1。介绍
PLK1 (Polo-like激酶1)是Polo-like激酶家族中的一员
1),在细胞周期调控中起着重要的作用[
2]
。PLK1在调节细胞周期中所起的作用是不同的,包括控制有丝分裂条目,协调中心体和细胞周期调节染色体隔离,调节胞质分裂和减数分裂
2]。因此,PLK1的故障会导致细胞周期畸变,通常引起细胞增殖。事实上,大量的研究表明,PLK1在各种癌症中,及其超表达与不利的癌症患者的预后相关(
3]。因此,PLK1的抑制被认为是一个潜在的癌症治疗策略(
4]。许多PLK1抑制剂已经在实验室或临床研究探索BI2536等volasertib, GSK461364, rigosertib, poloxin, poloxin-2, RO3280 [
3]。然而,这些探索性代理是迄今为止的诊所中使用(
5]。
另一方面,最近癌症免疫疗法是展示惊人的成功治疗各种癌症
6,
7]。特别是免疫检查点的封锁CTLA4(细胞毒性T-lymphocyte-associated蛋白4),PD1(程序性细胞死亡蛋白1),和PD-L1(1细胞程序性死亡配体)在各种癌症,包括黑色素瘤临床成功,肺癌,肾细胞癌、膀胱癌、头部和颈部癌症,何杰金氏淋巴瘤,癌症与MSI(微卫星不稳定性)或DNA错配修复缺陷
6]。另一个著名的癌症免疫治疗策略是嵌合抗原受体(汽车)T细胞疗法已成功用于治疗难治性白血病和淋巴瘤(
7]。尽管有这些成绩斐然的癌症免疫治疗,大部分患者有限或没有回应这样的疗法(
8]。预测患者对癌症免疫疗法,一些生物标记已经探索肿瘤突变等负担(三甲)
9,
10],neoantigens [
11],MSI [
12],PD-L1表达式(
13]。此外,为了提高癌症免疫疗法的疗效,免疫治疗与化疗的结合,已经探索过放射治疗或靶向治疗(
14]。例如,最近的一项研究表明,细胞周期蛋白依赖性激酶4和6的组合(CDK4/6)与免疫治疗能促进抗肿瘤免疫抑制剂(
15]。
在这项研究中,探索潜在的PLK1抑制剂结合免疫疗法在治疗癌症,我们分析了协会
PLK1表达与免疫细胞浸润和免疫活动在33个不同癌症类型基于癌症基因组图谱(TCGA)数据(https://cancergenome.nih.gov/)。此外,我们分析了关联PLK1抑制剂的药物敏感性与免疫细胞浸润和免疫活动在癌症细胞系(进一步)基于药物基因组学的灵敏度癌症(GDSC)项目数据(http://www.cancerrxgene.org/)。此外,我们探讨了潜在的重大关系背后机制
PLK1表达和肿瘤免疫。
2。方法
2.1。数据集
TCGA基因表达谱数据(RNA-Seq三级)和基因体细胞突变(三级)从基因组数据共享数据下载门户(
https://portal.gdc.cancer.gov/)。33 TCGA癌症类型分析如表所示
1。GDSC基因表达谱的数据(Affymetrix人类基因组U219数组)和药物敏感性(IC50)从威康基金会桑格研究所的网站下载:
https://www.cancerrxgene.org/downloads。我们分析了浓缩的水平6在癌症免疫细胞类型和功能包括B细胞、自然杀伤(NK)细胞,肿瘤浸润淋巴细胞(尖),人类白细胞抗原(HLA)调节性T (Treg)细胞,cancer-testis抗原(cta)基于基因表达谱的签名。这些基因签名补充表所示
S1。
33 TCGA癌症类型分析。
|
癌症类型 |
全名 |
#癌症样本 |
| ACC |
肾上腺皮质癌 |
79年 |
|
| BLCA |
膀胱移行细胞癌 |
408年 |
|
| BRCA |
乳腺浸润性癌 |
1100年 |
|
| 塞斯克 |
宫颈鳞状细胞癌和子宫adeno-carcinoma |
306年 |
|
| 胆固醇 |
胆管癌 |
36 |
|
| COAD |
结肠腺癌 |
287年 |
|
| DLBC |
淋巴肿瘤弥漫型大b细胞淋巴瘤 |
