GRP 胃肠病学研究和实践 1687 - 630 x 1687 - 6121 Hindawi出版公司 245167年 10.1155 / 2012/245167 245167年 研究文章 培养法和PCR的检测 幽门螺杆菌在伊拉克巴士拉省饮用水 Al-Sulami 答:一个。 1 Al-Edani t·A·A。 2 Al-Abdula 答:一个。 2 Ping-I 1 教育学院 巴士拉大学莎邮政信箱2108年,莎 巴士拉 伊拉克 uobasrah.edu.iq 2 生物学系 科学学院 巴士拉大学莎邮政信箱2108年,莎 巴士拉 伊拉克 uobasrah.edu.iq 2012年 21 06 2012年 2012年 08年 01 2012年 14 04 2012年 15 04 2012年 2012年 版权©2012 A。答:Al-Sulami et al。 这是一个开放的文章在知识共享归属许可下发布的,它允许无限制的使用,分布和繁殖在任何媒介,提供最初的工作是正确的引用。

幽门螺杆菌世界卫生组织认可的是消化性溃疡的主要原因,慢性胃炎、胃癌,尽管人类感染的来源不清楚。一个问题在理解人类污染的来源是很难孤立生物体从环境中。然而,结合PCR结果与471年培养饮用水样品可以提供更准确的图片 幽门螺旋杆菌检测。78年该方法假定 幽门螺旋杆菌殖民地266的自来水样本获得的初步检测修改哥伦比亚琼脂(MCUA)偏依靠脲酶积极性率为29.3%。然而,只有11人被证实通过革兰氏染色法和生化测试减少利率至4.13%而只有3(1.46%)从205年反渗透(RO)水样。此外,只有6(54.5%)的11个隔离从自来水和1(33.3%)的3 RO隔离被16 srrna PCR证实。因此PCR确认率下降到2.2%。此外,只有100(4%)的自来水样本为阴性 幽门螺旋杆菌文化方法 幽门螺旋杆菌积极通过16 srrna。巴士拉省的水样收集来自24个地区2009年2 - 12月间。的直接经济复苏 幽门螺旋杆菌从饮用水是惊人的和科学的激动人心的流行病学的调查。

1。介绍

幽门螺杆菌被公认为胃炎和消化性溃疡的主要原因和胃mucosa-associated淋巴组织(麦芽)胃淋巴瘤( 1]。的机制 幽门螺旋杆菌致病性的影响还不清楚,但被认为是细菌与宿主相互作用相关的由毒力基因,它是可能的,这些影响是增强细菌的侵袭性( 2- - - - - - 5]。 幽门螺旋杆菌改变从正常的螺旋状杆菌形成球菌样的形式暴露在水或其他不利条件( 6]。因此一直在尝试开发人工媒体实现传统文化复苏的结果比那些来自哥伦比亚血琼脂( 7, 8]。聚合酶链反应(PCR)方法也被用来检测 幽门螺旋杆菌作为其16 srrna明确分化的基因序列分析 幽门螺杆菌属密切相关 弯曲杆菌属和其他 幽门螺杆菌物种( 9]。的存在 幽门螺旋杆菌饮用水中由PCR检测到几个国家的报道( 10- - - - - - 12]。赫加蒂et al。 13还演示了呼吸的存在 幽门螺旋杆菌从我们地表水。的流行疾病归因于 H 幽门在伊拉克不可用,尽管其共性。

巴士拉城位于巴士拉省,有大约三数百万人口;其供水主要来源于三个来源,阿拉伯河,底格里斯河,Bada湖。水从这些来源是在22日处理工作,通过管网约13000公里。

自1980年代以来一直在伊拉克一般水质明显恶化,反映国家的环境退化造成的连续的武装冲突。

本研究的目的是隔离 幽门螺旋杆菌在伊拉克巴士拉,从饮用水,在哥伦比亚尿素改性琼脂(MCUA)和惠普媒体使用mdc方法( 7),然后由常规生化检测和确认16 srrna PCR。

2。方法 2.1。样本收集和培养

266的自来水样本和205样本油轮提供反渗透(RO)收集24区覆盖超过90%的巴士拉省期间从2008年2月到2009年12月。500毫升水样品中每个收集氯浓度使用无菌玻璃烧瓶和检查 o甲苯胺。样本1 - 2小时内转移。0.22实验室和过滤 μ微孔过滤膜。每个膜然后沉浸到2毫升的大豆胰蛋白酶的肉汤(TSB) 1 h。后,每个2毫升TSB被放置在较低的部分斜MCUA管。每个管倾斜几次允许添加的肉汤的上部偏上传播细菌。斜MCUA管,孵化microaerophically 37°C 1 - 2天,之后颜色变化从固相的橙色,粉色,表明脲酶活性。由此产生的系统是一个简单的monophasic-diphasic文化设置(mdc)、双相的固体液体环境的下部试管和一个单相固体上面 7]。从底部和上部的部分斜MCUA管亚文化是MCUA和惠普媒体净化的盘子。

