JHE
医疗工程杂志
2040 - 2309
2040-2295
Hindawi
10.1155/2021/3284186
3284186
研究文章
非小细胞肺癌免疫细胞浸润与预后的生物信息学分析
https://orcid.org/0000-0001-6009-5812
太阳
恒
1
https://orcid.org/0000-0002-8452-3954
隋
博文
2
https://orcid.org/0000-0002-6853-2236
李
余
1
杨ydF4y2Ba
小君
1
曹
明明
3.
张
礼嘉
4
https://orcid.org/0000-0002-7214-8464
刘
松江
1
阿卜杜勒海
Enas
1
黑龙江中医药大学第一附属医院肿瘤科
哈尔滨
中国
2
黑龙江中医药大学第一附属医院肿瘤呼吸内科
哈尔滨
中国
3.
黑龙江中医药大学
哈尔滨
中国
hljucm.edu.cn
4
黑龙江中医药大学附属第一医院肿瘤学伦理办公室
哈尔滨
中国
2021
22
9
2021
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12
7
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24
8
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版权所有©2021孙恒等人。
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客观的 .基于生物信息学对非小细胞肺癌(non-small-cell lung cancer, NSCLC)表达谱芯片数据进行基因集富集分析(gene set enrichment analysis, GSEA)和免疫细胞浸润分析,构建TICS评分模型,区分预后时间,筛选NSCLC治疗的关键基因和肿瘤相关途径。探索非小细胞肺癌患者的差异基因,预测非小细胞肺癌的潜在治疗靶点,为非小细胞肺癌的治疗提供新的方向。
方法 .使用81例NSCLC患者的转录组数据和GEO数据库下载匹配的临床数据(访问号:GSE120622)。形成非小细胞肺癌(NSCLC)的表达。根据TICS值计算并分组,利用mRNA表达谱数据对非小细胞肺癌患者进行GSEA。生物过程分析(GO), DAVID和KOBAS对差异基因进行通路富集(KEGG)分析。利用蛋白质相互作用(PPI)对数据库STRING进行分析,构建目标相互作用的PPI网络模型。
后果 通过上述分析,我们获得了6个显著相关的免疫细胞,包括活化的B细胞(图
1 (b) ,,
p
<
0.001
).根据显著相关免疫细胞的TICS值,获得41个高危样本和40个低风险样本。对TICS值与免疫评分值进行Pearson相关系数计算,发现TICS值与IMS值显著相关(Cor = 0.7952)。基于非小细胞肺癌mRNA表达谱数据,在高TICS组和低TICS组之间的mRNA表达均有显著变化(FDR 0.01, FC > 2)。研究人员发现,在高TICS组中有730种mrna显著上调,在低TICS组中有121种mrna显著下调。使用STRING数据选取高置信度边(组合评分>0.7);然后,将191个mrna匹配到反向边缘;最后,构建了包含164个点和777条边的无向网络。细胞趋化因子介导的信号通路的重要成员,如CCL19,影响患者的生存时间。