48 |
|
| 光电子能谱 |
食管癌癌 |
185年 |
|
| “绿带运动” |
多形性成胶质细胞瘤 |
166年 |
|
| HNSC |
头颈部鳞状细胞癌 |
522年 |
|
| KICH |
肾脏chromophobe |
66年 |
|
| KIRC |
肾脏肾透明细胞癌 |
534年 |
|
| KIRP |
肾脏肾乳头状细胞癌 |
291年 |
|
| LAML |
急性髓系白血病 |
173年 |
|
| LGG |
大脑低档次的神经胶质瘤 |
530年 |
|
| LIHC |
肝脏肝细胞癌 |
373年 |
|
| LUAD |
肺腺癌 |
517年 |
|
| LUSC |
肺鳞状细胞癌 |
501年 |
|
| 内消旋 |
间皮瘤 |
87年 |
|
| 机汇 |
卵巢浆液性囊腺癌 |
307年 |
|
| PAAD |
胰腺adeno-carcinoma |
179年 |
|
| PCPG |
嗜铬细胞瘤和副神经节瘤 |
184年 |
|
| 马 |
前列腺腺癌 |
498年 |
|
| 读 |
直肠腺癌 |
95年 |
|
| 不仅 |
肉瘤 |
263年 |
|
| SKCM |
皮肤皮肤黑色素瘤 |
472年 |
|
| STAD |
胃腺癌 |
415年 |
|
| TGCT |
睾丸生殖细胞肿瘤 |
156年 |
|
| THCA |
甲状腺癌 |
509年 |
|
| THYM |
胸腺瘤 |
120年 |
|
| UCEC |
子宫语料库子宫内膜癌 |
370年 |
|
| UCS |
子宫癌肉瘤 |
57 |
|
| UVM |
葡萄膜黑色素瘤 |
80年 |
2.2。评估活动的癌症的免疫细胞类型或函数
我们量化的活动(或浓缩水平)免疫细胞类型或函数使用single-sample癌症样本基因片段的富集分析(ssGSEA)得分
16,
17]。基因簇是免疫细胞类型的基因签名的设置和功能。ssGSEA得分越高,更高的免疫细胞的活动类型或函数。此外,我们评估了癌症的免疫渗透水平的估计算法(
18]。估计输出免疫分数量化癌症免疫渗透水平基于基因表达谱数据。
2.3。细胞系,细胞培养
人类细胞从肺鳞状细胞癌(SK-MES-1)多形性成胶质细胞瘤(U251),子宫语料库子宫内膜癌(HEC-1B)和皮肤皮肤黑色素瘤(SK-MEL-2)从美国文化类型集合(写明ATCC)。SK-MES-1 U251细胞在DMEM培养(美国GIBCO)补充10%胎牛血清(美国GIBCO的边后卫)。HEC-1B细胞孵化在罗斯威尔公园纪念研究所- 1640(美国GIBCO rpmi - 1640)补充10%的边后卫。SK-MEL-2培养在MEM(美国GIBCO)补充10%的边后卫。所有的细胞培养在湿润孵化器在37°C和5%的股份2的气氛。在对数生长期细胞收获所有实验进行研究。
2.4。逆转录定量PCR (qPCR)分析
BI2536是从Selleck购买的。处理后细胞收获BI2536 (1
μ米,48 h)。总RNA分离试剂盒(美国表达载体),相对地转录成cDNA RevertAid第一链cDNA合成装备(美国热费希尔)。引物序列用于qPCR补充表中给出了
S2。引物在nuclease-free稀释水的混合实时PCR (rt - PCR)主(SYBR绿色)(TOYOBO有限公司、日本)。相对拷贝数是由计算感兴趣的基因相对于叠化差异
β肌动蛋白。qPCR是ABI 7500快,应用生物系统公司StepOnePlus rt - pcr的机器。
2.5。流式细胞术
细胞被胰蛋白酶化后治疗48小时,洗了PBS。细胞被resuspended标签缓冲区(PBS NaN3补充的边后卫为10%和1%)的最终浓度5×105 /毫升,沾W6/32单克隆抗体(1:20,eBIOSCIENCE: 12-9983-42) 37°C没有灯光30分钟。细胞被洗的PBS流仪分析使用LSRII 4-laser流式细胞分析仪(美国,正欲)。计算出的结果进行了分析和MFI FlowJo。