没有控制用于隔离的菌株也在PCR在伊拉克为我们遥不可及。

2.2。幽门螺旋杆菌的主要诊断

疑似纯化殖民地是根据革兰氏染色法和文化特征。

2.3。生化试验

生化测试包括生产过氧化氢酶、氧化酶、脲酶和H2年代,硝酸盐减少,增长在3.5%氯化钠,甘氨酸和1%的速度增长,在不同的温度下生长。

2.4。抗生素敏感性试验

Piddock的方法( 14)是用于测试的敏感性14的隔离 幽门螺旋杆菌从饮用水7种抗生素卡那霉素30 μg,红霉素15 μ10 g,四环素30毫克,氨苄青霉素 μ5 g,利福平 μ30 g,阿莫西林 μ30 g和庆大霉素 μg (Bioanalyse、土耳其)。

2.5。16 srrna标识隔离

所有隔离从自来水和RO水生化测试样品给了积极的结果 幽门螺旋杆菌和(100)样品 幽门螺旋杆菌消极的文化方法进一步证实了使用专门设计的引物的识别 幽门螺旋杆菌基于16 srrna序列( 15]。的引物500个基点的产物16 srrna序列由正向引物序列:5 GCT亚美大陆煤层气有限公司AGA柠檬酸GCC答GTC C3和反向一:5 TGG CAA柠檬酸GCG柠檬酸GGT AAT G3。

2.6。制备细菌基因组DNA

基因组DNA从每个隔离后由涡暂停殖民地的铂环量1毫升phosphated-buffer盐水(PBS) 7.6,离心法,享年14000岁 × g为2分钟,煮1毫升蒸馏水的小球1分钟( 16]。样本然后在12000离心机 × g 4分钟在4°C和上层清液储存在无菌瓶−70°C,直到他们被用作PCR模板。从水中基因组DNA样本,已培养但没有给隔离 幽门螺旋杆菌,被离心法制备1毫升的液体部分偏MCUA管为14000 × g为2分钟,洗1毫升的PBS完成同样的步骤 幽门螺旋杆菌隔离。浓度和纯度测定spectrophotometrically OD260年和OD280年分别排除任何可能的污染,和0.8%琼脂糖凝胶电泳。

2.7。PCR扩增16 srrna幽门螺旋杆菌

在25日进行了放大 μ12.5 L的反应混合物 μL掌握混合,0.5 μL底漆,0.5 μL反向引物5 μ6.5 L DNA样本, μL蒸馏水和25 μL矿物油。16 srrna PCR条件包括:变性步骤5分钟在95°C,紧随其后的是39周期为1分钟在94°C,退火55°C 1分钟和扩展为2分钟72°C,和一个额外的扩展步骤7分钟的72°C。PCR产品在2%琼脂糖电泳。

2.8。幽门螺旋杆菌尿素基因,PCR扩增

所有隔离由16 srrna确认已经测试的尿素基因的存在 幽门螺旋杆菌。尿素序列的引物对411年英国石油公司产品所代表的正向引物序列:5 GCC AAT GGT AAA GCC TTA GTT3和反向一:5 CTC CTT AAT TGT TTT TAC 3 ( 17]。在25日进行了放大 μ12.5 L的反应混合物 μL掌握混合,0.5 μL底漆,0.5 μL反向引物5 μ6.5 L DNA样本, μL蒸馏水和25 μL矿物油。对尿素基因PCR条件包括:变性步骤在95°C 5分钟,其次是35周期为1分钟在94°C,退火在45°C。1分钟,在72°C扩展1分钟和一个额外的扩展步骤7分钟的72°C。PCR产品在2%琼脂糖电泳。

3所示。结果 3.1。文化的结果

的471个水样,14(2.76%)的隔离 幽门螺旋杆菌被孤立的从14个样本地区培养法和被生化测试。它们包括11 (4.13%) 幽门螺旋杆菌被孤立和诊断从266年的自来水样本和3人(1.46%)从205年RO样本。

修改后的哥伦比亚尿素琼脂使用mdc方法初步揭示的存在 幽门螺旋杆菌水样,与变化的颜色偏MCUA管从橙粉色发生在同一时间从而使额外的存在的证据 幽门螺旋杆菌在样品(图 1)。

