药物治疗。在对数生长期n已被采取,并用不同浓度的LPS(0处理过的
μ0.2 g / mL,
μ0.5 g / mL,
μ克/毫升,1
μg/mL) for 24 h, and the appropriated LPS concentration was selected. After 24 h of treatment with LPS (0.5
μ克/毫升)中,n已被放置在封闭的麻醉箱。入口端连接到一个ISO气体挥发,和95%空气和5%CO<年代ub>2在获得通过该出口端被连接到麻醉气体监视器为ISO浓度检查。Different concentrations of ISO (0.7%, 1.4%, and 2.1%) were passed in for 2 h, and then cell proliferation, apoptosis, and inflammatory factors were measured.
2.3。细胞转染
n已在对数生长期拍摄,接种到6孔板中,并培养在37℃,5%CO<年代ub>2孵化器。当细胞汇合达到70〜80%,的miR-206模拟物,抗miR-206,NC-模拟物,及Si-BDNF转染到n已并且在5%CO培养<年代ub>2incubator at 37°C for 48 h before use.
2.4。NHA增殖活性测定采用MTT
n已的各组在对数生长期的测试中,密度被取出并接种在96孔板
1
×
10
4细胞/孔。10
μL MTT solution was subsequently added when the cells cultured for 0, 24, 48, 72, and 96 h. After a further 4 h of incubation, the culture supernatant was aspirated, and 100
μ加入L-二甲基亚砜(DMSO);finally, the absorbance (OD) was measured at 450 nm using a microplate reader.
2.5。NHA凋亡率通过膜联蛋白V-FITC / PI双染色检测
NHAs to be tested in each group were collected and cultured for 48 h and digested with 0.25% trypsin and centrifuged at 1000 r/min for 5 min. After that, the cells were adjusted to a concentration of
5
×
10
5细胞/ mL,和5
μ大号的膜联蛋白V-FITC溶液中加入并充分混合。After homogenization, the cells were incubated at room temperature for 15 min in the dark, then 5
μ加入PI染色液L,混匀,孵育5 min;最后用流式细胞仪检测NHAs的凋亡水平。
母星数据库是用来预测的miR-206和BDNF的结合位点。的BDNF野生型载体(WT-BDNF)构建;基因突变技术被用来改变的miR-206和BDNF的结合位点,和BDNF突变载体(MUT-BDNF)中的溶液用相同的方法构成。WT-BDNF or MUT-BDNF was then cotransfected with miR-206 mimics or miR-NC into NHAs and cultured for 48 h, and the luciferase activity of each group was measured using the dual-luciferase reporter gene kit [
8]。
2.10。统计分析
在这项研究中所有实验重复三次,数据表示为
x
¯
±
年代。用于统计分析和相关的人物画中的GraphPad 7.0软件。
t-test用于比较两个组之间,并且被用于多组间比较单因子变异数分析。
p
<
0.05和
p
<
0.01表示有统计学意义的差异。
3.结果3.1。ISO对LPS诱导n已增殖,凋亡和炎症反应的影响
MTT结果表明,细胞增殖的能力以剂量依赖的方式处理n已用不同浓度的LPS(0.0后增加
μ0.2 g / mL,
μ0.5 g / mL,
μ克/毫升,和1.0
μ克/毫升)(图
1(一),
p
<
0.01),并且在细胞增殖活性没有差异显著LPS时以0.5的浓度
μ克/毫升,1
μ克/毫升。在NHAs之后,首先用0.5处理