2.6。统计分析
我们计算之间的相关性
PLK1表达水平和另一个基因的表达水平使用皮尔逊的方法,和之间的相关性
PLK1表达水平和其他变量包括浓缩水平(ssGSEA分数)的基因簇,肿瘤突变,和药物敏感性(IC50)使用枪兵的方法。的比较
TP53较高的癌症之间的变异率
PLK1表达水平(三)和较低的癌症
PLK1表达水平低(第三),我们使用了确切概率法。我们调整了多个测试使用错误发现率(罗斯福)计算Benjamini和业务(BH)方法(
19]。罗斯福< 0.1的阈值是用来识别统计学意义。所有的计算和统计分析实现了R (https://www.r-project.org/)。实验数据分析了棱镜5.0软件(GraphPad)和被当作平均数±标准差。的
t被认为具有统计显著性检验P < 0.05。
3所示。结果
3.1。<斜体> PLK1 < /斜体>表达可能与抑郁相关免疫细胞浸润在癌症和免疫活动
我们发现
PLK1表达水平与免疫相关负面分数10癌症(LUSC、TGCT STAD,“绿带运动”,光电子能谱,PAAD, LUAD, UCEC, ACC,和DLBC)虽然是积极与免疫相关的得分在4癌症(KIRC, THCA、THYM LGG)(斯皮尔曼相关,富兰克林·德兰诺·罗斯福< 0.1)(图
1(一))在33癌症类型分析。此外,高
PLK1表达水平与更丰富的B细胞渗透在13个癌症(STAD LUSC TGCT, ACC,光电子能谱,LIHC, HNSC, LGG,塞斯克,BRCA, LUAD, KICH,和PAAD)在5 B细胞浸润较少有关癌症(THCA, THYM,马、KIRC UVM)(斯皮尔曼相关,富兰克林·德兰诺·罗斯福< 0.1)(图
1 (b))。值得注意的是,所有的10 B细胞基因签名(
BANK1,
HVCN1,
CD79B,
RALGPS2,
FCRL3,
CD79A,
BACH2,
FCRL1,
黑色,和
BTLA显示阴性表达的相关性
PLK1在光电子能谱表达式,9在LUSC STAD(皮尔逊相关性,富兰克林·德兰诺·罗斯福< 0.1)(图
1 (c))。此外,在6癌症(TGCT,马,塞斯克,LIHC KICH,和STAD), upregulation
PLK1与更高水平的NK细胞渗透,在1癌症类型(LUAD),我们观察到一个相反的趋势(斯皮尔曼相关,富兰克林·德兰诺·罗斯福< 0.1)(图
1 (d))。此外,我们的相关联
PLK1表达水平与浓缩的尖水平癌症。我们发现
PLK1表达水平与浓缩的尖水平负相关9癌症(LUSC, TGCT、STAD GBM PAAD,光电子能谱,LUAD, ACC,和DLBC),并在4癌症类型(KIRC, THYM THCA, BRCA),我们观察到一个相反的趋势(斯皮尔曼相关,富兰克林·德兰诺·罗斯福< 0.1)(图
1 (e))。值得注意的是,114年(95%)的120年尖基因显示阴性表达的相关性
PLK1表达LUSC, 110(92%)基因在TGCT尖(斯皮尔曼相关,富兰克林·德兰诺·罗斯福< 0.1)。总之,这些数据表明,升高
PLK1表达往往会抑制免疫细胞浸润和抗肿瘤免疫的癌症类型。
反向PLK1可能与免疫细胞浸润在癌症和免疫活动。(一)
PLK1反向表达水平与免疫分数10癌症类型,积极与免疫得分4癌症(斯皮尔曼相关,富兰克林·德兰诺·罗斯福< 0.1)。(b)
PLK1反向表达水平与B细胞渗透在13个癌症类型和积极与B细胞渗透5癌症类型(斯皮尔曼相关,富兰克林·德兰诺·罗斯福< 0.1)。(c)的B细胞基因签名显示消极的表达相关性
PLK1在能谱表达式,LUSC和STAD(皮尔逊相关性,罗斯福< 0.1)。(d)
PLK1反向表达水平与NK细胞渗透在6癌症类型和积极与NK细胞渗透1癌症类型(斯皮尔曼相关,富兰克林·德兰诺·罗斯福< 0.1)。(e)
