1。介绍
特级初榨橄榄油(EVOO),地中海饮食中脂肪的主要来源,是许多研究的主题,因为一些流行病学数据显示,它积极地影响人类的健康,降低癌症的发病率,高血压和心血管疾病(
1 ,
2 ]。除了这些公认的影响,最近的临床研究支持地中海饮食的功效,它的主要脂肪也对认知能力下降与衰老有关的发病和进展以及许多神经退行性疾病。在这种神经系统环境中,多个数据突出EVOO丰富的天然化合物的作用[
3 ,
4 ]。
EVOO健康效应可以归因于大量的分子包含在其可皂化的(脂肪酸)和不皂化物(主要是胆固醇)分数。最初,EVOO有益的特性是由其高油酸(OA)中的内容。据称OA消费促进心血管疾病预防和影响体内平衡和代谢基因的表达,保护组织免受氧化和炎症过程与老化,退化性疾病和癌症(
5 - - - - - -
9 ]。在先前的研究对大鼠C6胶质瘤细胞(
5 ),它已经表明,在各种脂肪酸,OA是最有效的downregulator脂质合成。
在过去的十年中,大量的科学发现凸显了许多EVOO有益作用不仅可以为其主要脂肪酸的不饱和性质OA也EVOO小化合物的生物活性,可以通过直接和间接两方面的机制作用于细胞,后者调节基因表达(
6 ,
8 - - - - - -
10 ]。EVOO次要成分中,酚类化合物hydroxytyrosol (2 (3 4-dihydroxyphenyl)乙醇HTyr)被认为是最有效的抗氧化剂之一。HTyr消费有一定的好处,和负责的机制,这些影响主要归因于其清除活性氧的能力,提高内源性抗氧化系统(
11 ]。在之前的研究主要进行大鼠肝细胞(
12 ,
13 ),我们发现HTyr(单独或作为粗提物的一部分)突出能力的调节脂质代谢相关的酶活性。
白色脂肪组织后,大脑是身体的脂质含量最高的器官。脂类的生物合成和沉积发挥关键作用在维持大脑结构和功能。改变脂质代谢的原因或与许多神经系统疾病(
14 ,
15 ]。
衰减的年龄和疾病有关的认知下降橄榄油或较小的化合物已被观察到细胞,动物,和人类模型(
16 - - - - - -
18 ]。在这些研究中,减少氧化损伤和抗氧化防御系统的调制。然而,除了抗氧化和抗炎活动,其他机制可能构成EVOO小化合物对大脑发展的有利影响和体内平衡
3 ,
16 - - - - - -
18 ]。
考虑到需要化疗干预对神经系统疾病(
19 )和脂肪酸和抗氧化剂的假定的角色在这个领域(
7 ,
15 ,
20. ),还需要进一步的研究来了解EVOO化合物对神经退行性过程的影响。C6神经胶质瘤细胞呈现大量的astrocyte-expressing酶活动(
21 ,
22 ),表现出一种普遍astrocyte-like表型在serum-rich培养基培养(
23 ]。因此,他们被认为是一个有用的细胞模型来研究脑功能障碍(
20. ,
24 ]。
据我们所知,这是第一个研究EVOO选民对脂质代谢的影响在胶质细胞被调查。详细,本研究关注的影响cosupplementation OA和HTyr胆固醇和脂肪酸合成的神经胶质细胞。
2。材料和方法
2.1。材料
大鼠C6胶质瘤细胞从美国文化集合类型。杜尔贝科的修改鹰high-glucose介质(DMEM),胎牛血清(的边后卫)、青霉素、链霉素、磷酸缓冲溶液(PBS)和3 - 4,5-dimethylthiazol-2-yl 2, 5-diphenyltetrazolium溴化(MTT)获得Gibco-Invitrogen有限公司(英国佩斯利);(1 -14 C)醋酸是来自通用电气医疗集团(小都,英国);(1 -14 (3 - C]乙酰辅酶a14 3-hydroxy-3-methylglutaryl-CoA ([3 - C)14 C]β)获得PerkinElmer(波士顿)。主要抗体乙酰辅酶a羧化酶(ACC),脂肪酸合酶(FAS)