结论 .(1)非小细胞肺癌患者的寿命与未成熟B细胞、活化B细胞、MDSC、效应记忆CD4 T细胞、嗜酸性粒细胞和调节性T细胞的存在密切相关。(2)与NSCLC生存相关的免疫相关基因CX3CR1、CXCR4、CXCR5、CCR7通过调节免疫过程影响NSCLC患者的预后。
黑龙江省应用技术研究开发计划
ga19c109
黑龙江省本科院校中央扶持地方高校改革发展资金分配
2020年gsp07
1.导言
肿瘤的发生不仅与肿瘤细胞自身的生物学特性有关,而且肿瘤细胞与肿瘤免疫微环境和免疫系统的相互作用也起着非常重要的作用,其中一个需要研究的问题是肿瘤组织中的免疫细胞浸润是否与肿瘤细胞自身的生物学特性有关反恐执行对肿瘤治疗和预后的影响。
肺癌是一种发病率和死亡率高的主要癌症,数据显示全世界每30秒就有1人死于肺癌[
1 肺肿瘤分为小细胞肺癌(SCLC)和非小细胞肺癌(NSCLC)两种类型。小细胞肺癌(SCLC)约占所有肺癌病例的85% [
2 由于原发性肺癌患者发病隐匿,临床表现多样,缺乏特异性,大多数患者在确诊为肺癌时已处于中晚期,因此肺癌患者是否可以筛查、诊断,早期治疗成为影响预后的关键因素。
肿瘤微环境是由多种细胞(T细胞、B淋巴细胞、巨噬细胞、NK细胞等)和细胞外成分(细胞因子、趋化因子、受体等)组成的双向、动态、复杂的网络系统,这个网络的每个元素都能够促进恶性转化,并影响肺癌的发病、进展和转移,发展和转移,以及对药物治疗的反应[
3. 近年来,TME中的t细胞表面程序性细胞死亡蛋白1 (PD-1)被证实与癌细胞表面程序性细胞死亡配体1 (PD-L1)结合,导致t细胞功能障碍或衰竭,导致免疫耐受和肿瘤细胞应答。发生免疫耐受,导致肿瘤细胞免疫逃逸[
4 ]在杀死肿瘤细胞的过程中,CD8+T细胞在TME中起着最核心的作用[
5 ],其质量和数量对免疫治疗效果至关重要[
6 ].黑色素瘤PD-1抑制剂的研究[
7 ]已经发现CD8+T细胞的数量与疗效相关。肿瘤浸润性B细胞是免疫系统微环境的重要组成部分。在非小细胞肺癌患者中,CD4+T淋巴细胞可见于B细胞浸润的肿瘤细胞和具有三级淋巴结构的肿瘤细胞中。高密度滤泡B细胞与NSCLC患者的预后较好相关[
8 ]Bruno等人[
9 ]发现肿瘤浸润B细胞可以向CD4+ TIL表达内源性肿瘤抗原,并在体外改变它们。也有报道骨髓源性抑制细胞(MDSCs)能够产生TGF-p、IL-10等因子,促进初始CD4+ T细胞向Treg细胞发展,导致Treg细胞增多,从而抑制机体免疫反应[
10 ].此外,MDSC还能阻断自然杀伤细胞(NK)的分泌。分泌物质中的IFN-NK细胞是指能够杀死癌细胞和病毒感染细胞的天然免疫细胞。IFN-NK细胞可以调节其他免疫细胞的功能,促进组织生长。
趋化因子是一组小分子(分子量大多为8-10 kD),能够趋化细胞运动。趋化因子根据n端半胱氨酸残基的数量和位置可分为四类:C、CC、CXC和CX3C。例如,CCL2趋化因子具有趋化吸引单核细胞、巨噬细胞和T淋巴细胞的能力[
14 ].已有研究表明,抗CCL2抗体阻断CCL2降低MDSC、增加CD4+和CD8+ T细胞浸润、促进IFNy分泌等作用,可增强PD-1治疗小鼠肺癌的肿瘤免疫作用[
15 ].CX3CL1 (FKN, fractalkine)是CX3C型趋化因子家族的唯一成员,具有趋化因子共同的趋化功能,介导白细胞特别是淋巴细胞和吞噬细胞的游走和激活。李等人[