PLK1反向表达水平与尖渗透在9癌症类型和积极与尖渗透在4癌症类型(斯皮尔曼相关,富兰克林·德兰诺·罗斯福< 0.1)。接待员:斯皮尔曼皮尔逊相关系数。罗斯福:错误发现率。NK:自然杀手。尖:肿瘤浸润淋巴细胞。
3.2。<斜体> PLK1 < /斜体>表达可能与抑郁HLA活动癌症
HLA基因编码MHC(主要组织相容性复合体)蛋白在肿瘤免疫调节很重要
20.]。我们发现
PLK1表达与HLA负相关活动在12个癌症(LUAD、LUSC TGCT,“绿带运动”,ACC, UCEC, DLBC, STAD, KICH,光电子能谱,SKCM,和UCS),而在3癌症类型(THCA、KIRC和LGG),我们观察到一个相反的趋势(斯皮尔曼相关,富兰克林·德兰诺·罗斯福< 0.1)(图
2(一个))。GDSC数据分析显示
PLK1表达与HLA活动负相关癌症细胞系(斯皮尔曼相关,R = -0.12, P = 2.0
∗
10−4)(图
2(一个))。此外,我们发现多数24 HLA基因分析显示显著负的相关性
PLK112癌症类型的表达式
PLK1表达与HLA活动负相关。例如,在肺癌类型,所有24 HLA基因表达相关性是负数
PLK1在LUSC表达式,19 HLA基因在LUAD(皮尔逊相关性,富兰克林·德兰诺·罗斯福< 0.1)(图
2 (b))。22日和21 HLA基因显示阴性表达的相关性
PLK1分别表达TGCT和DLBC。值得注意的是,
抗原,
HLA-DPA1,
HLA-DQB1,
HLA-DRA,
HLA-DRB1,
HLA-DRB5,和
HLA-J持续的负相关
PLK1表达式的癌症类型(图12
2 (b))。总的来说,这些结果表明,
PLK1表达式可能抑制癌症的HLA活动。
在癌症PLK1可能反向与HLA活动。(一)
PLK1反向表达水平与HLA活动在12个癌症和癌症细胞系和积极与HLA活动3癌症(斯皮尔曼相关,富兰克林·德兰诺·罗斯福< 0.1)。(b)的大部分24 HLA基因显示阴性表达的相关性
PLK112癌症类型的表达式
PLK1反向表达与HLA活动(皮尔逊相关性,罗斯福< 0.1)。(c)
PLK1积极表达水平与体细胞突变在癌症。(d)
PLK1积极表达水平与突变产生的数量预测HLA-binding肽。人类白细胞抗原HLA:。进一步推动:癌症细胞系。接待员:斯皮尔曼皮尔逊相关系数。罗斯福:错误发现率。
neoantigens产生的基因突变与抗肿瘤免疫(
11]。我们发现高的肿瘤
PLK1总体细胞突变数量表达水平明显高于较低的肿瘤
PLK1表达水平,TCGA(斯皮尔曼相关,R = 0.46, P = 2.57
∗
10−214)(图
2 (c))。此外,肿瘤高表达
PLK1有更显著的突变产生预测HLA-binding肽(
21比肿瘤低表达
PLK1(斯皮尔曼相关,R = 0.43, P = 1.03
∗
10−186)(图
2 (d))。这表明,虽然
PLK1upregulation与更高的三甲neoantigens,它能抑制抗肿瘤免疫反应的抑制HLA活动。
3.3。<斜体> PLK1 < /斜体>表达可能与抑郁的调节性T细胞活性的癌症
Treg细胞发挥重要作用在肿瘤免疫抑制
22]。我们发现高
PLK1表达水平与抑郁相关Treg 16癌症细胞富集水平(THYM、LUSC GBM、TGCT SKCM,马,UCEC,光电子能谱,UCS, UVM, OV, DLBC, LUAD, STAD,塞斯克,和KICH)在5与Treg细胞活性增强有关癌症(THCA, KIRC LIHC, BRCA, BLCA)(斯皮尔曼相关,富兰克林·德兰诺·罗斯福< 0.1)(图
3)。GDSC数据分析表明,高
PLK1表达水平与降低Treg细胞富集水平癌症细胞系(斯皮尔曼相关,R = -0.13, P = 3.29