α 得到了微管蛋白从细胞信号技术(波士顿)。抗体对3-hydroxy-3-methylglutaryl-CoA还原酶(HMGCR)以及辣根peroxidase-conjugated免疫球蛋白是来自圣克鲁斯生物技术(达拉斯,TX)。从Sigma-Aldrich获得,所有其他试剂均为分析纯。
2.2。细胞培养
C6细胞在DMEM补充与青霉素、链霉素的边后卫10%和1%,在37°C在湿润的气氛中5%的有限公司2 。除非另有说明在文本,C6细胞被播种在6-well板块(纽约康宁公司康宁)5×10的密度5 细胞每10% FBS-supplemented培养基培养。电镀后24小时,中被改变,进一步的24小时后,OA钠盐和HTyr添加4 h,异常或coincubation DMEM培养基,获得25
μ 米决赛浓度。OA原液在DMEM和HTyr股票的解决方案是10毫米100毫米溶解在二甲亚砜(DMSO)。对于每一个决心,未经处理的控制细胞也被考虑。
2.3。细胞生存能力分析
MTT测定细胞增殖和生存能力评估。到这个目的,C6细胞培养密度的5×103 细胞/在96孔板(纽约康宁公司康宁),24小时之后,serum-rich介质被刷新。进一步的24小时后,细胞被孵化与OA和/或HTyr 4 h,为每个示例使用三个浓度:25
μ 50米,
μ 米,100
μ OA和/或HTyr M。然后,单层细胞孵化了肝癌和3 h和1毫克/毫升。活细胞的线粒体将黄色的四唑化合物的紫色甲瓒导数。甲瓒晶体形成的细胞溶解在100年
μ L DMSO,吸光度测量在570 nm使用Multiskan FC ELISA读者(热费希尔科学、沃尔瑟姆,MA)。计算能力的相对吸光度比例控制细胞。
2.4。脂肪酸和胆固醇的合成
乙酰辅酶a是脂肪酸和胆固醇合成的前体。脂肪生成的活动被纳入[1 -监控14 C]醋酸(16毫米,0.96 mCi /摩尔)中总脂肪酸和胆固醇基本上Gnoni et al。
25 ]。细胞培养4 h和25
μ M OA和/或25
μ M HTyr。贴上醋酸添加1 h之前结束实验。
终止脂肪生成的分析,媒介是吸气和细胞被洗了三次冰冷的PBS除去未反应的醋酸,和反应是停在1.5毫升0.5 N氢氧化钠。
这些细胞被刮掉,转移到试管中,并与ethanolic KOH皂化。固醇类和脂肪酸提取和计算放射性报道(
25 ]。
2.5。色谱分析放射性标记的脂质分数
醋酸放射性标记并入磷脂和中性脂质进行了分析。潜伏期结束时,这些细胞被洗冰冷的PBS和氯化钾的反应是阻塞2 mL: CH3 哦(1:2,
v /
v )。总脂质提取据布莱和代尔(
26 ),通过薄层色谱法来解决在硅胶板,使用CHCl开发系统3 :CH3 哦:28% NH4 哦(65:25:4),法国:乙醚,乙酸(80:20:1)磷脂和中性脂质分析,分别。脂质斑点可视化与碘蒸气和刮为放射性测量计数瓶(
5 ]。
2.6。色谱分析放射性标记的脂肪酸
高效液相色谱的分析提取脂肪酸进行报道(
5 ]。20
μ L(样本注入贝克曼库尔特系统黄金溶剂可编程模块125和家具使用C18 ODS柱(4.6×250毫米)和二极管阵列检测器168(贝克曼库尔特、米兰、)。两个移动阶段用于洗脱:溶剂,由乙腈:水(4:1)和跑了45分钟,溶剂B,由乙腈,跑了15分钟。流量是2毫升/分钟和检测在242海里。筛选了分数进行辐射测量。
2.7。测定脂肪生成的酶的活动