16 ],采用基因沉默技术证实CX3CL1在肝癌细胞株HepG2中稳定高表达,抑制肿瘤血管生成。在乳腺癌研究中,CX3CL1被发现可能在肿瘤转移中发挥作用[
17 ,
18 ],且CX3CL1高表达与乳腺癌预后良好相关[
19 ]也可作为免疫调节治疗的适应证之一。
综上所述,近年来只有少数报道研究了免疫细胞的临床病理意义,而免疫细胞浸润的总体表达水平和预后价值,尤其是在非小细胞肺癌患者中,需要进一步研究。因此,在本研究中,我们从公共数据库收集数据,构建统计评分模型,独立分析多个数据集,并汇总分析结果,以阐明非小细胞肺癌预后相关的分子机制,这不仅有助于进一步了解非小细胞肺癌的发病机制,而且为非小细胞肺癌的早期诊断和治疗提供了新的思路和靶点。
2.材料和方法
2.1.数据预处理
NSCLC患者的转录组和临床数据来自GEO数据库,使用研究队列GSE1206222(
n = 81). 入选患者的相关体细胞突变数据也来自上述数据库。原始文件用于对所有表达式数据应用鲁棒多数组平均(RMA)技术。此外,使用“DeEseq2”和“affy”R软件包调整背景,并对分析结果进行log2转换。
2.2.免疫评分、TICS评分、Pearson免疫细胞相关系数计算和免疫细胞浸润
(1)
采用单样本基因集富集分析(ssGSEA)对81例非小细胞肺癌患者肿瘤浸润的28个免疫细胞的相对丰度进行了定量分析。采用Cox风险回归分析评估28个免疫细胞的预后。根据免疫细胞的风险值和ssGSEA的NES值计算TICS值,并计算Z-score。
(2)
我们对81例患者的转录本进行了主成分分析。为了获得与高渗透相关的基因,
T -测试和FDR校正。然后,我们获取与高浸润相关的上调基因和下调基因,聚类上调基因和样本,比较TICS值和免疫评分值,计算Pearson相关系数。
2.3.功能和路径的丰富分析
(1)
我们通过GO和KEGG功能注释来探索这些不同基因的生物学过程。此外,我们使用了“聚类分析软件”
R 软件包实现基于替代TICS的特征基因。同时,通过GSEA获得氧化石墨烯术语与免疫细胞的整体关系。
(2)
为了找到GO项之间的关系,首先利用与免疫浸润相关的信号通路和相关基因通过字符串数据库构建网络,然后挖掘网络模块,分析基因与相关生物过程之间的相关性。
(3)
我们检测并预测了非小细胞肺癌患者的生存期,并基于免疫因素分析绘制了生存曲线。
3.结果1:构建非小细胞肺癌免疫微环境图
免疫治疗是非小细胞肺癌最重要的治疗方法之一。患者组织免疫微环境的异质性可能影响治疗效果。因此,必须了解肿瘤组织中免疫细胞的组成。首先,我们从GEO数据库(访问号:gse120622)下载了81例NSCLC患者的转录组数据和匹配的临床数据。基于ssGSEA算法,我们利用每个患者的mRNA表达数据构建了包括27种适应性和固有免疫细胞在内的NSCLC免疫细胞浸润图。中央记忆CD8 T细胞、中央记忆CD4 T细胞、浆细胞样树突状细胞是NSCLC组织中常见的免疫细胞,均存在于81例患者中。此外,还有一些个体特异性免疫细胞,如未成熟的B细胞(图)
1 (a))。我们发现大多数免疫细胞与活化的CD8 T细胞、活化的B细胞、未成熟的B细胞、单核细胞、效应记忆CD8 T细胞等细胞高度相关。然而,一些免疫细胞与其他免疫细胞之间并没有明显的联系,如明亮的自然杀伤细胞、活化的CD4 T细胞、浆细胞样树突状细胞(图)
1 (b) )。这可能表明NSCLC患者的免疫微环境之间存在复杂的相互作用模式。