∗
10−5)(图
3)。总之,这些数据表明
PLK1表达与Treg细胞呈现负相关活动范围广泛的癌症。
反向PLK1可能与癌症调节性T细胞活动。Treg:监管进一步推动:癌症细胞系。
3.4。<斜体> PLK1 < /斜体>表达式可能积极与表达式Cancer-Testis抗原的癌症
cta是异常激活免疫原性蛋白在许多癌症
23]。引人注目的是,我们发现高
PLK1CTA浓缩水平较高的表达水平显著相关,在31个33的癌症类型(斯皮尔曼相关,富兰克林·德兰诺·罗斯福< 0.1)(图
4(一))。明显,CTA基因
ATAD2,
CEP55,
FANCA,
KIF2C,
NUF2,
OIP5,
PBK有显著积极的表达相关性吗
PLK1表达在30癌症(皮尔逊相关性,富兰克林·德兰诺·罗斯福< 0.1)(图
4 (b))。此外,166年(74%)的223年CTA显示基因阳性表达的相关性
PLK1表达LIHC, 145(65%)在KIRC CTA基因。此外,GDSC数据分析显示
PLK1表达水平与CTA浓缩水平呈正相关癌症细胞系(斯皮尔曼相关,R = 0.22, P = 4.09
∗
10−12)(图
4(一))。总之,这些数据表明,高
PLK1表达与更高的CTA显示相关联。
PLK1可能积极与cancer-testis癌抗原(CTA)活动。(一)
PLK1表达水平与CTA浓缩水平呈正相关31癌症(斯皮尔曼相关,富兰克林·德兰诺·罗斯福< 0.1)。每个癌症类型的斯皮尔曼相关系数成正比的长度栏指向癌症类型。(b) CTA基因
ATAD2,
CEP55,
FANCA,
KIF2C,
NUF2,
OIP5,
PBK显示显著积极表达的相关性
PLK1表达式在30癌症类型(皮尔逊相关性,富兰克林·德兰诺·罗斯福< 0.1)。
3.5。提高免疫活动倾向于提高癌细胞PLK1抑制剂的敏感性
GDSC数据涉及到肿瘤细胞的药物敏感性(IC50)数以百计的化合物,其中GW84368 PLK1和bi - 2536的目标。我们发现浓缩的B细胞,NK细胞,和尖GW84368的IC50值呈负相关,和浓缩的B细胞和尖水平负相关的IC50值bi - 2536(斯皮尔曼相关,P < 0.05)(图
5)。它表明,更高水平的B细胞,NK细胞,或者尖可以促进癌细胞PLK1抑制剂的敏感性。理性在更高水平的B细胞,NK细胞,或尖与低水平的PLK1需要低浓度的PLK1抑制剂抑制癌症细胞增殖。此外,GDSC数据分析表明,GW84368和bi的IC50值- 2536与癌细胞的免疫分数负相关(斯皮尔曼相关,P < 0.01)(图
5),再次表明提高免疫活动增加癌细胞PLK1抑制剂的敏感性。
癌症免疫活动积极与癌细胞PLK1抑制剂的敏感性(GW84368和bi - 2536)。ssGSEA: single-sample基因片段的富集分析。
3.6。PLK1抑制抗肿瘤免疫通过< /斜体> <斜体>细胞周期调控
PLK1是细胞周期进程的基本监管机构之一(
24]。正如所料,TCGA的数据分析表明,
PLK1强烈表达水平与细胞周期相关的活动在所有33癌症类型的正方向(补充表
S3)。此外,我们的分析表明,高细胞周期活动倾向于抑制抗肿瘤免疫。例如,细胞周期活动负相关与尖浓缩在20 3癌症癌症与积极的关联与尖浓缩(斯皮尔曼相关,富兰克林·德兰诺·罗斯福< 0.1)(图
6)。细胞周期活动负相关与HLA浓缩在21个癌症类型,只有在癌症类型显示正相关(图1
6)。此外,细胞周期活动负相关B细胞浓缩在11个癌症类型和5类型与B细胞浓缩(图呈正相关
6)。有趣的是,细胞周期显示正相关的CTA浓缩在30 33癌症(斯皮尔曼相关,富兰克林·德兰诺·罗斯福< 0.1)(补充表
S4)。此外,我们发现,在20个癌症细胞周期活动是与免疫相关的负面得分相比,在4癌症细胞周期活动正在积极与免疫相关的分数(图
6)。总之,这些结果表明,