ACC活动决心放射性标记乙酰辅酶a的合并为脂肪酸的分析加上FAS活动。这种方法绕过了干扰与经典的重碳酸盐分析(
27 ]。ACC和FAS活动确定digitonin-permeabilized C6细胞。细胞透化作用,通过使用一个包含400测定混合
μ 洋地黄皂苷(克/毫升
5 ),代表了一个适当的工具直接原位(即研究酶活性。或多或少,在一个自然环境)。
FAS活动是通过测量[1的公司——化验14 C]乙酰辅酶a为ACC脂肪酸实际上如上所述活动,除了0.2毫米malonyl-CoA包括ATP, butyryl-CoA和FAS digitonin-containing测定混合物中省略了
28 ]。37°C的测定进行了10分钟。
脂肪生成的化验都停在增加100
μ L 10 M氢氧化钠。样本通过添加5毫升的CH皂化3 哦和沸腾管上限45 - 60分钟。酸化后200
μ L 12 M盐酸,放射性的脂肪酸提取和统计(
5 ]。
ACC的活动和FAS表达nanomoles [1 -14 C]乙酰辅酶a纳入脂肪酸每分钟每毫克的蛋白质。
2.8。活动分析3-Hydroxy-3-Methylglutaryl-CoA还原酶(HMGCR)
HMGCR是速率控制酶生物合成的胆固醇。HMGCR活动试验进行了本质上如[
5 ]。短暂,C6细胞被播种密度的2×106 细胞每100毫米直径的培养皿。48小时后,25岁
μ 米OA和HTyr添加异常或coincubation媒介4 h。然后,细胞中被丢弃,被刮到一个缓冲区包含50 mM Tris-HCl氯化钠(pH值7.4)和150毫米。离心(900×g, 3分钟后,室温),颗粒在液态氮冷冻,保存在−80°C到使用。
细胞提取从球准备解冻,resuspended,随后用于HMGCR活动分析(
5 ]。反应开始的[3 -14 C]β- (75
μ 1.8 M, Ci /摩尔)。在37°C, 120分钟后的反应是停止增加20倍
μ L 7 M盐酸。转换后mevalonolactone发生额外的60分钟孵化37°C和放射性产品被薄层色谱分离,使用甲苯:丙酮(1:1)作为流动相。放射性斑点收集和统计。作为内部标准,3 使用H] mevalonolactone。
2.9。隔离从C6细胞的RNA和实时qPCR分析
从C6细胞总RNA分离使用SV总RNA隔离系统工具包(Promega),遵循制造商的指示。逆转录酶反应(20
μ 使用5 l)进行
μ 克总RNA, 100 ng随机五个一,200单位的上标三世核糖核酸酶H-Reverse转录酶(生活Technologies-Thermo费舍尔科学,沃尔瑟姆,MA) (
29日 ]。
基因表达定量分析使用SYBR®选择主混合排名(生活Technologies-Thermo费舍尔科学,沃尔瑟姆,MA)和18 s rRNA正常化。引物用于定量实时PCR分析如下(5
′
到3
′
):rFASNfor CTCTGGTGGTGTCTACATTTC;rFASNrev GAGCTCTTTCTGCAGGATAG;rACCfor CTTGGAGCAGAGAACCTTCG;rACCrev;CCTGGATGGTTCTTTGTCCC;rHMGCRfor CTCACAGGATGAAGTAAGGG;rHMGCRrev CTGAGCTGCCAAATTGGACG [
30. ]
2.10。免疫印迹分析
6-well培养皿中的细胞治疗OA和/或上述HTyr和细胞溶解(如前所述)(
12 ]。提取煮5分钟,样品含有等量的总蛋白(25
μ g)加载到10% SDS-polyacrylamide凝胶。蛋白质电泳后,被转移到硝酸纤维素(