图1
(a)利用ssGSEA算法绘制免疫细胞浸润热图。(b)基于Pearson相关性构建免疫细胞图。
(一)
(b)
4.结果2:构建基于非小细胞肺癌患者免疫微环境的TICS评分模型
然后根据患者的生存数据,采用Cox回归分析和探讨27种浸润免疫细胞与生存时间的关系。同时,我们得到了27个免疫细胞的风险比和风险系数。结果显示,个体特异性免疫细胞与NSCLC患者的生存显著相关(图)
2 (a))。MDSC细胞与其他五种免疫细胞呈高度相关性(图
2 (b) )。我们根据这六种肿瘤浸润性免疫细胞的数量计算每位患者的TICS评分(见程序),然后根据TICS评分中位数将患者分为高TICS组和低TICS组。在高TICS组,我们发现未成熟B细胞、活化B细胞、MDSC效应记忆CD4 T细胞、嗜酸性粒细胞和调节性T细胞的ssGSEA得分较高(
P
<
0.01
)(图
2 (c))。各种研究发现,包括非小细胞肺癌在内的许多实体肿瘤的总生存率与肿瘤浸润B细胞呈正相关[
8 ,
20. - - - - - -
26 ].此外,肿瘤浸润的B细胞和肿瘤浸润的CD4 + T细胞创造了淋巴样的三级结构,这与NSCLC的生存率呈正相关[
8 ,
26 ].此外,我们根据临床生存数据分析NSCLC患者的预后。我们发现两组之间的预后有很大的差异,高TICS组比低TICS组的预后好得多。这说明构建的TICS评分可以作为临床预后的参考(图)
2 (d))。
图2
(一)
(b)
(c)
(d)
5.结果3:TICS相关基因参与NSCLC重要免疫通路
对TICS相关生物学进展的进一步研究将有助于分析影响NSCLC预后的分子机制。首先,我们利用基于TICS组的mRNA表达数据对NSCLC患者进行GSEA。结果显示,高TICS组影响非小细胞肺癌预后的上调基因与T细胞和B细胞的信号通路显著相关(图)
3. (a) )。提示免疫调节是影响NSCLC预后的重要生物学过程,高TICS组上调基因是参与其免疫调节的重要分子。接下来,我们鉴定了显著不同的mRNA(FDR<0.01,FC > 2) 根据NSCLC的mRNA表达数据,在高TIC组和低TIC组之间进行比较。
图3
(一)
(b)
(c)
(d)
最后,在高TICS组中获得730个显著上调mrna,在低TICS组中获得121个显著下调mrna(图)
3. (b))。根据我们的结果,mRNA的上调更可能与免疫功能有关,如CX3CR1,介导白细胞的迁移和粘附;CCL21对B细胞、巨噬细胞和中性粒细胞无趋化作用。为了进一步分析差异mRNA的功能,我们使用DAVID工具对其进行富集。基因本体论(GO)结果显示,前10种生物功能中表达上调的mRNA均富集。主要包括一些与免疫反应有关的功能。同样,在京都基因与基因组百科全书(KEGG)的前10条通路中,mRNA的上调也明显富集。主要包括细胞粘附分子和免疫等相关信号通路。这些结果充分说明免疫功能相关基因可以影响NSCLC的预后。此外,我们还探讨了前10大生物功能(GO)是否相关。 The result shows that these biological functions are closely related and can share the same gene set, indicating that these biological functions have some similarities.