变化的颜色偏MCUA管,(a)偏MCUA管,(b)正偏MCUA管,文化,(c)负偏MCUA管,文化。

惠普介质隔离率在接种是14/471(2.76%)的隔离 幽门螺旋杆菌,在MCUA中是6/471(1.2%)隔离包括14个隔离的 幽门螺旋杆菌

MCUA介质,孤立的殖民地 幽门螺旋杆菌小到中等大小,圆形的,奶油的颜色,同时,在惠普的介质中,孤立 幽门螺旋杆菌是规模较小,圆形,透明。MCUA和惠普媒体显示改变颜色从黄色/橙色,红色。

所有 幽门螺旋杆菌分离株革兰氏阴性螺旋coccobacilli和共享特征过氧化氢酶,脲酶和氧化酶生产,但略有不同(表对其他测试 1)。集体3隔离正在积极在硝酸盐还原,2能够增长42°C,和9底片在这两个特征。

生化测试的结果描述 幽门螺旋杆菌从14区隔离。

区没有 过氧化氢酶 氧化酶 脲酶 硝酸盐还原 H2年代 增长3.5%的生理盐水 增长1%对羟苯甘氨酸 增长42°C 增长25°C
1 + + +
2 + + + +
3 + + + +
4 + + +
5 + + + +
6 + + + +
7 + + +
8 + + +
9 + + +
10 + + +
11 + + + +
12 + + +
13 + + +
14 + + +
3.2。抗生素敏感性

幽门螺旋杆菌隔离从饮用水、四环素被发现最有效的抗生素,71%的测试隔离是对四环素敏感后跟卡那霉素和庆大霉素36% 57%,氨苄青霉素14%。利福平,阿莫西林被证明是最有效的(7%) 幽门螺旋杆菌从饮用水孤立,而红霉素是一个非有效的抗生素,如(图所示 2)和参考解释图表区大小的。

抗生素的影响 幽门螺旋杆菌隔绝的饮用水。

3.3。PCR结果

11中只有6名(54.5%) 幽门螺旋杆菌形态学和生化鉴定分离自来水被发现港口16 srrna基因和3 R。O隔离只有一个(33.3%)隔离了16 srrna基因PCR阳性结果。因此离开了传统认为隔离是假阳性的50%。从the100阴性样品 幽门螺旋杆菌通过培养,只有4 (4%)、16 srrna给了积极的结果。

PCR产品16 srrna引物给乐队基于琼脂糖凝胶对应500碱基对的产品相比,分子的阶梯,从而确定隔离 幽门螺旋杆菌如(图所示 3)。

为16 srrna-based引物PCR产品给乐队在琼脂糖凝胶对应500碱基对产品相比,分子的阶梯。巷1、分子梯(1500 - 100)英国石油公司、巷(2 - 6)乐队的PCR产物 幽门螺旋杆菌与16 srrna。

3.4。幽门螺旋杆菌尿素基因,PCR扩增

所有的隔离 幽门螺旋杆菌已证实了16 srrna,没有给出具体结果尿素(图 4),只有取得了100个基点的产品也更大。

PCR产品 幽门螺旋杆菌与尿素基于基因的引物。巷1分子梯子(1500 - 100)英国石油,没有乐队的PCR产物 幽门螺旋杆菌与尿素基因。

4所示。讨论

自然栖息地的 幽门螺旋杆菌是在人类胃,其他的来源吗 幽门螺旋杆菌和它的传播方式是未知的 18]。在这项研究中, 幽门螺旋杆菌从饮用水文化孤立和诊断方法和生化和PCR测试。第一个迹象的存在 幽门螺旋杆菌水来自AL-Sulami et al。 810隔离标识为) 幽门螺旋杆菌通过生化测试。发现已经被研究证实使用相同的方法和传统的结合和PCR测试确定恢复 幽门螺旋杆菌

低复苏的病原体并不奇怪考虑各种因素影响其生存在水里。主,隔离有78 urease-positive隔离从266年获得自来水样品和43 urease-positive的RO水样本。人数减少到11和3隔离,分别让他们常规测试后离开67年和40的假阳性。Urease-negative隔离并没有考虑。其他细菌主要是假单胞菌。

到目前为止没有发表论文证明的可行性球菌样的形式或球菌样的形式转换的可能性螺旋杆菌形式。我们的研究结果表明,一些 幽门螺旋杆菌仍然是可行的,表现为螺旋杆菌革兰氏染色涂片后殖民地MCUA;其他人没有,只可以通过PCR检测。