13 ]。膜检测ACC、FAS和HMGCR,具体主要抗体孵育1.5 h在室温下然后用适当的辣根1 h peroxidase-conjugated免疫球蛋白(稀释1:5000)。信号被增强化学发光检测使用Amersham ECL +工具包(通用电气医疗集团、米兰、意大利)。Beta-actin检测用于信号归一化。
4所示。结果
4.1。细胞生存能力
MTT试验表明,C6细胞孵化与OA或HTyr (25
μ 50米,
μ 米,100
μ M 4 h),有相同的控制细胞的生存能力在每个测试浓度(图
1 )。此外,coincubation OA和HTyr没有施加任何细胞毒性效应。这些发现证实了形态学观察、蛋白质分析和台盼蓝排斥(数据没有显示)。因此,所有进一步的实验进行细胞治疗25
μ M OA, 25
μ M HTyr,或它们的组合和孵化4 h为了排除假定的非特异性毒性作用,同时使用最低有效浓度。
图1
油酸和/或hydroxytyrosol对C6细胞的可行性。为4 h和25 C6细胞被孵化
μ 50米,
μ 米,100
μ M OA,在serum-rich介质HTyr,或它们的组合。细胞生存能力估计MTT试验。值,表示为%的控制,意味着±s.d五个实验。在同一组,样品轴承不同的字母显著差异(
P
<
0.05
)。控制:未经处理的细胞;办公自动化:油酸;HTyr: hydroxytyrosol。
4.2。OA的影响,HTyr及其组合对胆固醇和脂肪酸合成
乙酸在细胞转化为乙酰辅酶a,它代表了一种常见的脂肪酸和胆固醇合成的前体。因此,这两种代谢途径同时使用贴上醋酸作为前体紧随其后。
酒吧图在图
2 显示显著减少[1 -14 C)醋酸纳入总胆固醇(图
2(一个) )和脂肪酸(图
2 (b) )。特别是,当C6细胞被孵化4 h与OA或HTyr分别减少24%和18% [1 -14 C)醋酸纳入观察胆固醇。这种抑制作用更明显(−36%未经处理的细胞)如果OA和HTyr增加细胞结合。
图2
调制的胆固醇和脂肪酸合成油酸和/或hydroxytyrosol。最初的48 h后镀、C6神经胶质瘤细胞,生长在serum-rich媒介,是4 h和25孵化
μ M OA和/或25
μ M HTyr。在最后一小时的潜伏期,贴上醋酸添加及其并入胆固醇(a)和脂肪酸(b)之后。数据,nmol [1 -14 醋酸C] / h /毫克蛋白,表示为%的控制,意味着±s.d六个独立的实验。在每个实验中,决定进行了一式三份。控制细胞的胆固醇和脂肪酸合成率分别为1.43±0.07,8.67±0.49 nmol [1 -14 C)醋酸公司/ h /毫克蛋白,分别。样品轴承不同的字母显著差异(
P
<
0.05
)。没有:没有除了细胞;办公自动化:油酸;HTyr: hydroxytyrosol。
(一)
(b)
关于cholesterologenesis,脂肪酸合成被EVOO化合物在调查中更大的影响。孵化与OA C6细胞的异常,醋酸或HTyr导致减少放射性标记并入脂肪酸约56%和23%,分别比,以控制细胞。类似地,胆固醇合成、脂肪酸合成抑制更为明显(−68%未经处理的细胞)经过4 h的OA和HTyr coincubation C6细胞。
4.3。醋酸EVOO组件对放射性标记的影响纳入磷脂和中性脂质
自从新合成脂肪酸主要是纳入复杂的脂质,OA的影响以及HTyr除了C6神经胶质瘤细胞[1 -14 C)醋酸并入极地和中性脂质测试(表