6.结果4:免疫相关基因是鉴别TICS的关键
接下来,我们探索了十大生物学功能相关mrna之间的相互作用。首先,我们从STRING数据中选择高可靠性边缘(综合评分>0.7)。然后,将191个mrna匹配到相互作用边缘。最后,构建一个包含164个点和777条边的无向网络(图5)。
4 (a))。然后,我们使用MCODE插件获取子网,并选择可靠性高的子网进行生物功能标注(图)
4 (b) 4
4 (e) )我们发现与趋化因子介导的信号通路相关的mRNA之间存在密切的相互作用。同时,我们探讨了这四个子网络是否能够有效区分高TIC和低TIC。我们发现,通过绘制ROC曲线和计算面积u,这四个小网络可以区分高TIC和低TIC在曲线下方,表明它们是区分抽动的潜在标记(图
4 (f) 其中,CCL19作为趋化因子介导的信号通路的重要成员,已证明其在肿瘤FSC中的表达水平与CD8的免疫细胞浸润程度有关 + T细胞与肿瘤积聚(29391257)。综上所述,CCL19表达水平与肿瘤大小有关。表达水平越低,肿瘤越大。此外,CX3CR1也是T细胞分化的标志物(33658501)。这些趋化因子也与NSCLC患者的生存率显著相关。据报道,肿瘤组织中CX3CR1、CXCR4、CXCR5和CCR7的表达水平显著增加,这会影响患者的生存时间。CCR7表达阳性患者的5年DFS和5年OS为大幅上升(32896997)。
图4
(一)
(b)
(c)
(d)
(e)
(f)
7.讨论
肿瘤细胞、成纤维细胞、免疫细胞、不同的信号化学物质和细胞外基质构成了肿瘤微环境的大部分。肿瘤微环境显著影响肿瘤的诊断、生存和临床治疗敏感性。相关研究表明,适应性免疫和天然免疫系统的免疫细胞可以渗透到肿瘤组织,形成肿瘤免疫微环境并影响肿瘤进展。化疗后患者的生存受肿瘤中免疫细胞数量的影响。在这项工作中,我们使用非小细胞肺癌mRNA表达数据创建肿瘤组织内部免疫系统的微环境图假设结合对免疫细胞和患者生存数据的分析,发现NSCLC患者的生存与未成熟B细胞、活化B细胞、MDSC、效应记忆CD4 T细胞、嗜酸性粒细胞和调节性T细胞之间存在显著相关性。接下来,我们构建了TICS评分模型并对spe进行分级根据预后相关免疫细胞含量及其与生存率的关系对患者进行cific TICS评分。TICS评分可以区分预后良好的非小细胞肺癌患者和预后不良的患者的生存时间。
此外,我们通过预后标记物和mRNA表达谱鉴定了tics相关基因。我们发现许多趋化因子在高TICS组中显著上调。例如,CX3CR1、CXCR4、CXCR5和CCR7通常与NSCLC的生存有关。此外,CX3CR1和CCL19的高表达可以影响T细胞的免疫分化,如CD8 + T细胞。既往研究表明,NSCLC活检组织中C3水平与CD4 +、CD8 + T淋巴细胞浸润相关(24819254)。此外,功能富集结果显示,tics相关基因参与多种免疫相关的生物学进展和信号通路,提示免疫相关基因通过调节免疫过程影响NSCLC患者的预后。
我们利用生物学功能排名前十的基因建立免疫基因间的PPI和高可信度PPI网络。PPI网络结果表明,这些基因之间存在密切的相互作用,说明免疫基因可能具有复杂的协同和相互作用,通过协同作用调节机体的免疫反应。此外,我们还探讨了PPI网络中的四个重要子网络。通过绘制ROC曲线并计算曲线下面积,我们发现这四个亚网络是区分患者与TICS的重要分子标志物。综上所述,我们的研究描绘了一个完整的NSCLC免疫图谱,并构建了一个基于免疫细胞含量的TICS评分模型,可以有效区分患者的预后时间。差异基因和富集分析解释了NSCLC预后相关的分子机制。PPI网络和子网络挖掘有效地识别出了区分TICS分类的潜在标记。我们希望通过本研究发现的与预后相关的免疫标志物,为临床诊断、用药及患者预后预测提供指导。
数据可用性
支持本研究发现的数据可由通讯作者在合理的要求下提供。
利益冲突
作者声明他们没有利益冲突。
作者的贡献
孙恒和隋博文对这一研究做出了同样的贡献。
致谢
本研究得到黑龙江省应用技术研究与发展计划项目的资助,项目编号:GA19C109,项目名称:脾虚型肺癌放疗、化疗后消化道毒副作用研究中医药及资助单位:黑龙江大学中医药学院,中央支持黑龙江省地方本科院校地方高等学校改革与发展(高级人才工程)(2020),项目编号:2020GSP07,项目名称:省级中医肿瘤诊疗中心“一体两翼”运作模式探索。
[
]1
赵
Z。
白
H
段
J
王
J
COVID-19疫情期间肺癌患者个体化医疗及常见不良事件管理建议
Thorac癌症
2020
11
6
1752
1757
10.1111 / 1759 - 7714.13424
[
]2
米切尔
p . L。
约翰
T。
2016年肺癌:免疫疗法成熟
柳叶刀呼吸医学
2016
4
12
947
949
10.1016/s2213-2600(16)30379-4
2 - s2.0 - 84996843247
[
]3.