基于的假设 幽门螺旋杆菌在饮用水球菌样的( 6),结果含蓄地表明一些球菌样的形式的变换的可能性螺旋杆菌形式。

很难比较与出版我们的数据,因为每个作者使用不同的方法来检测细菌,和所有试图文化有机体直接从水样( 18, 19一直不成功。这可能是由于这一事实被其他微生物过度生长在富媒体导致的困难隔离 幽门螺旋杆菌从水,缺乏经济复苏的另一个原因 幽门螺旋杆菌从环境的挑剔的性质 幽门螺旋杆菌一个多态性现象。在这种情况下,有机体不会被传统文化恢复技术;因此在我们的研究中,我们开发了一个不同的协议来培养 幽门螺旋杆菌从水。这种方法的重要性是提供一个成功的文化方法的可能性 幽门螺旋杆菌

一般来说,高配置文件的测试对这些隔离的抗生素是明显的 幽门螺旋杆菌抗四环素的29%的隔离,也卡那霉素 幽门螺旋杆菌43%的阻力小于Al-Sulami et al。 8)60%的结果。阿莫西林代表活跃这种细菌的抗生素治疗无效的阻力的93%的隔离。

4.1。16个srrna幽门螺旋菌PCR的检测

在这项研究中,这是第一个使用16 srrna放大和确认报告 幽门螺旋杆菌从环境样品分离在伊拉克。16 srrna被选作检测 幽门螺旋杆菌因为它表现出高度的功能和进化所有细菌内同源性( 9]。只有7个隔离,14形态学和生化鉴定 幽门螺旋杆菌经16 srrna作为16 srrna他们给了积极的结果。假阳性分离株的流行通过常规测试表明特异性的方法。与此同时,100年饮用水样品没有 幽门螺旋杆菌被培养法检测4 16 srrna样品产生积极的结果。这意味着细胞 幽门螺旋杆菌没有检测到文化可以通过PCR方法,因此,MDCS提供的机会同时检测可栽培的和nonculturable形式。

16 srrna基因的PCR产物扩增结果显示500个碱基对的序列的基因编码16 srrna分子,这结果同意的 15]。PCR产物的大小决定通过比较它与DNA阶梯,它包含已知大小的DNA片段(1500 - 100)碱基对。我们的结果可能揭示证据支持额外的水传播,源自这样一个事实:有一个直接的复苏 幽门螺旋杆菌从自来水和R。与此同时PCR证实了阿水。

4.2。幽门螺旋杆菌尿素基因PCR的检测

尿素的基因型是预计将出现在所有 幽门螺杆菌积极的压力。然而,我们的研究是无法检测尿素基因的分离 幽门螺旋杆菌已经证实了16 srrna。这个结果同意Tiveljung et al。 20.)使用尿素基因,无法检测 幽门螺旋杆菌应变视为正常的控制。

结论

的隔离 幽门螺旋杆菌从饮用水、自来水和R。啊,通过培养法和顺向生化试验和PCR鉴定代表一个明确信号这种危险的存在,但虚幻的病原体在我们可消耗的水。,当然,会影响我们寻找一个更好的流行病学的理解和控制措施。