1 )。一般减少标记前体纳入所有的磷脂,特别是为磷脂酰胆碱,最丰富的磷脂在C6神经胶质瘤细胞,观察主要细胞孵化时4 h OA和HTyr组合。在中性脂质,unesterified脂肪酸,胆固醇和胆固醇酯的分数显示显著减少放射性公司由于EVOO复合添加。有趣的是,只有轻微的减少将贴上醋酸为甘油三脂(TG)添加OA和HTyr后检测。
表1
OA和HTyr及其组合对[1 -14 C)醋酸纳入各种C6细胞中脂质分数
添加效果器
没有一个
办公自动化
HTyr
OA + HTyr
极性脂质
CL +体育
2151±151一个
1377±85b
1742±121c
1119±75d
个人电脑
15908±875一个
5596±308b
12781±703c
3487±192d
SM
741±67一个
463±37b
640±37一个
270±19c
PS +π
3781±246一个
1439±101b
2533±165c
962±65d
中性脂质
毫克
289±20一个
231±11b, c
252±11b
214±7c
DG
711±136一个
587±24一个
623±27一个
562±35一个
胆固醇
2155±194一个
1724±155b
1896±170a、b
1509±136b
Unesterified脂肪酸
239±14一个
200±12a、b
187±11b
123±8b
TG
1123±73一个
1048±68a、b
999±65a、b
921±60b
CE
896±63一个
659±46b, c
725±47a、b
587±23c
与25 C6细胞被孵化
μ M油酸(OA)和/或25
μ M hydroxytyrosol (HTyr) 4 h,贴上醋酸添加1 h结束前孵化。总脂质提取。磷脂和中性脂质是通过TLC来解决,相关的放射性不同脂质分数统计。CL:心磷脂;体育:磷脂酰乙醇胺;PC:磷脂酰胆碱;SM:鞘磷脂;PS:磷脂酰丝氨酸;PI:磷脂酰肌醇;MG:单甘酯; DG: diglycerides; TG: triglycerides; CE: cholesterol esters. Values are expressed as cpm/mg protein ± SD,
n
=
5
。在同一组,样品轴承不同的字母显著差异(
P
<
0.05
)。
4.4。分析新合成放射性标记的脂肪酸
为了探讨OA的效果和HTyr增加C6细胞的单个脂肪酸合成醋酸,高效液相色谱法分析总脂肪酸的提取进行了。
图
3 与以前的研究结果表明,在协议(
5 ),在控制细胞中,醋酸标签合并成单个脂肪酸是按照以下顺序:棕榈酸(0)>硬脂酸(C18:0) >油酸(C18:1)。只有少量的放射性物质被纳入其他脂肪酸(数据没有显示)。减少约50%的放射性标记并入软脂酸、硬脂,并观察油酸OA的细胞,同时减少近30%是证明在HTyr治疗。[1 -的抑制作用14 C)醋酸并入脂肪酸是更加明显(大约70%)当哦和HTyr都同时添加到媒介文化。
图3
油酸的影响,在[1 - hydroxytyrosol,或它们的组合14 醋酸C]合并成单个脂肪酸。25的影响
μ M OA, 25
μ M HTyr,他们的组合将贴上醋酸为不同的脂肪酸是化验。4 h孵化后,放射性标记neosynthesized脂肪酸提取,高效液相色谱分离。筛选了分数,对应于不同的脂肪酸,收集放射性测量。数据表示为cpm /毫克蛋白,代表美国南达科他州意味着±六个实验。在同一组,样品轴承不同的字母显著差异(
P
<
0.05
)。办公自动化:油酸;HTyr: hydroxytyrosol。
4.5。活动的调制ACC、FAS和HMGCR OA, HTyr,他们的组合
棕榈酸和(在较小程度上的硬脂酸是主要的脂肪酸的从头合成的最终产品。