PLK1upregulation抑制抗肿瘤免疫
通过提高癌症细胞周期活动。这是符合最近的一项研究表明,细胞周期抑制促进抗肿瘤免疫(
15]。
免疫活动可能与癌症细胞周期活动负相关。
3.7。PLK1抑制增加我在多个细胞系表达MHC类
我们使用了PLK1抑制剂(BI2536)治疗癌症细胞系和MHC类的表达水平相比我(
抗原,
HLA-B,
HLA-C,
B2M,和
TAP1基因和蛋白质产品)之间的前和后细胞系。我们观察到,MHC类我分子在烧伤科细胞株表达显著增加使用细胞系相比,结果是一致的在所有的四个不同的细胞系(UCEC LUSC,“绿带运动”,和SKCM)测试(图
7)。这个实验验证的结果,生物信息学分析
PLK1反向表达与HLA活动在不同癌症类型。
PLK1抑制增加我在细胞系表达MHC类。(一)qPCR MHC的分析类我mRNA表达和处理后与BI2536细胞系。(b)流仪结果MHC类的我(HLA-ABC W6/32标签)表达式和治疗后与BI2536细胞系。
4所示。讨论
PLK1主调节器的细胞周期,它的超表达是致癌在不同癌症类型。因此,针对PLK1可能有前途的治疗各种恶性肿瘤。然而,当前PLK1抑制剂取得了非常有限的临床成功。另一方面,虽然免疫疗法是实现快速临床成功在许多难治性癌症治疗,相当数量的病人不应对这些疗法。改善治疗的临床疗效,PLK1抑制和免疫疗法值得考虑。探讨两种疗法相结合的可能性,我们之间的联系进行了分析
PLK1表达和肿瘤免疫在各种不同的癌症类型。我们的生物信息学分析表明,
PLK1表达倾向于较高的癌症抑制抗肿瘤免疫
PLK1表达水平通常HLA表达水平较低和尖渗透。此外,体外实验证实PLK1抑制显著增加的表达HLA分子在各种癌症。一个PLK1抑制抗肿瘤免疫的主要机制在于,PLK1 upregulation激活细胞周期可能减少肿瘤免疫原性(图
8(一个))。此外,我们发现高的癌症
PLK1表达水平明显更高的频率
TP53比较低的癌症突变
PLK1表达水平在12个癌症(确切概率法,富兰克林·德兰诺·罗斯福< 0.05)(图
8 (b)),这表明
PLK1upregulation与的患病率呈正相关
TP53突变。因此,较高的
TP53变异率较高的癌症
PLK1表达水平也可能是部分原因沮丧的这些癌症肿瘤免疫(图
8(一个)),因为之前的一项研究表明,野生型p53可能促进肿瘤免疫(
25]。
PLK1抑制肿瘤免疫机制的可行性PLK1抑制和免疫疗法在癌症治疗相结合。(一)PLK1抑制肿瘤免疫
通过调节细胞周期和p53通路。(b) PLK1表达水平较高的癌症的患病率更高
TP53较低的突变与癌症
PLK1表达水平在12个癌症类型(确切概率法,富兰克林·德兰诺·罗斯福< 0.05)。或:优势比。(c) PLK1抑制和免疫疗法的组合是可行的在促进抗肿瘤功效。
的相关性
PLK1表达与免疫签名可能会受到其他因素的影响,如患者年龄、性别、肿瘤阶段,与品位。我们重新分析的相关性
PLK1表达与免疫签名(免疫分数)患者根据年龄分层下(< 60岁和≥60岁),性别(男性和女性)阶段(早期阶段(阶段i ii)和后期(阶段iii iv)),与品位(低级(G1-2)和高档(G3-4)),分别。我们没有观察到明显的变化的统计相关性,当这些协变量被认为是(补充表
S5)。此外,我们进行了多元线性回归分析之间的相关性
PLK1表达和免疫签名通过添加协变量“年龄”。我们的结果表明之间的关系
PLK1表达和免疫签名不太可能影响变量“年龄”(补充表
S6)。
理性预期,PLK1抑制和免疫疗法的结合可以提高抗肿瘤疗效。首先,PLK1抑制能够促进肿瘤抗原表示和抗肿瘤免疫渗透,可以进一步增强的免疫疗法(图
8 (c))。第二,癌症免疫疗法可提高肿瘤免疫原性,进而增加癌细胞PLK1抑制剂的敏感性(图
8 (c))。因此,PLK1抑制和免疫疗法的组合可以承诺在癌症治疗,尽管它需要进一步证明了实验和临床验证。