阿瑟顿 j . C。 的发病机制 幽门螺杆菌全身gastro-duodenal疾病 年度回顾的病理 2006年 1 63年 96年 2 - s2.0 - 33645740999 10.1146 / annurev.pathol.1.110304.100125 Elitsur Y。 Yahav J。 幽门螺杆菌儿科感染 幽门螺杆菌,补充 2005年 10 1 47 53 2 - s2.0 - 25844446835 杜波依斯 一个。 博伦 T。 幽门螺杆菌是入侵,它可能是一种兼性胞内生物吗 细胞微生物学 2007年 9 5 1108年 1116年 2 - s2.0 - 34047250343 10.1111 / j.1462-5822.2007.00921.x Amieva m·R。 El-Omar e . M。 Host-Bacterial交互中 幽门螺杆菌感染 胃肠病学 2008年 134年 1 306年 323年 2 - s2.0 - 37349009928 10.1053 / j.gastro.2007.11.009 Necchi V。 Candusso m E。 Tava F。 Luinetti O。 文图拉 U。 Fiocca R。 里奇 V。 Solcia E。 细胞内、细胞间基质对胃粘膜的入侵,肿瘤出现前的病变和癌症 幽门螺杆菌 胃肠病学 2007年 132年 3 1009年 1023年 2 - s2.0 - 33947314338 10.1053 / j.gastro.2007.01.049 代理 n . F。 阿尔梅达 C。 Cerqueira l 迪亚斯 年代。 Keevil c·W。 维埃拉 m·J。 球菌样的形式 幽门螺杆菌作为细胞的形态学表现适应环境 应用与环境微生物学 2007年 73年 10 3423年 3427年 2 - s2.0 - 34249660577 10.1128 / AEM.00047-07 Al-Sulami 答:一个。 Al-Kiat h·S。 赞美上帝 l·K。 Hunoon H。 主隔离和检测 幽门螺杆菌消化不良的患者:一个简单、快速的方法 东地中海健康杂志 2008年 14 2 268年 275年 2 - s2.0 - 45849083954 Al-Sulami 答:一个。 Al-Taee a . m . R。 Juma萨那 m·G。 分离和鉴定 幽门螺杆菌从饮用水在巴士拉省,伊拉克 东地中海健康杂志 2010年 16 9 810年 816年 2 - s2.0 - 78751635241 H。 拉赫曼 一个。 Semino-Mora C。 Doi 美国问。 杜波依斯 一个。 具体的和敏感的检测 幽门螺旋杆菌生物标本的实时rt - pcr和原位杂交 《公共科学图书馆•综合》 2008年 3 7 2 - s2.0 - 49949084272 10.1371 / journal.pone.0002689 e2689 Hulten K。 s W。 珍尼 H。 克莱因 p D。 Opekun a。R。 吉尔曼 r·H。 埃文斯 d·G。 Engstrand l 格雷厄姆 d . Y。 El-Zaatari f·a·K。 幽门螺杆菌在秘鲁的饮用水 胃肠病学 1996年 110年 4 1031年 1035年 2 - s2.0 - 0029862628 10.1053 / gast.1996.v110.pm8612990 本森 j . A。 Fode-Vaughan k。 柯林斯 m·l·P。 检测 幽门螺杆菌在水中直接PCR 在应用微生物学字母 2004年 39 3 221年 225年 2 - s2.0 - 4444364197 10.1111 / j.1472 - 765 x.2004.01555.x Mazari-Hiriart M。 vidal Y。 Calva J·J。 幽门螺杆菌在水系统中对人类使用在墨西哥城 水科学与技术 2001年 43 12 93年 98年 2 - s2.0 - 0034911270 赫加蒂 j . P。 多德 m . T。 贝克 k . H。 发生的 幽门螺杆菌在美国地表水 应用微生物学杂志 1999年 87年 5 697年 701年 2 - s2.0 - 0033378554 10.1046 / j.1365-2672.1999.00912.x Piddock l . j . V。 评审技术用于测定抗菌素耐药性和敏感的细菌 应用细菌学杂志 1990年 68年 4 307年 318年 2 - s2.0 - 0025287390 Falsafi T。 Favaedi R。 Mahjoub F。 纳杰菲 M。 stool-PCR测试诊断中的应用 幽门螺杆菌儿童感染 世界胃肠病学杂志》上 2009年 15 4 484年 488年 2 - s2.0 - 59249106103 10.3748 / wjg.15.484 偷看 r·M。 Jr。 米勒 G·G。 Tham k . T。 检测 幽门螺杆菌基因表达在人类胃粘膜 临床微生物学杂志 1995年 33 1 28 32 Notarnicola M。 Russo F。 Cavallini 一个。 比安科 M。 Jirillo E。 Pece 年代。 Leoci C。 马特奥 g D。 利奥 答:D。 PCR鉴定 幽门螺杆菌患者的粪便样本中的DNA胃与十二指肠的病理变化 医学科学研究 1996年 24 11 785年 787年 2 - s2.0 - 0030465355 代理 n . F。 阿尔梅达 C。 费尔南德斯 我。 Cerqueira l 迪亚斯 年代。 Keevil c·W。 维埃拉 m·J。 胃和肝肠的生存 幽门螺杆菌种虫害在水里:对传输的影响 应用与环境微生物学 2008年 74年 6 1805年 1811年 2 - s2.0 - 40849087921 10.1128 / AEM.02241-07 Giao m . S。 代理 n . F。 威尔 美国一个。 维埃拉 m·J。 Keevil c·W。 持久性的 幽门螺杆菌在异养饮用水生物膜 应用与环境微生物学 2008年 74年 19 5898年 5904年 2 - s2.0 - 54449090495 10.1128 / AEM.00827-08 Tiveljung 一个。 Borch K。 J。 Mardh 年代。 Petersson F。 Monstein h·J。 由PCR鉴定幽门螺杆菌在胃活检基于16 s rDNA序列:一种小的预测意义 幽门螺旋杆菌相关胃炎? 医学微生物学杂志》 1998年 47 8 695年 704年 2 - s2.0 - 0031876199