为了确定影响脂类生物合成途径的酶步骤OA, HTyr,及其组合,实验测定的活动的关键酶ACC和FAS新创脂肪酸合成和HMGCR胆固醇合成。所有酶的活动被原位测量化验使用digitonin-permeabilized C6细胞。
4 h与25 C6细胞的培养
μ M OA或HTyr引起ACC活动减少45%和19%,分别为(图
4 )。进一步衰减(−56%未经处理的细胞)是测量这些化合物coincubated时。
图4
油酸和/或hydroxytyrosol ACC的调制,FAS, HMGCR活动。4 h孵化后25
μ M的OA、HTyr或OA + HTyr,表示酶活性化验在digitonin-permeabilized C6细胞。值,表示成比例的控制,意味着±SD的五个独立的实验。控制特定活动是ACC, 0.178±0.011 [1 -14 C]乙酰辅酶a公司/分钟/毫克蛋白;FAS, 0.051±0.003 nmol [1 -14 C]乙酰辅酶a公司/分钟/毫克蛋白;HMGCR, 33.6±1.9 pmol [3 -14 C]β-公司/分钟/毫克的蛋白质。在同一组,样品轴承不同的字母显著差异(
P
<
0.05
)。办公自动化:油酸;HTyr: hydroxytyrosol。
OA或HTyr HMGCR的活性降低29%和16%,分别。在coincubation,抑制更为明显。事实上,HMGCR活动达到61%,控制细胞中观察到25的存在
μ M OA和25
μ M HTyr。
值得注意的是,FAS活动不影响孵化条件。
HMGCR的ACC的活动减少,是按照图的结果
2 ,以减少总合成脂肪酸(图
2(一个) (图)和胆固醇
2 (b) )从[1 -14 C)醋酸。
4.6。ACC的监管、FAS和OA HMGCR表达式,HTyr和OA + HTyr
接下来,OA施加的分子机制负责调制或HTyr above-reported酶活性。这一目标,大量的信使rna编码ACC, FAS,和HMGCR被实时qPCR分析量化,和相应的编码蛋白是由西方墨点法。
在细胞治疗,减少ACC mRNA观察丰富(图
5(一个) )。OA潜伏期后,ACC对mRNA水平下降了约42%,以控制细胞;HTyr异常添加到细胞培养介质施加轻微的抑制作用。在所有的实验条件测试,没有发现显著变化丰富的FAS mRNA(图
5(一个) )。4 h孵化后25
μ 25 M OA单独或结合
μ M HTyr HMGCR mRNA的数量降低了18%和22%,分别为(图
5(一个) )。结果对ACC、FAS和HMGCR mRNA富足,也证实了各自的蛋白质免疫印迹分析内容(图
5 (b) )。
图5
油酸、hydroxytyrosol效果,或其组合在ACC, FAS和HMGCR信使rna和蛋白质丰富内容在C6神经胶质瘤细胞。与25 C6细胞被孵化
μ M的OA、HTyr或OA的4 h + HTyr serum-rich媒介。(a)丰富的ACC、FAS HMGCR信使rna由RT-qPCR决定和规范化对18 s rRNA,用作参考。归一化值用直方图表示的比例控制。值意味着±s.d一式三份样本每个四个独立的实验。(b) C6细胞细胞溶解和蛋白质含量是孤立的。ACC、FAS和HMGCR然后评估免疫印迹和量化微。蛋白质含量百分数表示的控制,意味着±SD三个独立的实验。在同一组,样品轴承不同的字母显著差异(
P
<
0.05
)。办公自动化:油酸;HTyr: hydroxytyrosol。
(一)
(b)
5。讨论
地中海饮食被认为健康的饮食方案,减少相关的风险等病理代谢紊乱和心血管疾病
1 ,
2 ,
6 ,
31日 ,