μ加入g/mL LPS,不同浓度的ISO (0.7%, 1.4%, 2.1%), 2h后NHAs的增殖活性最低为1.4%(图)
1 (b),
p
<
0.01)。MTT,膜联蛋白V-FITC / PI,和ELISA来测量增殖活性,凋亡率,IL-6,IL-1
β和TNF
αNC组,LPS组,和LPS + ISO组中n已表达。显示的结果表明,与NC组,增殖活性和IL-6的表达,IL-1相比
β和TNF
α均显著增加,细胞凋亡速率的LPS组中显著降低,而LPS + ISO组颠倒上NHA增殖,细胞凋亡和炎症反应的LPS的附图中的效果(
1 (c)- - - - - -
1 (e)所有
p
<
0.05)。综上所述,ISO可以逆转LPS对NHAs增殖和炎症反应的促进作用以及对凋亡的抑制作用。
ISO对脂多糖诱导的NHAs增殖、凋亡和炎症反应的影响。
*
p
<
0.05与
NC组;<年代up>Δ
p
<
0.05与
LPS组。(A-C)n已通过MTT测定的增殖。(d)NHA凋亡的膜联蛋白V-FITC / PI测定。IL-6,IL-1的(E-G)的表达
β和TNF
α用ELISA法测定NHAs。
3.2。ISO上调的的miR-206表达n已
的qPCR结果表明LPS显著抑制miRNA的表达[
2,
11- - - - - -
13]与增殖相关和n已凋亡(
p
<
0.05,
p
<
0.01),以及加入的ISO扭转这些抑制效果在一定程度上。特别是,所有检查的miRNA中,的miR-206是最显著逆转一个(图
2,
p
<
0.01)。因此,可以推断,ISO上调了NHAs中miR-206的表达。
ISO上调的miR-206的在n已细胞中的表达。
*
p
<
0.05,
*
*
p
<
0.01与
NC组;<年代up>Δ
p
<
0.05,<年代up>ΔΔ
p
<
0.01与
LPS组。
3.3。的miR-206下调BDNF
生物信息学数据库母星被用于预测BDNF为的miR-206(图的潜在靶基因
3(一个))。双荧光素酶报告基因的结果显示了miR-206的过表达显著降低了WT-BDNF质粒的荧光素酶活性(
p
<
0.01);但对mutt - bdnf质粒荧光素酶活性(
p
>
0.05)。Western blotting结果(图)
3 (c))还证实了miR-206的过表达在n已显著抑制BDNF表达(
p
<
0.01)。这些结果表明了miR-206的针对性和下调BDNF表达。
的miR-206靶向BDNF的下调。(一)生物信息学分析结果表明,BDNF是的miR-206的靶基因。(b)中所述的双荧光素酶报告基因测定法来验证的miR-206和BDNF之间的关系。(c)中Western印迹用于测量BDNF的表达。
*
*
p
<
0.01与
NC组。
3.4。ISO规定的LPS诱导的增殖,凋亡,和经由所述miR-206 / BDNF轴n已的炎症反应
Western印迹法检测表达BDNF在n已用LPS处理后,结果表明,撞倒BDNF后,在n已BDNF表达显著降低(
p
<
0.01);此外,BDNF和miR-206的同时敲弱后,BDNF表达显著单独用BDNF的敲低相比增加(
p
<
0.01),与NC组比较无显著性差异。用LPS处理NHAs后,采用MTT、Annexin V-FITC/PI和ELISA检测其增殖活性、凋亡率和IL-6 IL-1
βNC组、ISO组、ISO+anti-miR-206组、ISO+si-BDNF组、ISO+anti-miR-206+si-BDNF组NHAs表达情况结果表明,与NC组比较,细胞增殖活性、IL-6、IL-1明显增强
β和TNF
α而加入anti-miR-206有效逆转了ISO对NHAs增殖、凋亡和炎症反应的影响。而在ISO+si-BDNF组中,ISO组对NHAs增殖、凋亡和炎症反应的影响进一步增强。与ISO+anti-miR-206组相比,ISO+anti-miR-206+si-BDNF组NHAs细胞的增殖活性和炎症反应降低,而凋亡率升高。
ISO调节的miR-206的作用/ BDNF轴线对LPS诱导NHA细胞增殖,细胞凋亡和炎症反应。(a)中Western印迹用于测量BDNF的表达。(b)中,通过MTT检测n已细胞的增殖活性。(c)中膜联蛋白V-FITC / PI法检测NHA细胞凋亡。(d-f)中IL-6的表达,IL-1
β和TNF
α在n已通过ELISA检测到的小区。
*
p
<
0.05与
NC组;<年代up>Δ
p
<
0.05与
ISO组;<年代up>#
p
<
0.05与
ISO +抗miR-206;<年代up>@
p
<
0.05与
ISO + si-BDNF。