吴
T。
戴
Y。
肿瘤微环境与治疗反应
癌症信件
2017
387
61
68
10.1016 / j.canlet.2016.01.043
2 - s2.0 - 85007247473
[
]4
Zak
K.M。
格鲁德尼克
P。
Magiera
K
德姆林
一个。
都宾
G。
Holak
t。
免疫检查点受体PD-1及其配体PD-L1/PD-L2的结构生物学
结构
2017
25
8
1163
1174
10.1016/j.str.2017.06.011
2 - s2.0 - 85026526632
[
]5
对冲
附言。
Karanikas
V。
埃弗斯
年代
检查点抑制时代癌症免疫治疗的免疫监测的地点、时间和方式
临床癌症研究
2016
22
8
1865
1874
10.1158 / 1078 - 0432. - ccr - 15 - 1507
2 - s2.0 - 84967321420
[
]6
沙玛
P。
胡
l S。
沃戈
j . A。
里巴斯
一个。
对癌症免疫治疗的初级、适应性和获得性耐药性
细胞
2017
168
4
707
723
10.1016/j.cell.2017.01.017
2 - s2.0 - 85012158583
[
]7
Tumeh
p C。
Harview
c . L。
耶利
J.H。
PD-1阻断通过抑制适应性免疫抵抗诱导应答
自然
2014
515
7528
568
571
10.1038 / nature13954
2-s2.0-84920956732
[
]8
日尔曼
C。
Gnjatic
年代。
Tamzalit
F。
肺癌患者三级淋巴结构中存在B细胞与保护性免疫有关
美国呼吸与重症监护医学杂志
2014
189
7
832
844
10.1164 / rccm.201309 - 1611摄氏度
2-s2.0-84897391372
[
]9
布鲁诺
t . C。
it
p . J。
摩尔
b . L。
肿瘤内抗原呈递B细胞对非小细胞肺癌患者CD4+TIL表型的影响
癌症Immunol Res
2017
5
10
898
907
2326 - 6066. - 10.1158 / cir - 17 - 0075
2 - s2.0 - 85030711272
[
]10
黄
B。
锅
p Y。
李
Q。
Gr-1+CD115+未成熟髓系抑制细胞介导肿瘤诱导的T调节性细胞的发育和T细胞无能量
癌症研究
2006
66
2
1123
1131
10.1158 / 0008 - 5472. - 05 - 1299
2-s2.0-315446571
[
]11
Vivier
E。
托马塞洛
E。
Baratin
M。
沃尔泽
T。
乌戈里尼
年代。
自然杀伤细胞的功能
自然免疫学
2008
9
5
503
510
10.1038 / ni1582
2 - s2.0 - 42449151214
[
]12
马尔姆伯格
K.J。
Carlsten
M。
Bj rklund
一个。
Sohlberg
E。
Bryceson
Y.T。
Ljunggren
H.-G。
自然杀伤细胞介导的人类癌症免疫监测
研讨会在免疫学
2017
31
20.
29
10.1016 / j.smim.2017.08.002
2 - s2.0 - 85028809129
[
]13
Chiossone
l
大仲马
p Y。
公报
M。
Vivier
E。
癌症中的自然杀伤细胞和其他先天淋巴细胞
免疫学
2018
18
11
671
688
10.1038/s41577-018-0061-z
2 - s2.0 - 85053412044
[
]14
Yoshimura
T。
肿瘤微环境中单核细胞趋化蛋白-1(MCP-1)/CCL2的产生
Cvtokine
2017
98
71
78
10.1016 / j.cyto.2017.02.001
2-s2.0-85011918299
[
]15
王
Y。
张
X。
杨
l
薛
J
胡
G。
阻断CCL2可增强肺癌抗pd1作用
J骨肿瘤防治杂志
2018
11
27
32
10.1016 / j.jbo.2018.01.002
2 - s2.0 - 85041636144
[
]16
李
F。
王
Z。
刘
Y。
李
J
下调fractalkine抑制肝癌HepG2细胞体外和体内血管生成
肿瘤的报道
2010
24
3.