32 ]。EVOO是地中海饮食的重要组成部分,它的特点是具有生物活性的植物营养素,具有抗氧化和抗炎作用,单不饱和脂肪酸(OA)脂肪的来源。
研究的研究小组建立了膳食脂肪酸的变化或摄入的酚类化合物能够影响细胞代谢和监管过程神经元和神经胶质细胞
3 ,
5 ,
17 ,
24 ),支持越来越多的迹象显示,EVOO活性成分可以拥有巨大的潜力来减少神经退行性疾病的发病率(
3 ,
18 ,
33 ]。必须强调,大多数这些研究主要关注的抗氧化和抗炎活动脂肪酸(
7 )和酚类化合物(
20. ),不考虑其可能的代谢的直接行动,如脂类的生物合成。
脂质神经元膜的基本组件,对于大脑功能至关重要。胆固醇和脂肪酸尤其存在于突触膜和膜流动性和扮演着重要角色的形成专业microdomains,脂质筏、突触传递的关键(
34 ]。
脑脂质可以来自血液和/或内生合成。脂肪酸可以穿过血脑屏障,一个复杂的过程,涉及扩散和protein-mediated运输主要由脂肪酸发生运输蛋白1和含有(FATP-1和FATP-4)在人类和老鼠
34 ]。脂质合成在神经元而不是神经胶质细胞是低效的。
在体外 研究表明,星形胶质细胞,最丰富的神经胶质细胞,合成和释放脂质复合体的载脂蛋白E - (ApoE)含有脂蛋白(
35 ]。因此,神经功能是负面影响摄动脂质代谢已观察到在一些神经系统疾病,如患有尼曼氏病(
36 ),阿尔茨海默病(
37 ],亨廷顿氏舞蹈症[
38 ),帕金森病(
39 ),和肌萎缩性脊髓侧索硬化症
40 ]。
尽管EVOO生物活性化合物的重要作用在大脑功能和新陈代谢,对他们的行动在脂肪生成胶质细胞(
5 ]。
这项工作主要是表明,脂肪酸和胆固醇合成,而活跃在培养胶质瘤C6细胞[1 -14 C)乙酸作为共同的前体代谢途径,从而增加了进一步支持先前的发现(
5 ]。值得注意的是,在人类恶性胶质细胞,与正常的同行相比,一个非常活跃的新创脂肪酸和胆固醇合成已报告(
41 ]。
目前的研究代表了直接和快速的第一份报告EVOO主要化合物的效果(OA和HTyr)在老鼠的神经胶质瘤细胞脂质合成。我们在C6细胞显示,OA和HTyr引起放射性标记的快速(4小时内)抑制醋酸并入胆固醇和脂肪酸分数。快速EVOO组件对这两种途径的影响被描述在不同的细胞培养(
12 ,
13 ]。单一不饱和脂肪酸在OA,代表最丰富的脂肪酸在EVOO(大约70%),多不饱和脂肪酸(如亚油酸)和饱和脂肪酸(主要是棕榈酸)明显出现在EVOO的脂肪酸分数。然而,娜塔莉等人报道,OA是最有效的减少脂质合成在C6细胞(
5 ]。
控制细胞相比,放射性标记前体并入胆固醇在细胞孵化25下降了约30%
μ M OA和25
μ M HTyr(图
2(一个) )。这个结果可以解释,至少在某种程度上,通过减少HMGCR活动(图
4 )和胆固醇合成的调节酶,这是合理的相关HMGCR表达的变化。的确,HMGCR在mRNA和蛋白水平的表达明显降低在C6细胞治疗OA和HTyr。
然而,减少cholesterologenesis EVOO活性化合物通常是不那么明显,与脂肪酸合成相比,特别是在OA和HTyr coincubation。
孵化C6细胞与OA HTyr异常或结合减少[1 -引起的14 C)醋酸并入脂肪酸和随后的酯化成复杂的脂质。最强的抑制贴上醋酸并入磷脂分数,主要为磷脂酰胆碱,观察OA和HTyr coincubation(表
1 )。
与磷脂、TG合成在C6细胞似乎不受EVOO化合物。相反的趋势据报道发生在鼠肝细胞,EVOO组件,几乎没有影响磷脂合成,大大减少醋酸并入TG (
12 ,
13 ]。这些发现是在协议与肝细胞的作用在TG合成
