 Lecomte J。 维伦纽夫 P。 现有的方法,新的趋势和挑战:抗氧化剂抵消脂质氧化的能力的评价 脂类研究进展 2007年 46 5 244 282 10.1016 / j.plipres.2007.05.002 2- s2.0-34547106285 17651808 M。 Venkataraman V。 Razavian M。 库珀 B。 Zoungas 年代。 Ninomiya T。 韦伯斯特 a . C。 Perkovic V。 Cochrane肾移植组 抗氧化剂治疗慢性肾病 Cochrane系统评价数据库 2012年 10 10条CD008176 10.1002/14651858. cd008176.pub2 2 - s2.0 - 84871865822 Danielisova V。 Nemethova M。 戈特利布 M。 布达 J。 后处理后内源性抗氧化酶活性的变化 细胞与分子神经生物学 2006年 26 7 - 8 1181. 1191. 10.1007 / s10571 - 006 - 9034 - z 2 - s2.0 - 33845548578 16741674 Shanmugasundaram D。 Duraiswamy 一个。 Viswanathan 一个。 Sasikumar c·S。 Cherian S. M. Cherian k . M。 抗糖尿病多药复方(ADPHF6)的开发及其抗氧化活性的评估对ros诱导的pUC19和人淋巴细胞损伤的体外研究 补充与综合医学杂志 2016年 13 3. 267 274 10.1515 / jcim - 2015 - 0028 2 - s2.0 - 84999287208 27352446 程ydF4y2Ba y . H。 x Q。 十Z. 问:问。 Q。 康ydF4y2Ba x L。 Y. Y. x H。 骨髓间充质干细胞对293T细胞衰老机制的研究 医学杂志的国家在中国西南国防 2019年 29 7 727. 730. j·L。 y . C。 x F。 一个。 风扇 年代。 z Y。 G.问: c . Z。 人类慢病毒PKD2的构建来纠正多囊蛋白2的表达和Wnt / β-catenin信号通路在Pkd2-null细胞系中的作用 中华泌尿外科杂志 2018年 39 1 62 68 X. X. x D。 x C。 b . L。 H。 h·T。 的Klotho基因的高表达的上糖尿病肾病大鼠肾脏保护作用 中国生物制品杂志 2014年 27 8 1015 1020 Lv G。 p·G。 D。 一个 l . P。 c . Y。 Y。 太阳 j . H。 T。 x J。 GHGKHKNK八肽对肿瘤克隆形成、粘附和体外侵袭的影响 中国老年学杂志 2008年 28 15 1470 1472 Y。 棕褐色 F。 C。 W。 W。 Q。 G。 W。 X。 白牡丹(发酵山茶花)多酚通过抗氧化作用预防酒精性肝损伤 抗氧化剂 2019年 8 11 524. 10.3390 / antiox8110524 31683564 B。 J。 太阳 P。 R。 X。 X。 生碗茶(托茶)多酚通过调节小鼠肠道功能预防非酒精性脂肪肝 生物分子 2019年 9 9 435 10.3390 / biom9090435 2 - s2.0 - 85071757144 31480575 H。 k . I。 jang. M。 Namkoong 年代。 公园 R。 H。 我。 w·K。 公园 J。 Conessine通过抑制自噬通量干扰氧化应激诱导的C2C12成肌细胞死亡 《公共科学图书馆•综合》 2016年 11 6条e0157096 10.1371 / journal.pone.0157096 2 - s2.0 - 84975157015 27257813 J。 C。 J。 Z。 w . C。 S. H. 还原型谷胱甘肽C60衍生物对过氧化氢诱导HEK 293T细胞凋亡的保护作用 华中科技大学学报(医学版) 2016年 36 3. 356 363 10.1007 / s11596-016-1591-X 2 - s2.0 - 84983050257 27376803 Marnett l . J。 脂质过氧化-丙二醛对dna的损伤 突变的研究 1999 424 1 - 2 83 95 10.1016 / s0027-5107(99)00010-X 2- s2.0-0033535371 10064852 c . X。 H。 Y。 Y。 c . L。 j . P。 饮用绿茶与患肝癌的风险:一项荟萃分析 营养和癌症 2017年 69 2 211 220 10.1080 / 01635581.2017.1263754 2 - s2.0 - 85009822214 28095030 玩滚球的人 C。 蒙塔古 m V。 Inze D。 超氧化物歧化酶与耐受性 植物生物学年度回顾 1992 43 1 83 116 10.1146 / annurev.pp.43.060192.000503 2 - s2.0 - 0005784996 弗兰肯 n。 罗德米德 h . M。 堵塞 J。 Haveman J。 面包车布里 C。 体外细胞的克隆形成测定 自然协议 2006年 1 5 2315 2319 10.1038 / nprot.2006.339 2- s2.0-34548313955 17406473 巴斯克斯西斯内罗斯 l . C。 Lopez-Uriarte P。 Lopez-Espinoza 一个。 纳瓦罗梅萨 M。 埃斯皮诺萨盖拉多 a . C。 古兹曼Aburto m B。 绿茶及其表没食子儿茶素(EGCG)含量对人体体重和脂肪质量的影响:系统综述 Nutricion Hospitalaria 2017年 34 3. 731. 737. 10.20960 / nh.753 2 - s2.0 - 85020922024 28627214 Tolba m F。 奥马尔 h·A。 Azab 美国年代。 哈里发 答:E。 Abdel-Naim 答:B。 阿卜杜勒 - 拉赫曼 美国Z。 咖啡酸苯乙酯:其抗氧化活性的评价,对缺血再灌注损伤和药物不良反应的保护作用 《食品科学与营养评论》 2016年 56 13 2183 2190 10.1080 / 10408398.2013.821967 2 - s2.0 - 84982957860 25365228 Basu Mallik 年代。 Mudgal J。 Nampoothiri M。 霍尔 年代。 Dukie S. A. 授予 G。 c . M。 Arora D。 咖啡酸可以减轻脂多糖引起的小鼠的疾病行为和神经炎症 神经学字母 2016年 632 218 223 10.1016 / j.neulet.2016.08.044 2 - s2.0 - 84987642023 27597761 年代。 l 郑ydF4y2Ba Y。 P。 Y。 程ydF4y2Ba Y。 X。 绿茶表儿茶素的抗突变性和抗癌研究进展 中华医学科学杂志 1991 6 4 233 238 1813062 Nikfarjam b。 Hajiali F。 Adineh M。 Nassiri-ASL M。 槲皮素和牡荆素对活化的人外周血中性粒细胞的抗炎作用:槲皮素和牡荆素对人中性粒细胞的作用 杂志Pharmacopuncture的 2017年 20. 2 127 131 10.3831 / KPI.2017.20.017 2 - s2.0 - 85028995227 30087790 Karuppagounder V。 arumugam 年代。 Thandavarayan R. A. Sreedhar R。 Giridharan 诉V。 渡边 K。 槲皮素在特应性皮炎中的抗炎分子靶点 今天药物发现 2016年 21 4 632 639 10.1016 / j.drudis.2016.02.011 2 - s2.0 - 84959486930 26905599 公园 W. S. 公园 m . S。 s W。 S. A. 杰蒙 Y。 J。 美国K。 橙皮苷对缺血性急性肾损伤的保护作用(Sprague-Dawley大鼠) 移植程序 2019年 51 8 2838 2841 10.1016 / j.transproceed.2019.02.055 2 - s2.0 - 85071674391 31493919