669
675
10.3892 / or_00000906
[
]17
安德烈
F。
Cabioglu
N。
Assi
H
趋化因子受体的表达预测腋窝淋巴结阳性的原发性乳腺癌转移复发的部位
《肿瘤学
2006
17
6
945
951
10.1093 / annonc / mdl053
2-s2.0-33646867374
[
]18
Jamieson-Gladney
W.L。
张
Y。
方
a . M。
Meucci
O。
Fatatis
一个。
趋化因子受体CX(3)CR1直接参与乳腺癌细胞向骨骼的阻滞
乳腺癌研究:BCR
2011
13
5
R91
10.1186 / bcr3016
2 - s2.0 - 80054695444
[
]19
公园
M.H。
李
j·S。
尹
J.H。
乳腺癌肿瘤细胞高表达CX3CL1与预后良好和肿瘤浸润性CDB+ T细胞、自然杀伤细胞和树突状细胞增加相关
外科肿瘤学杂志
2012
106
4
386
392
10.1002/jso.23095
2-s2.0-84865143605
[
]20.
Al-Shibli
K.I。
唐纳姆
T。
Al-Saad
年代。
皮尔森
M。
Bremnes
r·M。
Busund
l . T。
非小细胞肺癌中上皮和间质淋巴细胞浸润的预后影响
临床癌症研究
2008
14
16
5220
5227
10.1158 / 1078 - 0432. - ccr - 08 - 0133
2 - s2.0 - 52649163840
[
]21
米尔恩
K
Kobel
M。
Kalloger
s E。
对高级别浆液性卵巢癌免疫浸润的系统分析显示CD20、FoxP3和TIA-1是积极的预后因素
《公共科学图书馆•综合》
2009
4
7
e6412
10.1371 / journal.pone.0006412
2 - s2.0 - 68149141666
[
]22
奈德嘎德
理学学士。
Ladekarl
M。
尼恩加德
j . R。
尼尔森
K
宫颈鳞状细胞癌IB期患者细胞免疫反应的比较研究几种免疫细胞亚型数量少与5年内疾病复发密切相关
妇科肿瘤学
2008
108
106
111
10.1016 / j.ygyno.2007.08.089
2 - s2.0 - 37349118306
[
]23
吸引
j . R。
丽丝
m·A。
Muldong
麻省理工。
前列腺癌组织中肿瘤浸润性B细胞增多
转化医学杂志
2014
12
1
30.
10.1186/1479-5876-12-30
2 - s2.0 - 84893203731
[
]24
史
j . Y。
高
Q。
王
z . C。
边缘浸润CD20(+) B细胞在肝癌中显示非典型记忆表型,与良好的预后相关
临床癌症研究
2013
19
21
5994
6005
10.1158 / 1078 - 0432. - ccr - 12 - 3497
2 - s2.0 - 84887039263
[
]25
Shimabukuro Vornhagen
一个。
Schloß呃
h·A。
格里斯乔克
l
结直肠癌患者肿瘤相关b细胞亚群的特征
Oncotarget
2014
5
13
4651
4664
10.18632 / oncotarget.1701
2 - s2.0 - 84905018222
[
]26
Dieu-Nosjean
m . C。
安托万
M。
Danel
C。
肿瘤内淋巴样结构的非小细胞肺癌患者的长期生存
临床肿瘤学杂志
2008
26
27
4410
4417
10.1200/jco.2007.15.0284
2-s2.0-52449102477