42 )和假设饮食酚类化合物可能有保护作用对肝脂肪变性(
12 ,
13 ]。磷脂和胆固醇是生物膜的重要组成部分。因此,显著减少我们观察到本研究的磷脂和胆固醇合成所OA和HTyr让我们假设EVOO组件可能在C6细胞调节转向膜生物起源细胞中性脂类的积累。实际上,这个假说是由以前的研究证实,表明脂肪酸体内添加到C6细胞可能代表特定的控制gliomatous增长(
5 ,
43 ,
44 ]。
Coincubation OA和HTyr大大减少[1 -的合并14 C)乙酸成单个脂肪酸,尤其是棕榈酸(图
3 ),主要脂肪酸的从头合成的最终产品。这种代谢途径由两个酶催化系统工作顺序:ACC和FAS。ACC的活动,提交的第一步在脂肪酸的生物合成,降低在C6细胞治疗OA HTyr一起。然后,ACC活动下降在OA - / HTyr-treated C6细胞可以解释,至少在一定程度上减少[1 -14 C)醋酸纳入整个脂肪酸部分观察图
2 。这个减少的分子机制进一步深化,我们的研究结果清楚地表明,coincubation OA和HTyr ACC mRNA丰富或蛋白质水平降低。相反,在我们的实验条件,4 h(治疗OA和/或HTyr孵化活动几乎没有影响FAS和FAS信使rna和蛋白质丰度水平。对FAS的明显不敏感4 h OA和HTyr孵化,值得注意的是,虽然ACC是受短期和长期机制,只有后者参与FAS调制(
12 ,
45 ]。
一个伟大的证据表明HTyr作为一种强有力的抗氧化剂,以及减少活性氧的能力(ROS)两种
在体外 和
在活的有机体内 实验记录(已审核,请参阅[
46 ])。最近的作品强调,ROS促进固醇调节元件结合蛋白的表达(如)
47 ,
48 )和关键酶的转录因子参与upregulation脂肪生成和cholesterologenesis
31日 ,
49 ,
50 ]。飞,治疗与抗氧化剂减少活性氧,抑制脂滴堆积,和延迟神经退化
48 ]。目前的研究表明,除了抗氧化作用报道,HTyr补充C6细胞决定提前和直接对脂肪酸合成和cholesterologenesis减少的影响。这种效应可以至少部分的差别归因于一种分子机制,涉及到对这些ACC和HMGCR的表达。降低比较明显当OA HTyr一起添加到细胞,表明在大多数情况下,一个添加剂这些EVOO组件对脂质代谢的影响。也因此,这方面应该考虑在确定的有益作用EVOO组件,OA和HTyr脂质代谢的改变发生时大脑功能障碍。
一个重要的问题担忧EVOO酚类化合物的生物利用度。HTyr是人类吸收剂量依赖性
51 ,
52 ]。等离子体苯酚浓度数据,可以实现在人类食用橄榄油是贫穷和有争议的
52 ]。这可能是由于很多因素:(i)中酚类的变量水平EVOO(50 - 800毫克/公斤)
53 ),(2)橄榄油的饮食摄入量水平,和(3)等离子体的方法和时间选择苯酚量化(
53 ]。HTyr大部分存在于血浆和尿液中共轭形式,主要glucuroconjugates,表明广泛的初步的肠/肝代谢摄入HTyr [
54 ]。然而,HTyr 15的血浆浓度
μ M已经在人类第一次测量4 h后摄入40毫升橄榄油含有大量的酚类(366毫克/公斤)
55 ]。此外,它建立了HTyr能够穿过血脑屏障,虽然它提供了一个低大脑吸收(
3 ]。考虑到上面,大脑EVOO酚生物利用度的问题仍然是一个有争议的问题和生理相关性
在体外 发现需要测试在适当的动物模型和人类。然而,即使HTyr浓度用于本研究(25
μ 米)可以被视为一个药理剂量,目前的研究表明早期和直接downregulatory HTyr对脂肪酸和胆固醇合成的影响。